Листериоз (Listeriosis) — инфекционная болезнь животных и человека.

Листерия, она же Listeria monocytogenes, — бактерия, которая имеет форму короткой палочки со жгутиками. Листерия не строго анаэробная: ей не требуется для жизни кислород, но при этом она также способна существовать в его присутствии. Хорошая среда для обитания листерий — почва, силосные ямы и кучи, водоёмы со стоячей водой.

К листериозу восприимчивы овцы, козы, крупный рогатый скот, свиньи, лошади, кролики, куры, гуси, утки, индейки. Болеют животные всех возрастов, особо чувствительны молодняк и беременные животные. Отмечены случаи заболевания листериозом кошек, собак и обезьян. Источник возбудителя инфекции — больные и переболевшие животные. Основной резервуар возбудителя в природе — свободноживущие грызуны, являющиеся причиной заражения листериозом сельскохозяйственных животных, чаще всего через воду, корма, загрязнённые выделениями грызунов. Отмечена большая роль некачественного силоса в появлении и распространении листериоза, в особенности у овец. В циркуляции возбудителя листериоза между дикими животными (особенно грызунами), по-видимому, определённую роль играют клещи. В естественных условиях заражение листериозом, очевидно, происходит через слизистую оболочку носовой и ротовой полостей, конъюнктиву, пищеварительный тракт, повреждённую кожу. Листериоз проявляется спорадически, реже — в виде эпизоотии, у овец носит сезонный характер, проявляется в зимне-весенний период, что связано с активизацией механизма передачи возбудителя (миграция грызунов-листерионосителей к животноводческим помещениям и складам кормов) со снижением неспецифической резистентности организма. Для листериоза характерна также стационарность.

Инкубационный период 7—30 суток. Течение острое, подострое и хроническое. Листериоз проявляется в несколько формах: нервной, септической, смешанной, бессимптомной, а также с преимущественным поражением половых органов и вымени. У крупного рогатого скота чаще поражается нервная система. Болезнь начинается угнетением, вялостью, снижением аппетита. Через 3—7 суток у животных отмечают некоординируемые движения, судороги, приступы буйства, парезы нижней челюсти и отдельных групп мышц, потерю зрения, конъюнктивит. Температура тела повышается или остаётся в пределах нормы. Длительность болезни до 10 суток. Поражение половой системы проявляется абортами, задержанием последа, метритами. Иногда возникает мастит. У телят листериоз чаще всего протекает в виде септицемии. У овец и коз также поражается нервная система. Вначале отмечают необычное поведение животного, снижение аппетита, сонливость, конъюнктивит и ринит. Температура тела повышается до 40,5—41°C или остаётся в пределах нормы. Через 1—2 суток появляются признаки поражения нервной системы: круговые движения, потеря равновесия, судороги, искривление шеи, расширение зрачков, потеря зрения. Болезнь длится от несколько часов до 10 суток. У ягнят чаще наблюдают септицемическую форму (поносы, лихорадка). У беременных овец и коз возникают аборты и маститы. У взрослых свиней отмечают исхудание, анемию, кашель, нарушение координации движений, абсцессы в различных органах и тканях, аборты и рождение мёртвых поросят. У поросят чаще наблюдают поражение нервной системы: расстройство координации движений, манежные движения, мышечную дрожь, судороги, возбуждение.

Листерии нелегко уничтожить с помощью термической обработки: они выживают в течение 20–30 минут при 70 °C и 3–5 минут при 100 °C. Однако бактерия становится неактивной при воздействии на неё обычными дезинфицирующими средствами.

Диагноз ставят на основе серологических исследований (РСК). Лечение более успешно в начальный период болезни.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 168 проб, проведено 941 исследование. 
За отчетный период выявлен 1 положительный результат:
В 1 пробе отрубей установлена общая токсичность 

