Отчетный период с 04.04.2025г. по 10.04.2025г.
За отчетный период в серологический отдел поступило 12466 проб сыворотки крови животных, проведено 26325 исследований. Выявлено: 88 положительных проб по бруцеллёзу у крупного рогатого скота, 55 положительных проб по лептоспирозу лошадей и 36 положительных проб по лептоспирозу крупного рогатого скота, 551 положительная проба по лейкозу крупного рогатого скота.
Бруцеллез (Brucellosis) — инфекционная, хронически протекающая болезнь домашних, некоторые виды диких животных и человека, характеризующаяся поражением многих систем жизнеобеспечения, нарушением функций сосудистой, пищеварительной, мочеполовой систем и системы воспроизводства.
Длительность инкубационного периода 2 – 3 недели. Первым показателем развившегося инфекционного процесса служит появление в крови инфицированных животных агглютининов в постепенно нарастающих титрах.
У коров основным клиническим признаком бруцеллеза является аборт и реже рождение нежизнеспособного приплода. Коровы, заразившиеся до покрытия, в большинстве случаев приносят нормальный приплод. Аборт чаще всего происходит на 5 – 8-м месяце. За 1 – 2 дня до наступления аборта у коров отмечается припухание наружных половых органов, выделение из влагалища бесцветной или буроватой жидкости и набухание вымени. После аборта происходит задержка последа и развивается эндометрит, сопровождающийся обильными слизисто-гнойными или гнойно-фибринозными выделениями. При тяжело протекающем эндометрите повышается температура тела, снижаются удои, отмечается потеря веса, убыстряется СОЭ; умеренный лейкоцитоз. Эндометритам нередко сопутствуют серозные или серозно-катаральные маститы. В процессе могут вовлекаться яичники и фаллопиевы трубы, что приводит к нарушению полового цикла и временному или стойкому бесплодию.
У отдельных животных в связи с абортом или независимо от него можно наблюдать развитие серозных бурситов или серофибринозных артритов. Последние в большинстве случаев возникают в суставах передних конечностей — запястном, путовом, коленном, локтевом. У быков бруцеллез, хотя и редко, сопровождается развитием орхитов и эпидидимитов.
Лабораторная диагностика бруцеллеза основана на результатах бактериологического и серологического исследований. Бактериологическое исследование в основном применяют при первичной постановке диагноза на бруцеллез в ранее благополучных хозяйствах.
В лабораторию направляются пробы крови (сыворотки) для серологического исследования, абортивный плод с плодными оболочками, околоплодную жидкость, истечения из родовых путей или желудок плода, кусочки печени, селезенки, пробы молока (последние порции). При убое животных берут паренхиматозные органы, лимфатические узлы, пораженные суставы, у самцов — семенники. Объектом исследования могут быть молочные продукты (брынза, сыр, масло), объекты внешней среды.
При массовых диагностических исследованиях ставят пробирочную РА, РСК, РДСК, кольцевую реакцию с молоком (КР), согласно ГОСТ 34105-2023 Животные. Лабораторная диагностика бруцеллеза. Серологические методы.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 29 проб, проведено 145 исследование.
Зеараленон в кормах
Микотоксины – вторичные метаболические продукты микроорганизмов рода Aspergillus, Penicillium и Fusarium.
Микотоксины, образующиеся в кормах, являются вторичными метаболитами жизнедеятельности грибов и представляют довольно устойчивые вещества, которые обладают тератогенным, мутагенным и канцерогенным эффектами, способные нарушать белковый, липидный и минеральный обмен веществ и вызывать регрессию органов иммунной системы.
Микотоксины можно разделить на две условные группы. Первая группа - это токсины грибов, образованные в растениях в момент их роста, перед сбором урожая, к ней относятся афлатоксины. Вторая – токсины, образованные в период хранения, после урожая, например охратоксин А. И те, и другие, представляют собой довольно стабильные низкомолекулярные соединения, которые сложно удалить или уничтожить в процессе изготовления кормов.
Зеараленон – к этой группе относят 15 микотоксинов. Продуцентом является гриб Fisarium graminearum. Обладает выраженной эстрогенной активностью. Что в свою очередь вызывает вульвовагиниты и аборты у свиней и стельных коров.
Инфицирование происходит при цветении зерновым фузариозом или фузариозом початков. Влажные погодные условия в период цветения, вместе с повышенной нагрузкой инфицирования, ведет к частому наличию микотоксинов.
Риск инфицирования особенно возрастает, если в качестве предшественника была кукуруза. После сбора урожая фузарии умирают. Но их токсины остаются в собранном сырье. И существенно снизить загрязнение токсинами во время сбора урожая или в дальнейших процессах переработки сырья уже практически невозможно.
Определение массовой доли зеараленона проводится с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии.
