Отчетный период с 06.06.2025г. по 11.06.2025г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 1846 проб сыворотки крови животных, проведено 3532 исследования. Выявлено: 21 положительная проба по лейкозу крупного рогатого скота, 16 положительных проб по лептоспирозу у лошадей, 1 положительная проба по лептоспирозу у крупного рогатого скота.
Паратуберкулез (паратуберкулёзный энтерит, болезнь Йоне) – хронически протекающая инфекционная болезнь домашних и диких жвачных животных (крупного рогатого скота, мелкого рогатого скота, верблюдов, северных оленей), характеризующаяся поражением кишечника, брыжеечных лимфатических узлов и сосудов.
Возбудитель паратуберкулеза – бактерия Mycobacterium paratuberculosis или Mycobacterium johnei — тонкая короткая полиморфная палочка с округлыми краями величиной 0,5—1,5 X 0,2— 0,5 мкм, не образует спор, неподвижна, грамположительна, кислото-спирто-антиформинустойчива, красится по Цилю — Нельсену. Возбудитель - облигатный паразит, который не размножается вне животного организма; очень плохо растёт на искусственных питательных средах. Обладает значительной устойчивостью к воздействию факторов окружающей среды и различных дезинфицирующих средств.
Возбудитель проникает в ворсинки кишечника, где фагоцитируется (фагоцитоз незавершенный) и вызывает деструктивные изменения, приводит к нарушениям функции желез кишечника
Возбудитель обладает устойчивостью к факторам внешней среды и дезинфицирующим средствам.  Основными факторами вирулентности являются эндотоксины.
Клинические признаки болезни: периодическая диарея, переходящая в постоянную, отеки век, межчелюстного пространства, области подгрудка и нижней части живота, обезвоживание, прогрессирующее истощение, атрофия мышц в области крупа и задних конечностей, дугообразное изгибание позвоночника, паралич сфинктера прямой кишки. Возможно бессимптомное течение болезни.
Основной источник заболевания – инфицированные животные, выделяющие возбудитель во внешнюю среду с калом. Заражение происходит алиментарным путем.
Диагноз на паратуберкулез устанавливают на основании результатов клинического осмотра животных, аллергического, серологического, бактериоскопического, патологоанатомического или гистологического методов исследования с учетом эпизоотологических данных.
В серологическом отделе для диагностики паратуберкулеза животных проводят реакцию связывания комплемента (РСК). Сущность данной реакции заключается в выявлении комплемент-связывающих антител в сыворотке крови животных, инфицированных микобактериями паратуберкулеза.
Биопрепараты для специфической профилактики и терапии: не разработаны.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 22 пробы, проведено 197 исследований.

Пестициды в фруктах и овощах

Пестициды играют важную роль в сельском хозяйстве, без них уже многие годы не выращиваются овощи и фрукты. О вреде высоких доз таких веществ для здоровья человека стало известно не сразу, поэтому некоторое время их использование было по большому счету неконтролируемым. И именно это вызвало страх, который часто и сегодня останавливает людей включать в рацион достаточное количество зелени, овощей и фруктов. Но так ли вероятен риск отравиться пестицидами в нынешнее время?
Пестицидами называют химические вещества, которые используются в сельском хозяйстве для защиты растений. С их помощью можно предотвратить болезни овощей и фруктов (фунгициды), избавиться от вредителей (инсектициды) и сорняков (гербициды). Сегодня зарегистрировано более 3000 таких веществ, и их токсичность часто зависит от класса: например, Всемирная организация здравоохранения отмечает, что инсектициды часто более вредны, чем гербициды.
Пестициды могут быть синтетического и органического происхождения (биопестициды). Однако специалисты уверяют, что вред могут нанести и первые, и вторые.
А пометка «органическая продукция» говорит лишь о том, что в процессе выращивания не использовались именно синтетические вещества.
Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) предупреждает, что пестициды могут приводить к неблагоприятным последствиям для здоровья, таким как рак, последствия для системы репродукции, иммунной или нервной системы. Но надо понимать, что одно и то же химическое вещество может вызвать разное воздействие в зависимости от дозы. Это также может зависеть от пути воздействия: например, пероральное поступление, вдыхание или инъекция.
Требования к содержанию пестицидов в готовой продукции в российском законодательстве, которые включены в ТР ТС 021/2011 (приложение 3 «Гигиенические требования безопасности к пищевой продукции»), пока есть только на два вида пестицидов – это ДДТ и ГХЦГ (ДДТ и метаболиты, ГХЦГ и его изомеры). Этот же ТР ТС 021/2011 запрещает использовать 11 пестицидов при производстве детского питания.
В отделе химических исследований хлорорганические пестициды в фруктах и овощах определяют методом газожидкостной хроматографии. Метод основан на экстракции пестицидов этилацетатом, очистке экстракта концентрирован­ной серной кислотой или силикагелем АСК с последующим анализом хлорорганических пестицидов на газовом хроматографе с детектором захвата электронов.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 269 проб материала, проведено 341 исследования. Положительных случаев не выявлено.