Пестициды в плодах и овощах

Пестициды играют важную роль в сельском хозяйстве, без них уже многие годы не выращиваются овощи и фрукты. О вреде высоких доз таких веществ для здоровья человека стало известно не сразу, поэтому некоторое время их использование было по большому счету неконтролируемым. И именно это вызвало страх, который часто и сегодня останавливает людей включать в рацион достаточное количество зелени, овощей и фруктов.
Пестицидами называют химические вещества, которые используются в сельском хозяйстве для защиты растений. С их помощью можно предотвратить болезни овощей и фруктов (фунгициды), избавиться от вредителей (инсектициды) и сорняков (гербициды). Сегодня зарегистрировано более 3000 таких веществ, и их токсичность часто зависит от класса: например, Всемирная организация здравоохранения отмечает, что инсектициды часто более вредны, чем гербициды.
Пестициды могут быть синтетического и органического происхождения (биопестициды). Однако специалисты уверяют, что вред могут нанести и первые, и вторые. А пометка «органическая продукция» говорит лишь о том, что в процессе выращивания не использовались именно синтетические вещества.
О вреде пестицидов для человека разговоры идут уже давно. Ранее их связывали с повышенным риском развития онкологических болезней, аутизма и других нарушений. И исследования последних лет подтверждают, что высокие дозы химикатов действительно способны существенно повлиять на здоровье.
Как уже отмечалось, пестициды действительно несут вред здоровью, но только в том случае если речь идет о высоких дозах. Но насколько это актуально для современного сельского хозяйства? В 2001 году была сформулирована Стокгольмская конвенция о стойких органических загрязнителях, в которой страны обязались прекратить производить и использовать наиболее опасные пестициды, например ДДТ. Россия подписала конвенцию в 2004 году. Поэтому уже более 15 лет вредные химикаты в сельскохозяйственных целях не используются.
Более того, фиксируемые сейчас остатки пестицидов в овощах и фруктах часто не превышают даже минимально допустимую дозу. Всемирная организация здравоохранения говорит о том, что наибольшему риску подвержены те люди, которые имеют непосредственный контакт с веществами – производители, фермеры и прочие. А вот потребители овощей и фруктов сегодня не могут получить значимую для здоровья дозу вредных веществ. 
В отделе химических исследований содержание пестицидов в плодах и овощах определяют методом ТСХ по ГОСТ 30349-96, п. 4. Метод основан на экстракции пестицидов органическим растворителем из продукта, очистке экстракта, упаривании его досуха и хроматографировании в тонком слое. Метод предназначен для анализа содержания остаточных количеств пестицидов ДДТ и его метаболитов, гамма-ГХЦГ.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 845 проб материала, проведено 880 исследований, выделено 5 положительных случая.
Согласно современной классификации S. enterica делится на 6 подвидов enterica, salamae, arizonae, diarizonae, houtenae и indica, которые дифференцируют по биохимической активности и обозначают цифрами I, II, IIIa, IIIb, IV и VI соответственно.
Непатогномоничность симптоматики сальмонеллеза диктует необходимость подтверждения предположительного клинического диагноза результатами лабораторных исследований взятого патологического материала.
Результативность бактериологического исследования повышает применение для первичных посевов обогатительных и селективных сред. В тех случаях, когда титр сальмонелл в тестируемом материале низок (при бессимптомном сальмонеллоносительстве, длительной транспортировке, многократном размораживании, пересыхании или перегреве материала, предназначенного для исследований) рекомендуется предварительно помещать пробы в забуфференную пептонную воду в соотношении 1:2 - 1:10. Смесь инкубируют 15 - 20 ч при 37 ºС. Это ведет к восстановлению жизнеспособность не только S. enterica, но и других видов бактерий, что крайне нежелательно. Поэтому при отсутствии необходимости данный этап пропускают, сразу же делая первичный посев поступивших в лабораторию проб на жидкую или полужидкую обогатительную среду (Раппапорта-Вассалиадиса, тетратионатный, селенитовый или селенит-цистеиновый бульоны и др.). Обогатительные среды пригодны для выращивания разных сероваров S. enterica в неодинаковой степени. В связи с этим имеет смысл одновременно делать первичный посев, по меньшей мере, на 2 среды. С одной стороны это ведет к лишним затратам расходных материалов и труда, но в конечном итоге экономит время, поскольку позволяет избежать повторного проведения данного этапа бактериологического исследования, который занимает от 6 до 24 ч. Иногда культивирование на обогатительных средах проводят при повышенной температуре (41,5…43 ºС), стремясь сократить его продолжительность и предотвратить рост термочувствительных контаминантов. Однако не следует забывать о том, что некоторые серовары сальмонелл (особенно S. dublin) не растут в таком температурном режиме. Далее следует пересев на плотные селективные среды (желче-солевую лактозную, Эделя- Кампельмахера, дезоксихолатную цитратную, лизиновуюя с железом, висмут-сульфитную и другие агаровые среды) - они препятствуют размножению посторонней микрофлоры, но обеспечивает рост сальмонелл. Продолжительность инкубации посевов на таких средах составляет 18 - 72 ч при 37 ºС.
Традиционно применяемые в лабораторной практике и современные методы позволяют эффективно диагностировать сальмонеллез и идентифицировать его возбудителя. Лабораторными анализами не следует пренебрегать ни в одном случае, когда имеются анамнестические и/или клинические основания подозревать данную инфекцию, поскольку правильно поставленный диагноз - основа эффективного лечения и профилактики ее распространения. Последнее обстоятельство особенно важно, поскольку бессимптомно инфицированные S. enterica люди и животные формируют резервуар сальмонелл.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 680 исследования.