Метод измерений включает следующие этапы:
· экстракция зеараленона из образца хлороформом;
· отделение мешающих компонентов пробы путем экстракции зеараленона водным раствором гидроксида натрия и реэкстракции его хлороформом;
· определение массовой доли зеараленона методом ВЭЖХ с фотометрическим при длине волны 254 нм или флуориметрическим детектированием
В отделе химических исследований зеараленон в кормах определяют методом ВЭЖХ.
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 2294 пробы материала, проведено 2324 исследования. Выявлено 5 положительных случая.
Диарея является наиболее распространенным заболеванием телят в первые 28 дней жизни. Несмотря на расхожее мнение, что диарею вызывает один патоген, большинство случаев диареи являются результатом смешанных инфекций. К микроорганизмам, вызывающим диарею телят, относятся такие бактерии, как E. coli, Salmonella, Clostridium perfringens и Campylobacter; вирусы, такие как ротавирус, коронавирус и вирусная диарея крупного рогатого скота; и паразитические организмы, такие как Eimeria и Cryptosporidium. Факторы, участвующие в развитии диареи, включают отсутствие адекватного переноса иммуноглобулинов из молозива матери, экологический и кормовой стресс, чрезмерное воздействие кишечных патогенов или комбинацию этих факторов.
Как было упомянуто ранее, существует несколько основных патогенов, вызывающих диарею у новорожденных телят: энтеротоксигенная кишечная палочка, ротавирус, коронавирус, криптоспоридии, сальмонелла, эймерии, др. Относительная распространенность этих инфекционных агентов сильно варьируется в зависимости от целого ряда факторов: скорее всего, высокая вариабельность – это результат различий в местоположении, времени года, методах диагностики и других факторах. Однако можно выявить некоторые общие тенденции и закономерности. Ротавирус является наиболее распространенной причиной диареи у новорожденных телят, однако, при заражении коронавирусом и E. coli смертность выше, чем от ротавируса, поэтому их воздействие на экономику предприятия сильнее.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 441 исследование.
Сульфитредуцирующие клостридии (СРК) —это анаэробные, грамположительные, спорообразующие палочки. Широко распространены в окружающей среде. Обладают свойством восстанавливать сульфиты до сульфидов, что используется при их идентификации. Относятся к группе санитарно-показательных бактерий, поскольку встречаются в желудочно-кишечном тракте.
Когда параметры среды становятся опасными для бактерий, они принимают спорообразное состояние, в котором сохраняются длительное время. Споры термоустойчивы и сохраняют жизнеспособность при обычном приготовлении пищи. Некоторые штаммы выдерживают кипячение (100°C) в течение 1 часа. Большинство случаев бактериального отравления связаны с нарушением температурного режима при приготовлении пищи. Размножение бактерий при хранении готовых продуктов может создавать угрозу пищевого отравления. Пищевой отравление характеризуется интенсивными спазмами желудка и диареей.Споры СРК имеют высокую устойчивость в окружающей среде, поэтому их обнаружение в воде может свидетельствовать о давнем фекальном загрязнении. Могут выступать в роли важного индикатора оценки качества обеззараживания воды, так как отличаются устойчивостью к агрессивным воздействиям. Относятся к индикаторам биологического загрязнения воды: наличие их спор указывает на возможное присутствие цист и ооцист простейших и жизнеспособных яиц гельминтов.
Некоторые штаммы сульфитредуцирующих клостридий (например, Clostridium perfringens) могут вызвать у человека кишечные заболевания, характеризующиеся как пищевые токсикоинфекции. Болезнь возникает в результате употребления пищи, загрязнённой землёй или выделениями (фекалиями) животных и людей, в которых содержится возбудитель. Источником заражения часто становятся продукты в вакуумных упаковках.
Санитарными нормами предусмотрен микробиологический анализ мяса и мясопродуктов продуктивных животных, в том числе и птицы, рыбы, молочных блюд на наличие сульфитредуцирующих клостридий.
Использование современных методов хранения позволяет сохранить свежесть и полезность продуктов питания как можно дольше. В последнее время одним из таких методов является хранение пищевой продукции в вакуумных упаковках. Однако, в то же время такая упаковка не гарантирует защиту продукции от анаэробных микроорганизмов, которые развиваются при отсутствии кислорода.
Проникновение клостридий практически в любой пищевой продукт не представляет больших трудностей. Сложнее сохраниться в пищевом продукте в процессе его кулинарной обработки и приготовления с использованием высоких температур. Как только возникают неблагоприятные, опасные для возбудителя условия, он незамедлительно превращается в спору, образуя очень плотную оболочку, а споры очень устойчивы и легко сохраняются в продукте и под вакуумной упаковкой. В процессе неправильного хранения продукта, особенно при комнатной температуре, дремлющие до поры споры активизируются, прорастают в вегетативную форму, способную размножаться, выделяя при этом мощный токсин (яд), устойчивый к действию высоких температур. Размножению клостридий также способствует отсутствие свободного кислорода в толще пищевого продукта, и особенно в вакуумной упаковке.