САНИТАРНО-ПАРАЗИТОЛОГИЧЕСКАЯ ЭКСПЕРТИЗА, ДИКИЕ ЖВАЧНЫЕ, ПАРАЗИТЫ, ГЕЛЬМИНТЫ, МЯСО И МЯСНАЯ ПРОДУКЦИЯ

Мясо и мясные продукты от диких копытных, разрешенных к добыче, ценятся за диетические свойства и вкусовые качества. Однако они часто заражены паразитами и могут стать источником для заболевания человека. При изучении видового состава возбудителей паразитарных болезней в мясе и мясной продукции охотничье-промысловых видов копытных животных Центрального региона России исследования показали, что в 92 пробах мяса и мясной продукции от диких жвачных парнокопытных, полученных от охотников из охотхозяйств 61,9 % случаев обнаружили возбудителей паразитозов на разных стадиях развития: у благородного и пятнистого оленя - нематоду Onchocerca flexuosa, у пятнистого оленя - Elaphostrongylus cervi, у лося и европейской косули - Setaria cervi; у благородного оленя, лося и европейской косули - Cysticercus tarandi; у пятнистого оленя и сибирской косули - C. taenuicollis; у лосей в желчных протоках печени - трематод Parafasciolopsis fasciolaemorpha и Dicrocoelium lanceatum. Среди простейших выявили Sarcocystis sp. Мониторинг паразитарного благополучия диких копытных на определенной территории позволит оценить качество получаемого мяса и мясной продукции, риск возможного заражения человека.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 416 исследований.

Грипп птиц — высококонтагиозная вирусная болезнь птиц, характеризующаяся поражением кровеносной и центральной нервной систем, органов дыхания, пищеварения, выделения и яйцеобразования. Возбудителем болезни является РНК-содержащий вирус, относящийся к семейству ортомиксовирусов, роду вируса гриппа А.
Характерными клиническими признаками вируса гриппа птиц являются снижение продуктивности, угнетенное состояние, отказ от корма и воды, взъерошенность оперения, цианоз кожных покров, отек межчелюстного пространства, наличие подкожных кровоизлияний на конечностях, нарушение координации движений, синусит, ринит, конъюнктивит, диарея. Возможно бессимптомное течение болезни у вакцинированных против гриппа птиц, а также у диких водоплавающих птиц.
Характерными патологоанатомическими изменениями являются кровоизлияния в подкожной клетчатке, слизистых и серозных оболочках, головном мозге, паренхиматозных органах, застойная гиперемия в органах и тканях.
Лабораторные исследования проб биологического, патологического материала проводятся с использованием методов исследования: выделение возбудителя с использованием вирусологического метода исследований на свободных от специфических патогенов, развивающихся эмбрионах кур или в чувствительной культуре клеток с его идентификацией в реакции торможения гемагглютинации, выявление генетического материала возбудителя методом полимеразной цепной реакции, выявление антигена возбудителя методами иммуноферментного анализа и в реакции диффузионной преципитации, выявление антител к возбудителю серологическими методами РТГА, ИФА, РДП.
Диагноз считается установленным, если получен один из следующих результатов:
выделен и идентифицирован возбудитель; обнаружен генетический материал вируса- РНК вируса гриппа птиц.
Для выявления вируса гриппа птиц в лаборатории направляют биологический материал (трахеальные (ротоглоточные), клоакальные смывы (мазки), сыворотка крови, сборные пробы помет). Патологический материал (от трупов птиц отбирается: головной мозг, селезенка, трахея, легкие, сердце, почки, участки кишечника вместе с содержимым, перевязанные лигатурами). Участки кишечника отбираются отдельно от других внутренних органов. Допускается направление трупов птиц целиком. Так же проводятся исследования пищевой продукции, кормов с целью выявления вируса гриппа птиц.
В целях доказательства отсутствия циркуляции возбудителя на территории субъекта Российской Федерации должен осуществляться отбор проб.
Отбор проб от диких птиц, в том числе синантропных, находящихся на территории со статусом: "благополучный регион" по ВГП осуществляется 3 раза в год: с марта по май, после вылупления птенцов, с августа по ноябрь; "неблагополучный регион" по ВГП или регион с неопределенным статусом по ВГП осуществляется 1 раз в квартал с интервалом не менее 60 календарных дней и не более 90 календарных дней.
Отбор проб от домашней птицы на птицефабриках и хозяйствах осуществляется в соответствии с планами мониторинга ветеринарной безопасности на соответствующий год.