Грипп птиц — высококонтагиозная вирусная болезнь птиц, характеризующаяся поражением кровеносной и центральной нервной систем, органов дыхания, пищеварения, выделения и яйцеобразования. Возбудителем болезни является РНК-содержащий вирус, относящийся к семейству ортомиксовирусов, роду вируса гриппа А.
Характерными клиническими признаками вируса гриппа птиц являются снижение продуктивности, угнетенное состояние, отказ от корма и воды, взъерошенность оперения, цианоз кожных покров, отек межчелюстного пространства, наличие подкожных кровоизлияний на конечностях, нарушение координации движений, синусит, ринит, конъюнктивит, диарея. Возможно бессимптомное течение болезни у вакцинированных против гриппа птиц, а также у диких водоплавающих птиц.
Характерными патологоанатомическими изменениями при ВГП являются кровоизлияния в подкожной клетчатке, слизистых и серозных оболочках, головном мозге, паренхиматозных органах, застойная гиперемия в органах и тканях.
Лабораторные исследования проб биологического, патологического материала проводятся с использованием методов исследования: выделение возбудителя с использованием вирусологического метода исследований на свободных от специфических патогенов, развивающихся эмбрионах кур или в чувствительной культуре клеток с его идентификацией в реакции торможения гемагглютинации, выявление генетического материала возбудителя методом полимеразной цепной реакции, выявление антигена возбудителя методами иммуноферментного анализа и в реакции диффузионной преципитации, выявление антител к возбудителю серологическими методами РТГА, ИФА, РДП.
Диагноз считается установленным, если получен один из следующих результатов:
выделен и идентифицирован возбудитель; выявлена РНК, специфичная для возбудителя.
Для выявления вируса гриппа птиц в лаборатории направляют биологический материал (трахеальные (ротоглоточные), клоакальные смывы (мазки), сыворотка крови, сборные пробы помет). Патологический материал (от трупов птиц отбирается: головной мозг, селезенка, трахея, легкие, сердце, почки, участки кишечника вместе с содержимым, перевязанные лигатурами). Участки кишечника отбираются отдельно от других внутренних органов. Допускается направление трупов птиц целиком. Так же проводятся исследования пищевой продукции, кормов с целью выявления вируса гриппа птиц.

Лептоспироз (Leptospirosis, инфекционная желтуха, собачья лихорадка, болезнь Васильева–Вейля) — инфекционная, природно-очаговая болезнь многих видов животных и птиц, проявляющаяся лихорадкой, гемоглобинурией (гематурией), желтушным окрашиванием и некрозами слизистых оболочек и кожи, атонией желудочно-кишечного тракта, абортами, рождением нежизнеспособного потомства, снижением продуктивности животных.