Отчетный период с 28.03.2025г. по 03.04.2025г.
За отчетный период в серологический отдел поступило 8018 проб сыворотки крови животных, проведено 14729 исследований. Выявлено: 427 положительных проб по лейкозу крупного рогатого скота, 28 положительных проб по лептоспирозу у лошадей, 7 положительных проб по лептоспирозу у крупного рогатого скота.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 40 проб, проведено 231 исследование.
За отчетный период выявлено 16 положительных результатов.
Установлено несоответствие крови по 16 биохимическим показателям:
(выше нормы - 10: щелочной резерв - 2, неорганический фосфор - 2, кальций - 1, общий белок - 2, альбумины - 1, альфа-глобулины - 1, бета-глобулины - 1;
ниже нормы - 6: каротин - 2, альбумины - 1, альфа-глобулины – 1, гамма-глобулины - 2.)
Определение неорганического фосфора в крови крупного рогатого скота
Фосфор — один из основных структурных элементов организма. Все виды обмена в организме неразрывно связаны с превращением фосфорной кислоты. Фосфор входит в структуру нуклеиновых кислот, благодаря фосфорилированию осуществляется кишечная адсорбция, гликолиз, прямое окисление углеводов, транспорт липидов, обмен аминокислот и т. д. Макроэргические фосфорные соединения, среди которых центральное место занимает АТФ, — универсальные донаторы и аккумуляторы энергии. 80—85 % фосфора содержится в скелете. В крови он присутствует в неорганической и в органической формах. Органический фосфор связан с белками и липидами. Всего в крови животного около 10 фракций фосфорных соединений.
В клинической практике диагностическое значение имеет неорганический фосфор. Снижение уровня фосфора в крови отмечается при длительном недостатке его в рационе, плохом усвоении, при расстройствах желудочно-кишечного тракта или дефиците витамина D, при гиперфункции паращитовидных желез и гипофункции щитовидной железы, когда увеличивается секреция паратгормона и уменьшается выработка кальцитонина. Отмечается оно и при алиментарной остеодистрофии, рахите, уровской болезни, пеллагре, длительном лечении инсулином, кальция хлоридом, болезнях желудочно-кишечного тракта.
Повышение уровня фосфора в крови может быть вызвано уменьшением секреции паратгормона, когда тормозится реабсорбция фосфора в почках. Увеличение кальцитонина стимулирует реабсорбцию фосфора в почках и приводит к гиперфосфатемии.
В отделе химических исследований неорганический фосфор в крови определяют фотометрическим методом.
Сущность метода. В безбелковом центрифугате неорганический фосфор реагирует с молибденовой кислотой с образованием фосфорно-молибденовой кислоты, которая восстанавливается аскорбиновой кислотой до синего фосфорно-молибденового комплекса. Интенсивность окраски пропорциональна концентрации неорганического фосфора.
Порошковидный расплод – заболевание расплода особей пчелиной семьи, вызываемое спорообразующей палочкой – Bacillus pulvifaciens.
Источником инфекции являются больные и погибшие личинки. Возбудитель заболевания распространяется в пчелиной семье при кормлении личинок инфицированными медом и пергой. Попадая с кормом в пищеварительный тракт, возбудитель интенсивно размножается, проникает в гемолимфу и поражает все органы и ткани личинки, вызывая их распад.
Характерные признаки заболевания. Заболевание проявляется в летний период. Поражаются чаще личинки в возраст 4-9 дней. Больные личинки приобретают окраску от светло-бурой до светло-коричневой, подсыхая образуют корочки, которые при удалении из ячеек рассыпаются в порошок.
Диагноз устанавливают на основании клинических признаков и результатов бактериологических исследований. Следует исключать американский и европейский гнильцы, аспергиллез.
Меры борьбы. Специальные меры борьбы не разработаны. Рекомендуется строго соблюдать ветеринарно-санитарные правила содержания пчел, обращая особое внимание на профилактику заноса возбудителя из неблагополучных пасек.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1007 исследований.
Бактерии рода Proteus-грамотрицательные палочковидные, аэробные, в основном, подвижные микроорганизмы. Термин «Протей» означает изменчивость формы роста на плотных питательных средах. Подвижные формы имеют характерные рост "роения" пленкой, напоминающей туман, образующийся при дыхании на стекле. Поэтому жгутиковые (роящиеся, подвижные) варианты были обозначены как H-формы. Не роящиеся, неподвижные варианты, растущие изолированными колониями и лишенные поверхностной пленки, были обозначены как O-формы.
Широко распространены в природе как сапрофиты, они обнаруживаются в разлагающихся остатках животных, сточных водах, навозе, в кишечнике млекопитающих, а также в фекалиях человека и животных. Они являются условно-патогенными микроорганизмами. Показывают фекальное и органическое загрязнение.
Бактерии рода Proteus в пищевой продукции являются индикатором гнилостной порчи. Они длительно сохраняются и размножаются в продуктах. 