Отчетный период с 23.05.2025г. по 28.05.2025г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 3836 проб сыворотки крови животных, проведено 13707 исследований. Выявлено: 48 положительных проб по бруцеллезу у крупного рогатого скота, 12 положительных проб по лептоспирозу у лошадей, 17 положительных проб у крупного рогатого скота, 202 положительные пробы у крупного рогатого скота по лейкозу.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 35 проб, проведено 205 исследований.

Нитраты в овощах и фруктах

Нитраты – соли азотной кислоты, которые могут содержаться в овощах и фруктах. Эти вещества используются в сельском хозяйстве как удобрения, но их избыток в продуктах опасен для здоровья. Азот – один из незаменимых элементов, дающих пользу деревьям, кустарникам, огородным овощам, садовым и прочим культурам, составляя основу их питания. Он требуется для синтеза белков, но растения способны поглощать его лишь в виде легкорастворимых азотистых и аммиачных соединений, то есть нитратов. Их накапливаемое количество зависит как от сорта культуры, так и от условий ее развития, включая тип почвы и состав применяемых удобрений. Нитраты накапливаются в овощах и фруктах из-за чрезмерного использования азотных удобрений, при этом часть удобрений усваивается растениями, а другая часть, поступающая сверх нормы, откладывается в плодах, стеблях и листьях. На содержание нитратов влияют: несоблюдение агротехнических приёмов (например, несвоевременное внесение удобрений); дисбаланс между микро- и макроэлементами в почве; выращивание растений в теплице или контейнере (недостаток освещения, тепла и площади может привести к накоплению нитратов).
Овощи, плоды которых находятся над поверхностью почвы, и фрукты в среднем содержат азотистых солей меньше, чем корнеплоды. Причем опасные компоненты сконцентрированы в основном в кожуре и под ней, в мякоти их количество невелико.
Опасны для человека не сами нитраты в любом овоще, фрукте, пучке огородной зелени, а избыточное содержание таких веществ. По мнению экспертов Роспотребнадзора, количество нитратов, полученных человеком за сутки, не должно превышать 3,7 мг на килограмм веса. Нитраты всасываются через стенки тонкого кишечника и попадают в кровь, а в период лактации у женщин — в грудное молоко. Компоненты реагируют с гемоглобином, окисляя его и образуя метгемоглобин с повышенным количеством железа. В результате у человека могут развиться серьезные заболевания. Чем больше нитратов накапливается в овощах и фруктах, тем выше риски для здоровья людей, которые едят такую пищу. Самая частая опасность — усиленное развитие патогенов в кишечнике (такие микроорганизмы выделяют токсины, провоцируя отравление) и нарушение работы почек при избыточном содержании солей.
В отделе химических исследований массовую долю нитратов определяют ионометрическим методом по МУ 5048-89 Методические указания по определению нитратов и нитритов в продукции растениеводства, п. 2. Сущность метода состоит в извлечении нитратов из анализируемой пробы раствором алюмокалиевых квасцов с последующим измерением их концентрации в полученной вытяжке с помощью ионоселективного электрода.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 713 пробы материала, проведено 874 исследования. Выявлено 5 положительных случая.