Польза мясокостной муки в корме для животных

Мясокостная мука – это, продукт, получаемый из переработки костей и мясных отходов животных. Она обладает высоким содержанием белка и других полезных питательных веществ.
Одним из ключевых преимуществ мясокостной муки является ее высокое содержание белка. Белок является основным строительным материалом для животных, и правильное питание с использованием мясокостной муки может способствовать здоровому росту и развитию животных.
Мясокостная мука также богата минералами, такими как кальций, фосфор и магний. Эти минералы необходимы для поддержания здоровых костей и зубов, а также для метаболических функций организм
В сельском хозяйстве мясокостная мука может использоваться в качестве добавки к кормам для животных. Она значительно повышает питательную ценность кормов и способствует улучшению здоровья и продуктивности животных.
Кроме того, мясокостная мука может быть использована в сельском хозяйстве для производства органических удобрений. Ее богатый состав позволяет использовать ее в качестве источника питательных веществ для растений. Мясокостная мука улучшает структуру почвы, способствует росту корней и повышает урожайность.
Это полезный и универсальный продукт, который может быть широко использован в сельском хозяйстве. Ее высокое содержание белка и минералов делает ее ценным питательным и функциональным компонентом в кормах для животных, а также в органических удобрениях для растений.
Мясокостная мука является одним из важных компонентов в производстве кормов для животных. Ее использование в кормах приносит ряд преимуществ и положительных эффектов на здоровье и рост животных.
Белок является основным строительным материалом организма животных и играет важную роль в образовании мышц, клеточных структур и в метаболических процессах. Питание животных кормами, содержащими мясокостную муку, позволяет обеспечить оптимальный уровень белка в их рационе.
Кальций, фосфор, железо и цинк важны для поддержания здоровых костей, зубов, крови и иммунной системы животных. Добавление мясокостной муки в корма позволяет улучшить питательную ценность рациона и обеспечить животных всем необходимым для их здоровья и развития.
Большой плюс мясокостной муки заключается еще и в ее аппетитности. Аромат и вкус мясокостной муки способствуют улучшению аппетита у животных и стимулируют их потребление корма. Это особенно важно при выращивании молодняка и при повышенных потребностях в питательных веществах, например, в период генерации или интенсивного роста.
Однако, при использовании мясокостной муки в кормах для животных необходимо соблюдать некоторые меры предосторожности. Важно выбирать качественную муку, произведенную из надежных и проверенных производителей. Также необходимо соблюдать рекомендации по дозировке и предотвращать перекормку животных, чтобы избежать возможных проблем с пищеварительной системой.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1867 проб материала, проведено 1957 исследований, выделено 21 положительный случай.

Гибель плода и последующие аборты у лошадей возможны в результате травм, неправильного кормления, отравлений, переутомления, содержания жерёбых кобыл в холодных конюшнях, врождённой и приобретённой патологии родовых путей, иммунопатологического состояния матери и плода, двоен и т.д. Гибель плодов возможна в результате их инфицирования различной условно патогенной микрофлорой. Примерно из 10% абортированных плодов выделяют кишечную палочку, кокки, микоплазмы, хламидии и другие микроорганизмы.
Аборты у лошадей возможны при некоторых острых лихорадочных инфекциях, например, гриппе. Многочисленные аборты у кобыл также установлены в результате воздействия нескольких неблагоприятных факторов. Зарегистрирована эпизоотия, сопровождавшаяся абортами в последней стадии жерёбости или гибелью новорождённых жеребят. Природа болезни окончательно не выяснена, исследователи пришли к выводу, что потери жеребят, вероятно, вызваны суммой причинных факторов, и заболевание условно определено как «патологический репродуктивный синдром у кобыл». Гибель плодов происходила независимо от возраста и породы кобыл, причём у последних отсутствовали какие-либо предвестники аборта или родов. Обычно плоды не донашиваются несколько недель до нормального срока выжерёбки или рождаются мёртвые жеребята. Основной признак, который привлекает внимание - изгнание плода одновременно с плодными оболочками (хориоаллантоисом), так называемый «красный мешок».
Однако главную опасность для коневодческих хозяйств представляют специфические инфекционные болезни, вызываемые вирусами герпеса лошадей (ринопневмония - вирусный аборт), артериовирусом (вирусный артериит), сальмонеллами (сальмонеллёзный аборт) и некоторыми другими возбудителями.
Инфекционная болезнь, проявляющаяся абортами у лошадей и рождением недоношенных жеребят. Возбудитель — Salmonella abortus equi.
Сальмонеллезный аборт у лошадей, который в прошлом был широко распространён, в настоящее время обычно регистрируют в зонах табунного коневодства. При возникновении заболевания возбудитель передаётся от больных (абортировавших) лошадей и скрытых носителей — жеребцов, рабочих лошадей, жеребят. Возбудитель может длительное время сохраняться в кишечнике, желчных ходах, выделяясь с фекалиями. У абортировавших кобыл возбудитель в течение 1–2 месяцев в большом количестве выделяется с плодными водами и оболочками, истечениями из влагалища.
Сальмонеллы проникают также через корм, воду, предметы ухода, пастбище. Вспышка болезни часто провоцируется при снижении резистентности лошадей вследствие плохих условий содержания.
В первые месяцы жерёбости наблюдают единичные случаи сальмонеллёзных абортов у лошадей. Опасность состоит в том, что аборты, происходящие на пастбищах, не регистрируются и кобыла распространяет инфекцию в табуне. Большой процент сальмонеллёзных абортов возможен у молодых кобыл (более 60%).
В течение 1–3 лет после массовых абортов количество выкидышей среди неблагополучного поголовья резко сокращается. У абортировавших кобыл формируется длительный и напряжённый иммунитет. Повторные аборты у лошадей происходят редко. Впоследствии по мере поступления молодых ремонтных кобыл и снижения напряжённости иммунитета аборты могут возникать вновь.
Для профилактической иммунизации разработана живая вакцина АЗВИ из штамма Е-181strR. Вакцина в условиях табунного коневодства Казахстана зарекомендовала себя как ареактогенный и иммуногенный препарат.
В связи с возможностью смешанной вирусно-бактериальной инфекции (ринопневмонии и сальмонеллёзного аборта), отличающейся особой тяжестью проявления, сотрудниками двух институтов — Алмаатинского зооветинститута и ВНИИ экспериментальной ветеринарии разработана схема комплексной вакцинации против ринопневмонии и сальмонеллёзного аборта.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 349 исследований.