Основные пути передачи инфекции: употребление мяса, рыбы, молока, колбасы, которые хранились с нарушением сроков и условий хранения. Реже инфицирование происходит при употреблении заражённой воды, при купании, через грязные руки.
Обнаружение бактерий рода Proteus в готовой продукции говорит о нарушениях: режима тепловой обработки; санитарной обработки инвентаря, посуды и оборудования; несоблюдении условий хранения и сроков реализации.
В соответствии с техрегламентом Таможенного союза «О безопасности пищевой продукции», доброкачественные продукты – мясо (все виды животных и птицы), изделия из мяса, изделия из яиц, кулинарные изделия без тепловой обработки из рыбы и морепродуктов, икорные продукты - многокомпонентные блюда, нерыбные объекты промысла - двухстворчатые моллюски живые, хлебобулочные изделия с начинкой и другая продукция (салаты, соусы, студни, супы, гарниры, омлеты из яиц, готовые кулинарные изделия из мяса и др.) не должны содержать бактерий рода Proteus. Поэтому важно уделять большое внимание производственному контролю на предприятиях по роду деятельности, связанные с пищевыми продуктами.
Кроме микробиологического исследования сырья и готовой пищевой продукции необходимо исследовать смывы с объектов окружающей среды (со спецодежды и рук работников, с оборудования, инвентаря, посуды, столовых приборов).
Источником инфицирования блюд очень часто являются загрязненные остатками пищи посуда, инвентарь и оборудование, работники. Обсеменение может происходить при использовании одних и тех же разделочных досок, ножей, мясорубок для сырых и вареных продуктов.
Так как протейная палочка погибает при тепловой обработке, обнаружение ее в готовой продукции говорит о нарушениях режима тепловой обработки или плохой санитарной обработке инвентаря, посуды и оборудования, а также несоблюдении условий хранения и сроков реализации.
Отчетный период с 14.03.2025г. по 20.03.2025г.
За отчетный период в серологический отдел поступило 2914 проб сыворотки крови животных, проведено 6691 исследование. Выявлено: 264 положительные пробы по лейкозу крупного рогатого скота, 6 положительных проб по лептоспирозу у КРС, 5 положительных проб у лошадей.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 18 проб, проведено 126 исследований.
Метод определения содержания цезия Cs-137 в пищевых продуктах
Цезий-137, известен также как радиоцезий — радиоактивный нуклид химического элемента цезия с атомным номером 55 и массовым числом 137.
Цезий-137 — один из главных компонентов радиоактивного загрязнения биосферы. Содержится в радиоактивных выпадениях, радиоактивных отходах, сбросах заводов, перерабатывающих отходы атомных электростанций. Интенсивно сорбируется почвой и донными отложениями; в воде находится преимущественно в виде ионов.
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1239 пробы материала, проведено 1249 исследования.
Для чего проводить микробиологические исследования болезней животных.
Диагностику бактериальных и грибковых болезней животных с помощью микробиологических методов проводят в ветеринарных лабораториях. Микробиологические исследования позволяют выявлять возбудителей сальмонеллеза, стрептококковых, стафилококковых и других инфекций.
Сотрудники определяют чувствительность выделенных микробов к антибиотикам и противогрибковым препаратам. Это важно для правильного лечения животного, определения необходимого лекарства, его дозы и срока применения.«Глобальной проблемой мирового сообщества является возникновение антимикробной резистентности вследствие применения различных антимикробных препаратов. Неправильное назначение или беспорядочное применение антибактериальных средств приводит к тому, что возникает резистентность, и, соответственно, при повторном использовании этих препаратов они уже становятся неэффективными. Такая проблема существует и в ветеринарии, и в медицине.
В рамках проведенных исследований можно сделать вывод о том, что с каждым годом все больше растет число мультирезистентных, так называемых полирезистентных штаммов микроорганизмов. То есть это те микроорганизмы, которые устойчивы одновременно к трем и более группам антибактериальных средств.
Для забора биологического материала важно помнить несколько правил. Забор биологического материала производится до начала антибактериальной терапии. Если антибактериальная терапия уже проводится, необходимо дождаться окончания данной терапии и сдавать анализы не ранее, чем через 14 дней после последней дачи препарата.
Следующим важным фактором является забор достаточного количества биологического материала для диагностики. Если материала будет недостаточно, исследование может быть ложным.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 749 исследований.
Бордетеллёз свиней — хроническая инфекционная болезнь, характеризующаяся катарально-гнойным воспалением лёгких и дыхательных путей. Возбудителем бордетеллеза является бактерия Bordetella bronchiseptica. 
Эпизоотологические данные. К бордетеллезной инфекции восприимчивы свиньи всех возрастов, но наибольшая заболеваемость отмечается среди поросят от 2-недельного до 4-месячного возраста и составляет около 80%.