ДИАГНОСТИКА ГЕМОФИЛЕЗНОГО ПОЛИСЕРОЗИТА СВИНЕЙ

Источник возбудителя инфекции - больные поросята и свиноматки-бактерионосители. Возбудителя выделяют из носовой слизи, мокроты при кашле, экссудата из глаз, фекалий Заболеваемость гемофилезным полисерозитом молодняка свиней составляет 20-60%.
Кроме эпизоотологических и патологоанатомических данных, для постановки диагноза проводят лабораторные (бактериологические) исследования патологического материала, отобранного от павших или вынужденно убитых поросят, а также ставят биопробу. Материал для лабораторного исследования берут не позднее чем через 4-6 ч после смерти от 2-3 трупов поросят, павших с признаками острого полисерозита и не подвергавшихся антибиотикотерапии. От каждого животного патологический материал помещают в отдельную пробирку, закрывают резиновой пробкой, маркируют и в термосе со льдом нарочным отправляют в ветеринарную лабораторию.
Исследование патологического материала заключается в выделении чистой культуры Н. parasuis и складывается из микроскопии мазков и патологического материала, выделения культур возбудителя на специальных средах, их идентификации и определения патогенности на морских свинках.
Доставленный патологический материал суспендируют непосредственно в пробирке (флаконе). Из суспензии готовят мазки, высушивают их на воздухе, фиксируют над пламенем горелки, окрашивают по Граму и Гинсу и микроскопируют. В мазках возбудитель имеет вид мелких, полиморфных, грамотрицательных палочек, диплобактерий, нитей или коротких цепочек.
Высевы на питательные среды должны быть проведены не позднее 24 часов после взятия патологического материала. Две-три капли суспензии из экссудата и соскобов с серозных оболочек наносят на поверхность предварительно подсушенного кровяного мясопептонного агара в чашке Петри. Стерильным стеклянным шпателем материал распределяют по всей поверхности агара, а затем дробно рассеивают на 3 чашки с питательной средой. После 20-30 минутного подсушивания бактериологической петлей делают крестообразный посев штрихом по диаметру чашки культуры не гемолитического штамма белого стафилококка или кишечной палочки («Баккормилка»). Посевы инкубируют в аэробных условиях при 37-38 градусах Цельсия в течение 24 часов.
Биологическое исследование для определения патогенных свойств Н. parasuis проводят на морских свинках. Для этой цели исследуемую культуру высевают на шоколадный агар и выращивают при 37-38 градусах по Цельсию в течение 24 часов. Выращенную культуру смывают стерильным 0,85%-ным раствором поваренной соли и доводят концентрацию бактериальной суспензии до 20 ед. мутности по оптическому стандарту. Эту суспензию в дозе 1 мл вводят внутрибрюшинно трем морским свинкам массой 300-350 г. Наблюдение за зараженными животными ведут в течение 5 суток.
Культуру признают патогенной в случае гибели одной или более морских свинок из перитонеального и плевральноко экссудатов, а также из печени, селезенки и крови сердца каждой павшей морской свинки делают посевы на кровяной или сывороточный МПА в чашках Петри с «баккормилкой». Наличие в посевах роста сателлитных колоний бактерий с типичными морфологическими и тинктоиальными свойствами свидетельствует о выделении исходной культуры Н. parasuis.
Лабораторный диагноз на гемофилезный полисерозит считают установленным при выделении из патологического материала культуры Н. parasuis, патогенной для морских свинок.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 331 исследование.
Ящур (рыльно-копытная болезнь, афтозная лихорадка, эпизоотический стоматит) (Aphtae epizooticae) – острое вирусное высококонтагиозное заболевание из группы зоонозов (инфекционных болезней животных). Возбудитель ящура – фильтрующийся ультрамикроскопический вирус, который относится к семейству Picornoviridae и является одним из наиболее мелких РНК-содержащих вирусов. Данный возбудитель характеризуется высокой изменчивостью и устойчивостью во внешней среде.
Первое сообщение о заболевании животных ящуром было сделано в 1546 году венецианским врачом Фракасторо. Заболевание людей впервые было описано в 1764 году норвежским врачом Сагаром. В 1897 году Леффлер и Фрош доказали вирусную природу возбудителя и установили, что жидкость ящурных пузырьков проходит через бактериальные фильтры, сохраняя свою вирулентность.
Основным источником и резервуаром вируса являются домашние и дикие копытные животные. Выделение возбудителя больными животными происходит с мочой, слюной, испражнениями, молоком. Несоблюдение правил личной гигиены при контакте с заболевшими животными может явиться причиной заражения людей.
Большое значение в распространении вируса ящура имеет человек. Механически вирус переносится с транспортом, птицей и другими видами невосприимчивых животных, а также насекомыми и клещами. Основной путь передачи контактно-бытовой, инфицирование человека происходит при попадании вируса на поврежденную кожу или слизистую оболочку. Заражение может произойти при контакте с кормом и различными предметами ухода за животными, а также при употреблении в пищу сырого молока и плохо прожаренного мяса от больных животных.В клинической картине заболевание у человека протекает с явлениями:• афтозного стоматита (афты - поверхностные изъязвления, затрудняющие акт жевания и глотания, сопутствующим признаком является усиление слюнотечения);• герпетической ангины на фоне гриппоподобных состояний (головная и мышечная боль);• чувства жжения и сухости во рту;• появления везикулезно-эрозивных (пузырьково-язвенных) поражений ногтевого ложа и кожи межпальцевых складок.Вирус проникает в организм через слизистые оболочки полости рта (реже через слизистые пищеварительного и дыхательного тракта) и поврежденную кожу. В месте внедрения возбудителя возникает очаг поражения – небольшая везикула (пузырек), где вирус размножается и накапливается.
Следующим этапом является проникновение вируса в кровь, приводящая к интоксикации. Выраженная дерматотропность вируса обусловливает его фиксацию в эпителии слизистых оболочек (полость рта, носа, уретры) и кожи (кисти и стопы), где отмечаются вторичные везикулы. С их появлением вирус в крови не обнаруживается.
Больным ящуром независимо от тяжести заболевания необходимо проходить лечение в условиях стационара, где они должны находиться не менее 14 дней от начала болезни до полного клинического выздоровления, заживления язв на слизистых оболочках и коже.