Блютанг (катаральной лихорадкой или «синим языком»)- вирусная болезнь овец, коз, крупного рогатого скота, верблюдов, буйволов, оленей и других животных, относящихся к семействам полорогих, вилорогих, кабарговых, оленевых, верблюдовых. Возбудителем блютанга является РНК-содержащий вирус семейства Reoviridae, рода Orbivirus, выявлено 27 серотипов возбудителя.
Источниками возбудителя являются больные восприимчивые животные. У восприимчивых животных, за исключением овец, болезнь протекает бессимптомно, при этом выявляемость генома вируса у крупного рогатого скота сохраняется до 120 календарных дней после инфицирования, у других восприимчивых животных - до 60 календарных дней после инфицирования. У овец блютанг протекает остро, подостро или бессимптомно.
Острое и подострое течение блютанга у овец характеризуется лихорадкой, геморрагическим диатезом, воспалительно-некротическими поражениями слизистых оболочек рта, дыхательных путей и желудочно-кишечного тракта, эпителия венчика и основы кожи копыт, отеками межчелюстного пространства, синюшностью языка и его выпадением из ротовой полости, точечными кровоизлияниями на конъюнктиве и слизистой оболочке носовой полости с обильными носовыми истечениями, подсыхающими в виде корок, мышечной дегенерацией, истощением и выпадением шерсти. Отмечаются аборты или рождение слабого, нежизнеспособного потомства. При бессимптомном течении болезни у овец отмечаются снижение продуктивности и дерматиты.
Проведение исследований. От восприимчивых животных должны отбираться пробы крови в объеме 10 мл без антикоагулянта или с фактором свертывания крови для серологических исследований и пробы крови в объеме 10 мл с антикоагулянтом. Пробы биологического материала допускается хранить не более 10 календарных дней со дня отбора при температуре от 0 до 4°С, не допуская замораживания.
От трупов восприимчивых животных, абортированных плодов должны отбираться фрагменты (размером 3x3x3 см) селезенки, тканей плода, лимфатических узлов (нижнечелюстные, предлопаточные, мезентериальные - целиком). В случае доставки в лабораторию в течение 12 часов с момента отбора пробы патологического материала допускается хранить при температуре от 0 до 4°С. В иных случаях пробы патологического материала должны быть доставлены в лабораторию в замороженном виде.
Диагноз на блютанг считается установленным, если получен один из следующих результатов: выделен и идентифицирован возбудитель;выявлен антиген возбудителя или его генетический материал.
Лабораторные исследования в целях установления диагноза на блютанг должны проводиться с использованием следующих методов лабораторных исследований:
обратно-транскриптазная полимеразная цепная реакция в режиме реального времени;
вирусовыделение в культуре клеток, на куриных эмбрионах или на не иммунных к блютангу овцах.
Для установления серотипа возбудителя должен применяться один из следующих методов:
конкурентный иммуноферментный твердофазный анализ с использованием моноклональных антител, специфичных к различным серотипам возбудителя;реакция вируснейтрализации в культуре клеток; нуклеотидное секвенирование.

Сап - инфекционная болезнь лошадей, ослов, мулов и других однокопытных семейства лошадиных, а также семейства верблюжьих.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 62 пробы, проведено 298 исследований.