Источником возбудителя инфекции больные и переболевшие животные, у которых бордетеллы локализуются на слизистой оболочке носовой полости, трахеи и бронхах, в легких и бронхиальных лимфатических узлах. Особую опасность в распространении возбудителя представляют завозимые в хозяйство свиньи-бордетеллоносители, у которых болезнь протекает бессимптомно.
Выделение возбудителя во внешнюю среду происходит при чихании, кашле и истечениями из носа. Заражаются поросята в основном воздушно-капельным путем.
Болезнь не имеет выраженной сезонности и регистрируется в любой период года, но наиболее часто в холодное и дождливое время. Возникновению болезни и её более тяжелому течению существенное влияние оказывают неблагополучные факторы внешней среды (повышенная концентрация в воздухе аммиака, отъем поросят в раннем возрасте, перегруппировка, содержание разновозрастных поросят в одной группе, транспортировка и др.). Наибольший пик заболеваемости отмечается после отъема поросят. Смертность при хронической форме болезни достигает 30% и более.
Течение и симптомы. Болезнь протекает в острой, подострой и хронической формах. Инкубационный период может составлять до 20 дней. Вначале отмечается слабость, вялость, снижение аппетита, чихание и выделение слизи из носа. Потом появляется сухой короткий и резкий кашель, усиливающийся при вставании, движении и поедании корма. Температура тела повышается до 40-410С, больные животные угнетены, отказываются от корма, неохотно поднимаются и подолгу лежат. Гибель животных в зависимости от зоогигиенических условий содержания составляет до 30%.
При хроническом течении у поросят до 2-4-недельного возраста отмечается чихание, конъюнктивит, слезотечение, они отстают в росте и развитии, резко снижаются их племенные качества. При хороших условиях содержания и кормления возможно выздоровление больных животных.
Диагноз. Диагноз на бордетеллезную инфекцию основывается на анализе эпизоотологических, клинических и патологоанатомических данных с обязательным проведением лабораторных исследований. В лабораторию направляют участки пораженных легких, взятых на границе со здоровой тканью, бронхиальные и средостенные лимфатические узлы, носовую и бронхиальную слизь. В ГБУ «Оренбургская облветлаборатория» проводятся исследования для выявления ДНК возбудителя бордетеллеза Bordetella bronchiseptica методом ПЦР. Материалом для исследования служат:кровь, сыворотка крови, ротоглотачные мазки, трансназальные или бронхоальвеолярные смывы, фрагменты легких, бронхов, трахеи, смывы с поверхностей.
Дифференциальный диагноз. Бордетеллезную инфекцию дифференцируют от микоплазмоза, актинобациллярной плевропневмонии и пастереллеза.
Отчетный период с 21.03.2025г. по 27.03.2025г.
За отчетный период в серологический отдел поступило 7817 проб сыворотки крови животных, проведено 15224 исследования. Выявлено: 452 положительные пробы по лейкозу крупного рогатого скота.
Лептоспироз (Leptospirosis, инфекционная желтуха, собачья лихорадка, болезнь Васильева–Вейля) — инфекционная, природно-очаговая болезнь многих видов животных и птиц, проявляющаяся лихорадкой, гемоглобинурией (гематурией), желтушным окрашиванием и некрозами слизистых оболочек и кожи, атонией желудочно-кишечного тракта, абортами, рождением нежизнеспособного потомства, снижением продуктивности животных.
Возбудитель был выявлен А. Вейлем в 1886 году и Н. П. Васильевым в 1888 году. Возбудители лептоспироза — лептоспиры, принадлежащие к семейству спирохет, которые занимают промежуточное положение между бактериями и простейшими. Лептоспира состоит из тонкой осевой нити, которую окружает цитоплазматическая спираль. Длина лептоспир колеблется от 5 до 20, толщина — от 0,1 до 0,2 микрон. Концы лептоспир крючкообразно загнуты и имеют пуговчатое утолщение. У отдельных лептоспир наблюдаются и безкрючковые формы. Размножаются лептоспиры путем поперечного деления материнской клетки на две или три части.
Лептоспиры отличаются большим разнообразием серотипов, разделенных на 19 серогрупп. У сельскохозяйственных животных выделено 7 серогрупп.
Лептоспироз сезонная болезнь. В умеренном климате пик заболеваемости приходится на лето и первую половину осени.
На территории РФ возбудителями лептоспироза сельскохозяйственных животных и собак являются лептоспиры серогрупп: Pomona, Tarassovi, Grippotyphosa, Sejroe, Hebdomadis, Icterohaemorrhagiae, Canicola; в природных очагах установлена циркуляция лептоспир серогрупп: Grippotyphosa, Pomona, Sejroe, Javanica, Icterohaemorrhagiae, Bataviae, Australis, Autumnalis.
К лептоспирозу восприимчивы все сельскохозяйственные животные (крупный и мелкий рогатый скот, лошади, овцы, свиньи), домашние (собаки, кошки), дикие плотоядные (лисицы, волки, шакалы), пушные звери (норки, песцы), грызуны (нутрии, мыши, полевки, крысы), хищные, домашние и дикие птицы.