Отчетный период с 29.05.2025г. по 05.06.2025г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 4102 пробы сыворотки крови животных, проведено 8526 исследований. Выявлено: 22 положительных пробы по лептоспирозу у лошадей, 229 положительные пробы по лейкозу крупного рогатого скота, 33 положительные пробы у крупного рогатого скота по бруцеллезу.
Инфекционная анемия лошадей (ИНАН) - вирусная болезнь однокопытных животных, характеризующаяся острым, подострым и хроническим течением.
При остром и подостром течении отмечаются рецидивирующая лихорадка, поражение сердечно-сосудистой системы с явлениями геморрагического диатеза, анемия, изменения в кроветворных органах.
Хроническое течение болезни характеризуется эритропенией, лимфоцитозом, ускоренной РОЭ, изменениями в печени, сердце и других органах периодическими подъемами температуры тела.
Большей частью болезнь протекает хронически. Острая и подострая формы регистрируются спорадически. Животные, переболевшие любой формой инфекционной анемии, остаются пожизненными вирусоносителями.
Инкубационный период болезни составляет от 7 дней до 3 месяцев.
Возбудитель болезни – вирус семейства Retroviridae, подсемейства Orthoretrovirinae, рода Lentivirus.Возбудитель в основном передается кровососущими насекомыми (чаще слепнями).
Диагноз на инфекционную анемию лошадей устанавливают на основании клинических и патологоанатомических признаков, эпизоотологических данных и результатов лабораторных исследований.
В серологическом отделе для диагностики ИНАН ставят реакцию диффузной преципитации (РДП). Принцип данного метода основан на встречной диффузии антител (иммунной сыворотки) и растворимого антигена в агаровом геле. При наличии в исследуемой сыворотке антител, гомологичных антигену, образуется полоса преципитации. Специфические антитела появляются в крови животных через 2-6 недель после инфицирования.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 23 пробы, проведено 105 исследований.
За отчетный период выявлен 1 положительный результат: 
В 1 пробе мясокостной муки массовая доля сырого жира – выше нормы.

Состав и применение мясокостной муки. 

Мясокостная мука – это продукт, получаемый из отходов мясоперерабатывающей промышленности и туш павших животных (кроме павших от заразных болезней).
Производство мясокостной и костной муки включает несколько этапов: отваривание сырья, дробление, просеивание через сито и удаление металлических примесей с помощью магнитных сепараторов, обработка антиокислителями для предотвращения порчи жира. Готовый продукт представляет собой порошок коричневого цвета, с запахом без затхлости или гнилостности, однородного состава без комков и крупных (более 12 мм) гранул.
Состав мясокостной муки: белок – 30-50%, жиры – 13-20%, зола – 26-38%, вода – не более 7%, аденозинтрифосфорная и глутоминовая кислоты, карнитин, желчные кислоты, сератонин, тироксин и т. д. Мясокостная мука отличается от мясной большим содержанием кальция. Это связано с тем, что мясокостную муку изготавливают из сырья, в состав которого входит больше костей. Тем не менее, данный продукт является ценной высокобелковой кормовой добавкой. Кормовая мясокостная мука характеризуется высоким содержанием незаменимых аминокислот. Она является хорошим источником кальция, фосфора, натрия.
Применение мясокостной муки. Она используется как витаминно-минеральная добавка при кормлении крупного и мелкого рогатого скота, а также свиней и птицы. Это очень ценный продукт, содержащий много белка. Применение мясокостной муки обогащает рационы животных необходимыми биологически активными веществами, позволяет удешевить процесс выращивания сельскохозяйственных животных и повысить качество конечного продукта. При кормлении скота и птицы мясокостная мука добавляется в мешанки или концентрированные корма, при этом термическая обработка корма после добавления муки не допускается. Примерные оптимальные нормы включения мясокостной муки для кур – 7 % от общего количества зерновых, для свиней – 5-15 % от общей массы кормов, для крупного и мелкого рогатого скота – 10-100 г на голову в сутки. В небольших количествах – 5-10 % от общего количества кормов – этот продукт дают уткам, гусям, кроликам, цесаркам, индюшкам и т. д.
Хранение. Кормовая мука животного происхождения – мясная, костная, мясокостная – содержит большое количество белка и жира и поэтому требует правильного хранения. Основные правила – хранить в сухом проветриваемом помещении без попадания прямых солнечных лучей и не допускать повышения температуры воздуха выше +30 градусов. Испорченная или просроченная мука будет не только бесполезной, но может принести вред здоровью животных и птиц.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 486 проб материала, проведено 550 исследования. Выявлено 2 положительных случая.

Биологический метод исследования

Биологические методы исследований направлены на определение наличия токсинов возбудителя в исследуемом материале и на обнаружение возбудителя (особенно при незначительном исходном содержании в исследуемом образце). Методы включают заражение лабораторных животных исследуемым материалом с последующим выделением чистой культуры патогена либо установлением факта присутствия микробного токсина и его природы. Моделирование экспериментальных инфекций у чувствительных животных — важный инструмент изучения патогенеза заболевания и характера взаимодействий внутри системы микроорганизм-макроорганизм. Для проведения биологических проб используют только здоровых животных, определённых массы тела и возраста. Инфекционный материал вводят внутрь, в дыхательные пути, внутрибрюшинно, внутривенно, внутримышечно, внутрикожно и подкожно, в переднюю камеру глаза, через трепанационное отверстие черепа, субокципитально (в большую цистерну головного мозга). У животных прижизненно забирают кровь, экссудат из брюшины, после гибели — кровь, кусочки различных органов, СМЖ, экссудат из различных полостей.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 251 исследование.