Метод тонкослойной хроматографии

Тонкослойная хроматография (ТСХ) является одним из вариантов планарной хроматографии. Планарная хроматография - способ анализа, в котором процессы разделения смеси веществ осуществляются в плоском слое сорбента (неподвижной фазе).
Ход работы. На результаты анализа в методе ТСХ влияет техника эксперимента. В методе ТСХ неподвижная фаза тонким слоем (100—300 мкм) наносится на стеклянную, металлическую или пластмассовую пластинку. В качестве сорбента чаще всего используют силикагель, оксид алюминия, целлюлозу, полиамид, кизельгур. На линию старта (1,5—2 см от края пластинки) очень малым пятном наносится анализируемая смесь и стандартные вещества. Для этого используют капилляры, микропипетки или микрошприцы. Затем пластинку в герметичной камере погружают в растворитель, который выполняет роль подвижной фазы. Под действием капиллярных сил растворитель движется вдоль слоя сорбента до финиша и с разной скоростью переносит компоненты смеси, что приводит к их разделению. Принцип разделения такой же, как в других видах хроматографии, — неодинаковое сродство разделяемых органических веществ к подвижной жидкой фазе и стационарному сорбенту. После достижения растворителем (элюентом) линии финиша пластинку высушивают и проводят идентификацию компонентов. Разделенные компоненты на пластинке или полоске бумаги образуют отдельные зоны (пятна). Многие вещества не обнаруживаются в видимой области, и для их определения невидимые зоны проявляют опрыскиванием пластины ТСХ специальными реагентами. Для обнаружения пятен можно использовать УФ-излучение или термическую деструкцию веществ. При наличии хлорорганических пестицидов на пластинке появляются пятна серо-черного цвета на белом фоне, которые располагаются в следующем порядке (снизу вверх): альфа-ГХЦГ, бета-ГХЦГ, ДДД, гамма-ГХЦГ, ДДТ, ДДЕ.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 926 проб материала, проведено 948 исследований, выделено 5 положительных случая.
Парвовирусная инфекция свиней (ПВИС) - контагиозная болезнь, характеризующаяся нарушением репродуктивной функции свиноматок, увеличением количества повторных осеменений, уменьшением численности пометов, ростом мертворожденных, муфицированных плодов, реже абортами.
Возбудитель – ДНК-содержащий Porcine Parvovirus, семейства Parvoviridae.
Парвовирусная инфекция свиней широко распространена во многих странах мира с развитым свиноводством. Источником возбудителя инфекции являются больные и переболевшие свиноматки, выделяющие возбудитель с фекалиями, плацентой, носовыми и вагинальными секретами, абортированными и мертворожденными плодами. Заражение происходит пероральным, аэрогенным, половым путем, трансплацентарно. Вирус обнаружен также и в сперме хряков-производителей, что не исключает распространение при случке и искусственном осеменении. Вирус выделяется с фекалиями до 2 недель после заражения свиней и сохраняется инфекционность до 135-140 дней.
Заболевание у свиноматок протекает бессимптомно. В первую неделю после заражения наблюдается незначительная лейкопения и иногда кратковременное повышение температуры. Наблюдается нарушение репродуктивной функции: мертворождаемость, мумификация, бесплодие, повторный приход в охоту после осеменения, уменьшение числа поросят в помете, иногда аборты.
У хряков-производителей болезнь протекает без видимых симптомов. Вирус не оказывает непосредственного действия на качество спермы. Однако генитальная локализация парвовируса у хряков является одной из причин репродуктивного нарушения у свиноматок.
У поросят, первичноинфицированных в 2-3-недельном возрасте, наблюдали потерю аппетита, диарею, рвоту, повышение температуры. У поросят, находившихся в контакте с инфицированными, обнаруживали специфические антитела, что свидетельствует о контагиозности инфекции.
Диагноз ставится с учетом эпизоотологических данных, клинического проявления, результатов патологоанатомического вскрытия.
Окончательный диагноз ставится по результатам лабораторных исследований, которые направлены на обнаружение вирусного антигена и специфических антител в РИФ, РТГА, РСК, РГА, ИФА, РДП, РН. Для исследования направляют мумифицированные плоды длиной не менее 16 см или их органы и транссудат из полостей тела, а также парные сыворотки крови свиноматок с нарушением репродуктивной функции.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1004 исследования.
Болезнь Ауески (псевдобешенство, инфекционный бульбарный паралич, инфекционный менингоэнцефалит)-остро протекающая болезнь многих видов домашних и диких животных, проявляющаяся расстройством ЦНС, сильным зудом и расчёсами (у всех животных, кроме свиней и пушных зверей).
Развитие болезни Ауески имеет некоторые особенности в зависимости от вида и возраста животного, степени поражения ЦНС, путей проникновения. Размножаясь в крови, вирус оказывает действие на клетки стенок кровеносных сосудов, обусловливая в конечном итоге явления отека и геморрагического диатеза в разных органах и особенно в головном мозге. Это сопровождается появлением нестерпимого зуда у животных большинства видов.
У свиней, напротив, изменения чаще локализуются в легких и брюшной полости и реже — в ЦНС, это связано с тем, что вирус редко проникает через гематоэнцефалический барьер. Именно поэтому у взрослых свиней клинические симптомы, свидетельствующие о тяжелом поражении нервной системы, как правило, отсутствуют, так же как и зуд.
Инкубационный период болезни длится от 2 до 20 дней. Для крупного рогатого скота характерны утрата аппетита, снижение удоя, повышение температуры тела до 40,9-41,9 °C в течение 2-3 первых дней болезни. Отмечают зуд в области глаз, губ, конечностей, корня хвоста. Животное непрерывно лижет зудящие места, трется об окружающие предметы. Шерстный покров на этих местах выпадает. Регистрируют кашель, слезотечение, слизистые истечения из носа, выпадение третьего века, судороги мышц в области живота и шеи, возбуждение. Животное испугано, мычит, рвется с привязи, бросается на стены, изгороди, натыкаясь на них. Иногда падает, бьется, после чего наступают оцепенение, угнетение, судороги. Агрессивность не выражена. Позывы к мочеиспусканию болезненные, отмечается жажда, но паралич не позволяет больному животному пить. Гибель наступает через 72-84 ч. Выздоровление отмечают редко.
У взрослых свиней течение болезни легкое, зуда нет, исход благоприятный. Поросята 1-10-дневного возраста не способны сосать, нежизнеспособны и погибают в течение 1 суток. У поросят, заразившихся в возрасте от 2 недель до 3-4 месяцев, заболевание протекает с признаками поражения нервной системы. Сначала животные начинают зевать, становятся сонливыми, неподвижными. Затем внезапно проявляются несогласованность движений, паралич глотки, возбуждение или угнетение.
При переболевании болезнью Ауески формируется напряжённый иммунитет сроком на 1-3 года. Применяется вакцинация животных против болезни Ауески, что создаёт в организме животного иммунитет продолжительностью 10-18 месяцев. Для выявления антител используют метод ИФА.