Основной источник инфекции — мыши, крысы, ежи, землеройки. Грызуны являются пожизненными носителями и основными резервуарами инфекции. Вторичными носителями лептоспир являются КРС, МРС, свиньи, собаки/лисицы.
Резервуаром и источником лептоспироза служат больные и переболевшие лептоспирозом животные, которые выделяют из организма лептоспир во внешнюю среду с молоком, мочой (в 1мл мочи больных свиней содержится от 500 000 до 750 000 лептоспир), фекалиями, а также с выделениями из легких и половых органов. Лептоспироносительство у разных видов животных разное: у крупного рогатого скота, овец и коз - до 6 месяцев, свиней-12 месяцев, лошадей -7 месяцев, собак - от нескольких месяцев до 3-4 лет, кошек - до 4 месяцев, лис - до 17месяцев.Лептоспироз еще называют «водной лихорадкой», потому что основной путь передачи инфекции происходит через воду. Второстепенные пути передачи это алиментарный и контактный.
Факторами передачи возбудителя инфекции при лептоспирозе являются водоемы, загрязненные мочой больных животных. При этом наибольшую опасность представляют застойные водоемы, заболоченные луга. Заражение здоровых животных происходит через корма, воду, подстилку, пастбища и почву, которые уже инфицированы выделениями больных и животных-лептоспироносителей, при поедании трупов грызунов (свиньи, собаки, кошки, лисицы), необезвреженных продуктов убоя больных животных (песцы, лисицы). Лептоспиры обладают способностью проникать в организм животных через поврежденную кожу и слизистые оболочки. Молодняк может заразиться лептоспирозом через молоко, полученное от больных матерей.
Практически во всём мире используют только два метода – это реакция микроскопической агглютинации (РМА) и иммуноферментный анализ (ИФА).
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 38 проб, проведено 200 исследований.
Сульфаты в воде
Вода из центрального водопровода, из колодца или из скважины может содержать разнообразные примеси. И некоторые из них опасны для здоровья человека, если присутствуют в составе в повышенных концентрациях.
К самым распространённым компонентам относят сульфаты в воде. Они представляют собой соединения, образуемые с серной кислотой и встречающиеся в разных источниках, практически повсеместно.
В отделе химических исследований сульфаты в воде определяют титриметрическим методом.
Наличие сульфатов в воде – абсолютно нормальное явление, обусловленное круговоротом веществ в природе. Наиболее часто встречаются двухвалентные активные основания кальция, бария, стронция, натрия, калия, магния.
Сульфаты формируются не очень далеко от поверхности земли при достаточно высоком содержании кислорода, поэтому обнаруживаются практически во всех поверхностных водах. Но при этом соединения просачиваются через почву, проникают в слои грунта. Также они подвержены испарению, поэтому попадают и в осадки.
Содержание сульфатов в воде может быть обусловлено разными факторами. Они различаются для разных источников. Так, сульфаты в питьевой воде, добываемой с помощью скважин, проникают из некоторых горных пород, а также при просачивании через слои грунта до зоны водоносного горизонта. Такие соединения есть в озёрах, родниках, ручьях, реках, даже в морях. В сточной воде сульфаты оказываются в результате работы промышленных, очистных предприятий.
Предельно допустимое содержание сульфатов, то есть ПДК сульфатов регламентируется действующими санитарными правилами и нормами. Согласно этим СанПиН, максимальная концентрация таких соединений не может превышать 500 мг/л. По рекомендациям ВОЗ содержание сульфатов в питьевой воде должно быть ещё более низким – не более 250 мг/л.
Влияние сульфатов заключается в таких вероятных эффектах:
- раздражающее воздействие воды на желудочно-кишечный тракт, провоцирующее дискомфорт, болевые ощущения в кишечнике и желудке;
- расстройства пищеварения;
- раздражение, покраснение, отёчность слизистых оболочек ротовой и носовой полости, глаз;
- аллергические реакции при контактах с водой – зуд, краснота, высыпания на коже;
- нарушения усвоения пищи и, как следствие, некоторых полезных веществ, содержащихся в продуктах питания.
Учитывая все возможные проблемы, можно сделать вывод, что удаление сульфатов из воды обязательно, если их содержание превышает установленные нормы.
Трихомоно́зы (Trichomonoses), инвазионные болезни животных и человека, вызываемые простейшими — трихомонадами. Наибольшее распространение во многих странах мира имеет Т. spp крупного рогатого скота.
Трихомоноз крупного рогатого скота вызывается Trichomonas foetus, характеризуется поражением и функциональными расстройствами половых органов.За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 489 исследований.
Бактерии группы кишечной палочки (БГКП).