Высокая бактериальная загрязненность приводит к ухудшению вкуса, снижению питательной ценности сырого молока и изготавливаемых из него продуктов, а также способствует значительному сокращению их срока хранения. Известно, что некоторые виды микроорганизмов, обнаруживаемых в молоке, способны выдерживать не только пастеризацию, но и замораживание.
Наиболее распространенными бактериями являются энтерококки, микрококки, лактобациллы и клостридии. Данные виды хорошо переносят процесс пастеризации.
Бактериальная обсемененность молока значительно повышается у коров при мастите. С молоком инфицированного животного может выделяться более 10⁷ бактерий на 1 мл.
Мастит – воспаление молочной железы, которое может быть вызвано бактериальной инфекцией или травмой. Воспаление вызывает миграцию лейкоцитов, выполняющих защитные функции, из периферийной системы кровообращения в вымя, что ведёт к росту числа соматических клеток в 1 мл молока от 100 тысяч до нескольких миллионов.
Содержание соматических клеток является одним из наиболее значимых показателей качества молока. Соматические клетки – это отмирающие клетки эпителия молочной железы, лейкоциты и эритроциты. Соматические клетки вырабатывают ферменты, устойчивые к пастеризации, и способны разрушать жиры и белки, которые входят в состав молока. В результате этих процессов молоко может приобретать неприятный привкус или запах, что негативно отражается на его потребительских свойствах и сроках хранения. Даже в холодильнике такое молоко очень скоро портится и становится непригодным к употреблению и переработке.
Чаще всего при заболевании коров маститом в молоке выделяют стафилококки и стрептококки. Чтобы уменьшить содержание бактерий в молочном сырье и изготавливаемой из него продукции, необходимо соблюдать высокие гигиенические стандарты на ферме, а также во время транспортировки и переработки сырья.

Отчетный период с 16.05.2025г. по 22.05.2025г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 3175 проб сыворотки крови животных, проведено 7321 исследование. Положительные пробы выявлены по лептоспирозу у крупного рогатого скота - 47, лошадей -2, свиней - 9, лейкоз -76.
Лептоспироз (Leptospirosis, инфекционная желтуха, собачья лихорадка, болезнь Васильева–Вейля) — инфекционная, природно-очаговая болезнь многих видов животных и птиц, проявляющаяся лихорадкой, гемоглобинурией (гематурией), желтушным окрашиванием и некрозами слизистых оболочек и кожи, атонией желудочно-кишечного тракта, абортами, рождением нежизнеспособного потомства, снижением продуктивности животных.
Возбудитель был выявлен А. Вейлем в 1886 году и Н. П. Васильевым в 1888 году. Возбудители лептоспироза — лептоспиры, принадлежащие к семейству спирохет, которые занимают промежуточное положение между бактериями и простейшими. Лептоспира состоит из тонкой осевой нити, которую окружает цитоплазматическая спираль. Длина лептоспир колеблется от 5 до 20, толщина — от 0,1 до 0,2 микрон. Концы лептоспир крючкообразно загнуты и имеют пуговчатое утолщение. У отдельных лептоспир наблюдаются и безкрючковые формы. Размножаются лептоспиры путем поперечного деления материнской клетки на две или три части.
Лептоспиры отличаются большим разнообразием серотипов, разделенных на 19 серогрупп. У сельскохозяйственных животных выделено 7 серогрупп.
Лептоспироз сезонная болезнь. В умеренном климате пик заболеваемости приходится на лето и первую половину осени.
На территории РФ возбудителями лептоспироза сельскохозяйственных животных и собак являются лептоспиры серогрупп: Pomona, Tarassovi, Grippotyphosa, Sejroe, Hebdomadis, Icterohaemorrhagiae, Canicola; в природных очагах установлена циркуляция лептоспир серогрупп: Grippotyphosa, Pomona, Sejroe, Javanica, Icterohaemorrhagiae, Bataviae, Australis, Autumnalis.
К лептоспирозу восприимчивы все сельскохозяйственные животные (крупный и мелкий рогатый скот, лошади, овцы, свиньи), домашние (собаки, кошки), дикие плотоядные (лисицы, волки, шакалы), пушные звери (норки, песцы), грызуны (нутрии, мыши, полевки, крысы), хищные, домашние и дикие птицы.
Основной источник инфекции — мыши, крысы, ежи, землеройки. Грызуны являются пожизненными носителями и основными резервуарами инфекции. Вторичными носителями лептоспир являются КРС, МРС, свиньи, собаки/лисицы.
Резервуаром и источником лептоспироза служат больные и переболевшие лептоспирозом животные, которые выделяют из организма лептоспир во внешнюю среду с молоком, мочой (в 1мл мочи больных свиней содержится от 500 000 до 750 000 лептоспир), фекалиями, а также с выделениями из легких и половых органов. Лептоспироносительство у разных видов животных разное: у крупного рогатого скота, овец и коз - до 6 месяцев, свиней-12 месяцев, лошадей -7 месяцев, собак - от нескольких месяцев до 3-4 лет, кошек - до 4 месяцев, лис - до 17месяцев. Лептоспироз еще называют «водной лихорадкой», потому что основной путь передачи инфекции происходит через воду. Второстепенные пути передачи это алиментарный и контактный.
Факторами передачи возбудителя инфекции при лептоспирозе являются водоемы, загрязненные мочой больных животных. При этом наибольшую опасность представляют застойные водоемы, заболоченные луга. Заражение здоровых животных происходит через корма, воду, подстилку, пастбища и почву, которые уже инфицированы выделениями больных и животных-лептоспироносителей, при поедании трупов грызунов (свиньи, собаки, кошки, лисицы), не обезвреженных продуктов убоя больных животных (песцы, лисицы). Лептоспиры обладают способностью проникать в организм животных через поврежденную кожу и слизистые оболочки. Молодняк может заразиться лептоспирозом через молоко, полученное от больных матерей.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 56 проб, проведено 260 исследований. 
За отчетный период выявлено 4 положительных результата
В одной пробе прудовой воды содержание аммиака, содержание нитрит-ионов, содержание хлорид-ионов, содержание сульфат-ионов выше нормы