Сибирская язва - особо опасная зоонозная инфекционная болезнь млекопитающих животных, протекающая в молниеносной, острой, подострой и хронической формах.
Молниеносное течение болезни характеризуется внезапным падежом восприимчивого животного без проявления клинических признаков.
Клиническими признаками острого и подострого течения болезни являются повышение температуры тела до 41 - 42°С, сопровождающееся мышечной дрожью, учащением пульса и дыхания, беспокойством, угнетенным состоянием, отказом от корма, образованием на теле горячих припухлостей, отеками в области подгрудка, шеи, живота, а также коликами. Летальный исход при остром течении болезни наступает на 2 - 3 сутки.
Подострое течение болезни характеризуется вышеуказанными клиническими признаками, длится 5 - 8 суток со дня проявления клинических признаков.
Клиническим признаком хронического течения болезни является исхудание больного восприимчивого животного. Хроническое течение болезни длится до 90 суток.
В состоянии агонии у восприимчивого животного отмечается выделение из естественных отверстий кровянистой пенистой жидкости.
Возбудителем сибирской язвы является бактерия Bacillus anthracis, семейства Bacillaceae рода Bacillus (спорообразующая палочка, аэроб, факультативный анаэроб). Возбудитель в организме больного восприимчивого животного существует в вегетативной (капсульной) форме, во внешней среде - в споровой форме.
Возбудитель в вегетативной форме сохраняет жизнеспособность при температуре минус 10°С до 24 суток, в замороженном мясе при температуре минус 15°С - до 15 суток, в соленом мясе - до 45 суток, в невскрытых трупах животных - до 7 суток. Возбудитель погибает при температуре 55°С через 60 минут, при температуре 60°С - через 15 минут.
Возбудитель в споровой форме сохраняет жизнеспособность в почве до 50 и более лет, погибает под действием сухого жара при температуре 120 - 140°С через 2-4 часа, при температуре 150°С - через 60 минут, в автоклаве при температуре 110°С - через 10 минут, в 5-процентном растворе формальдегида - через 45 минут, в 10-процентном растворе соляной кислоты - через 30 минут, в 10-процентном растворе хлорамина - через 14 часов, в осветленном растворе хлорной извести, содержащем 5% активного хлора, - через 60 минут.
Инкубационный период болезни составляет от нескольких часов до 20 суток.
Источником возбудителя являются больные восприимчивые животные.
Передача возбудителя осуществляется алиментарным, аспирационным и трансмиссивным путями. Факторами передачи возбудителя являются секреты и экскреты больных восприимчивых животных, трупы восприимчивых животных, продукты животного происхождения и продукты их переработки, а также другие объекты окружающей среды, контаминированные возбудителем, включая почву, являющуюся резервуаром возбудителя сибирской язвы.
В серологическом отделе для диагностики сибирской язвы исследуют пробы кожевенного и мехового сырья в реакции преципитации (РП), согласно Наставлению по исследованию кожевенного и мехового сырья на сибирскую язву реакцией преципитации от 25.05.1971г., разделы II и III. Суть реакции преципитации заключается в осаждении растворимого антигена при действии антител в присутствии электролита. Видимый эффект реакции - помутнение (образование мутного кольца - преципитата).