Бактерии группы кишечной палочки (колиформные бактерии) (БГКП)-условно выделяемая по морфологическим и культуральным признакам группа бактерий семейства энтеробактерий. БГКП являются санитарно-показательными микроорганизмами, указывающими на вероятность присутствия в пробе патогенных бактерий. Присутствие в пробе этих организмов указывает на фекальное загрязнение, по выделенным бактериям можно определить его давность. БГКП также называют «болезнью грязных рук». Данные бактерии могут попадать в продукты из воды, с оборудования, рук рабочего персонала и из других источников.Вызывают заболевания желудочно-кишечного тракта.
При исследованиях кишечную палочку чаще находят в молочных продуктах и молоке, готовой продукции (например, салаты), колбасных изделиях. Если продукт фасуется непосредственно в магазине, то вероятность обнаружения кишечной палочки у него выше, по сравнению с герметичной промышленной упаковкой.
В группу БГКП входят представители нескольких родов семейства Enterobacteriaceae, в том числе Escherichia, Citrobacter, Enterobacter, Klebsiella, Serratia. Эти микроорганизмы обладают многими общими морфологическими, культуральными и биохимическими свойствами. Санитарно-показательное значение родов неодинаково: наличие Escherichia свидетельствуют о свежем фекальном загрязнении, Escherichia и Enterobacter– показатели давнего или не фекального загрязнения.
В молоке БГКП хорошо размножаются, доводя его кислотность до 50- 80°Т и образуя в нем неровный ноздреватый сгусток. Молочнокислые микроорганизмы замедляют развитие БГКП. При режимах пастеризации, принятых в молочной промышленности, БГКП гибнут. Обычные дезинфицирующие средства полностью обеззараживают оборудование, инвентарь и руки от микроорганизмов.
Отчетный период с 07.03.2025г. по 13.03.2025г.
За отчетный период в серологический отдел поступило 2978 проб сыворотки крови животных, проведено 5538 исследований. Выявлено: 1 положительная проба по хламидиозу у крупного рогатого скота, 17 положительных проб по лептоспирозу у крупного рогатого скота, 4 положительных пробы по лептоспирозу у лошадей, 68 положительных проб по лейкозу крупного рогатого скота.
По внешнему проявлению болезни различают сап носовой, кожный и легочной. Иногда все три клинические формы могут быть выражены одновременно.
При носовом сапе на слизистой оболочке носовой полости появляются мелкие желтоватые узелки, окруженные красным ободком. На их месте образуются характерные язвы и звездчатые рубцы. Развитие язв сопровождается гнойным истечением из носа, иногда с примесью крови, а также припуханием подчелюстных лимфатических узлов.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 26 проб, проведено 156 исследований.
За отчетный период выявлен 1 положительный результат.
В 1 пробе отрубей установлена общая токсичность.
Определение общей токсичности в кормах основными методами
В отделе химических исследований общую токсичность кормов определяют по ГОСТ 31674-2012 Корма, комбикорма, комбикормовое сырье. Методы определения общей токсичности.
При биотестировании корма на стилонихиях слаботоксичные и токсичные корма направляют на биотестирование основными методами.
Методы основаны на испытании кормов растительного и животного происхождения, а также комбикормов для продуктивных и непродуктивных животных и кормовых добавок методом биотестирования параллельно на кроликах (кожная проба) и на мышах (острый опыт), что дает возможность учесть как дермонекротическое действие токсинов, так и их воздействие на пищеварительную систему теплокровных животных.
Метод кожной пробы проводится путем апликации вытяжки исследуемого корма на оголенную кожу взрослого кролика с непигментированной кожей. Сущность метода заключается в проведении исследований на коже кролика, основанных на дерманекротическом действии токсичных веществ микогенного происхождения. У кролика на участке кожи размером 6 х 6 см в области бедра, лопатки или бока в день постановки пробы тщательно выстригают волосяной покров (до полного оголения). Повреждение кожи не допускается. Пигментированная кожа, а также кожа с признаками шелушения непригодна для проведения испытаний. На одном кролике допускается ставить одновременно не более четырех проб. Повторные использование кроликов для постановки пробы допускается лишь при отрицательных результатах предыдущих исследований.
Наблюдение за реакцией начинают на следующий день после повторного нанесения экстракта и продолжают в течение 3-5 суток, в зависимости от степени токсичности корма.
Токсичность исследуемых кормов определяют по наличию воспалительного процесса на участке кожи с нанесенным экстрактом.
Определение общей токсичности кормов в опыте на мышах. Метод основан на извлечении токсичных веществ из кормов растительного и животного происхождения, комбикормов и кормовых добавок ацетоном или водой (в зависимости от результатов экспресс-биотеста) и введении экстракта однократно в желудок белым мышам.
Учет реакции ведут на основании анализа состояния внутренних органов (желудочно-кишечного тракта, печени, селезенки, почек) при вскрытии мышей.
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 442 пробы материала, проведено 442 исследования.