Каротиноиды в яйце

Каротиноиды - природные органические пигменты жёлтого, оранжевого или красного цвета, которые придают желтый цвет желтку яиц и необходимы для нормальной жизнедеятельности животных; они являются предшественниками витамина А. Основное значение каротиноидов в птицеводстве заключается в повышении выводимости яиц, увеличении выживаемости молодняка в первые дни жизни, улучшении роста и развития птицы, повышении качества и скорости воспроизводства. Применяются каротиноиды для придания товарного вида готовой продукции и подкрашивания кожи тушек. 
Недостаток каротиноидов и витамина А наиболее часто регистрируется на птицефабриках среди молодняка и проявляется в следующих симптомах: состояние общего угнетения: вялость, снижение аппетита, общая слабость, задержка роста, снижение массы тела, истончение кожи, конъюнктивит, взъерошенность перьев, снижение или полное прекращение яйцекладки, поражение эпителия дыхательной и пищеварительной систем, анемия и сердечно-сосудистая недостаточность, бледный желток и низкая выводимость яиц. В случае систематического недостатка каротиноидов в корме развиваются множественные патологоанатомические изменения в организме птицы.
Источниками каротиноидов являются растительные компоненты, то есть естественные компоненты корма с высоким содержанием каротиноидов (кукуруза, кукурузный глютен, травяная мука); кормовые добавки - препараты, содержащие экстракты из растительного сырья; синтетические добавки (синтетические каротиноиды и препараты на их основе).
В отделе химических исследований каротиноиды в яйце исследуются фотометрическим методом по Методическому руководству для зоотехнических лабораторий. Оценка качества кормов, органов, тканей, яиц и мяса птицы, 2010 г. Сущность метода состоит в экстракции каротина диэтиловым эфиром и фотометрическом измерении интенсивности окраски экстракта, которая зависит от содержания каротина.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1173 пробы материала, проведено 1298 исследования. Выявлен 1 положительный случай.
Clonorchis sinensis – это трематода, переносимая рыбами. В ее жизненном цикле есть три хозяина: пресноводные моллюски (первые промежуточные хозяева), пресноводная рыба (вторые промежуточные хозяева) и, наконец, человек или плотоядные млекопитающие (окончательные хозяева).
Взрослые особи Clonorchis sinensis живут в желчных протоках. Человек выделяет яйца Clonorchis sinensis с фекалиями, а затем они попадают в организм моллюсков. Церкарии (свободно плавающие личинки) выходят из зараженных улиток и попадают в организм пресноводных рыб, внедряясь через чешую (в водоемах с церкариями С. sinensis отмечается массовое заражение рыб). Нетрудно догадаться, что при употреблении сырой, непровареной, сушеной, соленой или маринованной рыбы, содержащей инкапсулированные метацеркарии (церкарии в стадии покоя или созревания) заражается человек. Метацеркарии попадают в двенадцатиперстную кишку, проникают в общий желчный проток и далее мигрируют к малым внутрипеченочным протокам (или иногда к желчному пузырю и протокам поджелудочной железы), где в течение одного месяца они достигают взрослого состояния.
Взрослые особи могут жить в организме человека многие годы (описан случай, когда человек был заражен клонорхозом 20 лет) и вырастать до 10–25 мм в длину и 3–5 мм в толщину.
Основную роль в патогенезе заболевания играют токсическое и механическое воздействие гельминта, развитие аллергии и нервно-рефлекторных реакций. Иммунитет после перенесенного заболевания отсутствует. Легкие инфекции клонорхоза обычно протекают бессимптомно. Жалобы, как правило, возникают у пациентов, длительное время зараженных большим количеством паразитов. В острой фазе тяжелое течение заболевания проявляется лихорадкой, ознобом, болью в верхней части живота, увеличением печени, легкой желтухой, чуть позже может появиться диарея. Клинические проявления обычно продолжаются 2-4 недели, после чего исчезают самостоятельно, и пациент, находясь в ремиссии, долгое время ощущает себя здоровым. Затем наступает очередное обострение, часто свидетельствующее о воспалении желчных путей (при массивной инвазии клонорхоз может прогрессировать до атрофии паренхимы печени и портального фиброза). Желтуха может проявиться, если скопление гельминтов создает преграду оттоку желчи.
Клинические проявления запущенной хронической стадии клонорхоза:
боли в верхней части живота,
боли в правом подреберье,
непереносимость жирной пищи,
плохой аппетит,
тошнота,
диспепсия,
утомляемость.
Диагноз клонорхоза ставят при выявлении яиц в экскрементах или содержимом двенадцатиперстной кишки. Яйца, как правило, обнаруживаются в кале только через 3–4 недели после заражения. При обструкции желчевыводящих путей яйца в кале не обнаруживаются.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 539 исследований.
Вода – основной природный ресурс, без которого нельзя представить существование человека на планете. Здоровье людей в заметной мере зависит от ее качества, так как она используется во многих сферах жизни, в том числе для утоления жажды, приготовления пищи, а также выполнения гигиенических процедур. Чтобы избежать возникновения проблем, связанных с присутствием в воде вредоносных веществ и бактерий, важно знать ее химический и микробиологический состав.
Общее микробное число, имеющее аббревиатуру ОМЧ, представляет собой количественный показатель, который отражает общее количество микроорганизмов с анаэробными и аэробными свойствами в 1 мл изучаемого образца воды. Речь прежде всего о тех микроорганизмах, которые не видны невооруженным глазом при образовании колоний. Несмотря на то, что данное тестирование не так часто используется для индикации патогенных бактерий, оно представляет собой важный санитарный показатель, позволяющий определить степень обсемененности объекта, подвергающегося анализу. С его помощью можно вовремя отреагировать на резкое увеличение числа колоний, которое при превышении допустимого порога указывает на создание оптимальных условий для развития патогенных форм бактерий.
Общее микробное число, имеющее аббревиатуру ОМЧ, представляет собой количественный показатель, который отражает общее количество микроорганизмов с анаэробными и аэробными свойствами в 1 мл изучаемого образца воды. Речь прежде всего о тех микроорганизмах, которые не видны невооруженным глазом при образовании колоний. Несмотря на то, что данное тестирование не так часто используется для индикации патогенных бактерий, оно представляет собой важный санитарный показатель, позволяющий определить степень обсемененности объекта, подвергающегося анализу. С его помощью можно вовремя отреагировать на резкое увеличение числа колоний, которое при превышении допустимого порога указывает на создание оптимальных условий для развития патогенных форм бактерий.
Фактически, ОМЧ – это показатель качества воды, отражающий суммарное число микробов, свидетельствующих о степени загрязнения объекта. Чтобы оперативно протестировать санитарное состояние систем водоподготовки, осуществляется бактериологический анализ воды, при котором в первую очередь рассматриваются динамические значения. Также анализ часто применяется при необходимости оперативной проверки работы систем дезинфекции и водоподготовки. Для осуществления данной процедуры используется динамика значений в определенных точках отбора проб воды, а не их абсолютные показатели. Сравнение показателей ОМЧ, которые устанавливаются при температурах 22 и 37 градусов, позволяет определить состояние процессов самостоятельной очистки природных водоемов.

При выделении бактерий чаще всего используется метод мембранной фильтрации. Данный способ очень популярен в лабораториях и испытательных центрах за счет своей эффективности и высокой точности получаемых данных. Также он отличается экономичностью и простотой, требуя минимальных затрат.
Анализ необходимо проводить в нескольких случаях:
1. Если источник водоснабжения не имеет защиты от влияния факторов внешней среды;
2. Если коммунальные системы используются на протяжении многих лет без чистки;
3. При начале эксплуатации нового колодца или скважины.
Своевременное исследование с периодическим повторением процедуры позволит выявить степень опасности употребления жидкости из конкретных источников и тем самым обезопасить людей от возможного негативного влияния патогенных микроорганизмов. Важно отметить, что анализ проводится только в специализированных лабораториях, оснащенных необходимым оборудованием и имеющих соответствующее разрешение на проведение подобных процедур.