Рожа - инфекционное заболевание, протекающее остро или хронически в виде энзоотических вспышек, с явлениями септицемии при острой форме и симптомами эндокардита, полиартрита и некроза кожи. Болеют преимущественно свиньи 3-12 месячного возраста, возможны вспышки рожи среди ягнят, индеек, уток и фазанов. К болезни восприимчив человек.
Возбудитель болезни — бактерия эрисипелотрикс инсидиоза, прямая или слегка изогнутая, устойчивая к факторам внешней среды и гниению. В гниющих трупах и органах свиней, зарытых в землю, сохраняется 10-12мес, в навозной жиже-до 290дней, в фекалиях—38-78дней. Посолка и копчение не обезвреживает мясо свинины от бактерий; при засолке они сохраняются 6 месяцев, в копченых продуктах до 3месяцев. Прямые солнечные лучи убивают бактерии через 10-12дней, высушивание при рассеянном свете через 3- 4недели. Бактерии рожи не устойчивы к действию высокой температуры и дезинфицирующим средствам. Для дезинфекции применяют 2-3% раствор едкого натра, 20%-ную взвесь свежегашеной извести, 10% раствор хлорной извести. Основным источником болезни являются больные рожей свиньи, свиньи - бактерионосители, а также грызуны и птицы.
Факторами передачи возбудителя служат мясные продукты и субпродукты, полученные от больных рожей свиней, а также корма, вода, почва, навоз, предметы ухода, загрязненные бактериями рожи. В пределах свинарника и небольшого населенного пункта механическими переносчиками бактерий могут быть домашние мухи и осенние мухи-жигалки, питающиеся кровью больных рожей животных. Для рожи характерно выраженная весенне - летне - осеняя сезонность и заболеваемость свиней от 3 до 12месяцев. Устойчивость поросят-сосунов связана с наличием у них коллострального иммунитета, передаваемого иммунными свиноматками с молозивом. Естественная устойчивость свиней к роже в значительной степени зависит от условий содержания и полноценности рациона кормления свиней. Высокая внешняя температура и повышенная влажность, плохая вентиляция в свинарнике, резкая смена рациона кормления и другие неблагоприятные факторы снижают устойчивость свиней к роже и способствуют переходу скрытой инфекции у свиней — бактерионосителей в клинические формы болезни.
Проводятся общие профилактические мероприятия:
- создание нормальных условий содержания и полноценного кормления;
- систематическая уборка навоза, очистка территории свинарника, помещений и периодическая дезинфекция.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1449 исследований.
Контроль качества дезинфекции объектов,
подлежащих ветеринарному надзору.
Контроль качества проводят в три этапа.
1. Контроль подготовки объектов к дезинфекции (проверяют степень очистки поверхностей, их увлажненность, защиту электрооборудования и приборов, герметизацию помещений) осуществляет ветеринарный специалист, ответственный за проведение дезинфекции.
2. Контроль за соблюдением установленных режимов дезинфекции (выбор препарата и метода дезинфекции, концентрация, температура раствора, равномерность увлажнения поверхностей дезраствором, соблюдение параметров производительности используемых машин и аппаратов, качество распыла раствора) осуществляет ветеринарный специалист, ответственный за выполнение дезинфекции.
3. Бактериологический контроль качества дезинфекции осуществляют специалисты ветеринарных лабораторий периодически или в сроки, установленные с учетом эпизоотической обстановки, технологии производства, целей дезинфекции и других конкретных особенностей.
3.1. При бактериологическом контроле качества дезинфекции определяют наличие на поверхностях обеззараживаемых объектов жизнеспособных клеток санитарно-показательных микроорганизмов - бактерий группы кишечной палочки, стафилококков, микобактерий или спорообразующих аэробов рода Bacillus.
3.2. Качество заключительной дезинфекции при сибирской язве, эмфизематозном карбункуле, брадзоте, злокачественном отеке, других споровых инфекциях и экзотических инфекциях - по наличию или отсутствию спорообразующих микроорганизмов рода Bacillus.
Для индикации спорообразующих аэробов перед центрифугированием смывы прогревают на водяной бане при 65 °С в течение 30 мин, затем центрифугируют. Из центрифугата каждой пробы делают посевы в одну пробирку с МПБ и на 2 чашки с МПА и дифференциально-диагностическую среду. Посевы инкубируют в термостате при 37 °С в течение 24 - 48 ч.
При наличии роста на МПА подсчитывают количество колоний, а также изучают их морфологию, проводят идентификацию.
При наличии роста на дифференциально-диагностической среде в крышку чашки Петри вносят 1 - 2 мл 25 %-ного водного раствора аммиака, чашку (крышкой вниз) выдерживают при 20 ± 2 °С в течение 1 мин, после чего визуально или под малым увеличением микроскопа проводят учет теста.
Под действием паров аммиака происходит порозовение колоний микроорганизмов, обладающих фосфатазной активностью.
Вас. anthracis фосфатазной активностью не обладает и его колонии остаются бесцветными.