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 26 проб, проведено 106 исследований. 

  Определения массовой доли белка методом Кьельдаля

Метод Кьельдаля предназначен для определения массовой доли белка в блюде или рационе с целью контроля его энергетической ценности. 
Суть метода состоит в разрушении органического вещества навески концентрированной серной кислотой в присутствии катализаторов (сульфата меди (II) и сульфата натрия). Выделившийся в результате реакции азот улавливается серной кислотой, и образуется сульфат аммония. При добавлении едкого натра выделяется аммиак, который отгоняют в раствор серной кислоты и оттитровывают. Для пересчёта на содержание белка количество азота, содержащегося в навеске, умножают на соответствующий коэффициент.
Метод Кьельдаля включает четыре основных этапа: 
Подготовка. Перед проведением исследования образец подвергают взвешиванию и гомогенизации, добавляют катализаторы. 
Минерализация (озоление). Осуществляется нагрев подготовленной пробы с серной кислотой до температуры в 360–450 °С в присутствии катализаторов. Связанный азот переходит в сульфат аммония. 
Дистилляция (отгонка). Полученный сульфат аммония подвергают воздействию концентрированной щёлочи, отгоняя в приёмную колбу с точным содержанием реактива (например, борной кислоты). Перегонка осуществляется до полного освобождения аммиака. 
Титрование. Осуществляется ручным или автоматическим способом с помощью серной или азотной кислоты. Полученные результаты используют, чтобы вычислить массовую долю общего азота и произвести дальнейшие расчёты. 

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 864 проба материала, проведено 897 исследований, выделено 9 положительных случаев.

Вирусы гриппа А относятся к семейству Orthomyxoviridae и характеризуются однонитчатым РНК-геномом негативной полярности, сегментированным на восемь фрагментов, кодирующих, по крайней мере, 10 белков. Два гликопротеида на поверхности вириона – гемагглютинин и нейраминидаза осуществляют процессы прикрепления к хозяйской клетке и высвобождения вирусного потомства. На сегодняшний день известно 16 субтипов гемагглютинина и 9 - нейраминидазы. Их различные сочетания определяют антигенный вариант вируса гриппа: H1N1 H3N2 H5N1, H7N9 и т.д. По клинико-патологическим характеристикам низкопатогенный грипп птиц проявляется в виде респираторных и кишечных расстройств, репродуктивных нарушений, и обусловливается вирусами со всеми разновидностями гемагглютинина. Высокопатогенный грипп птиц, как правило, вызывается только представителями субтипов Н5 и Н7, и служит причиной эпизоотий среди куриных с летальностью, достигающей 100%.

 В 1999-2000 гг. на северо-востоке Италии в птицеводческих хозяйствах распространился низкопатогенный грипп птиц H7N1, который затем перешел в высокопатогенный и вызвал 413 вспышек с гибелью свыше 13 миллионов птиц различных видов. В Австралии зарегистрировано 5 вспышек высокопатогенного гриппа птиц, обусловленных вирусом Н7. В ходе последней в 1997 г. в Новом Южном Уэльсе от цыплят изолированы два штамма вируса гриппа Н7N4. Большинство штаммов от птиц в США изолированы в специализированных рынках на северо-востоке страны; они включают главным образом вирусы субтипов Н7N2, Н7N3, Н5N2 и др.
Подавляющая часть штаммов Н7N2 относилась к одной линии, впервые появившейся в 1994 г., однако отмечались и новые интродукции вирусов Н7N2 и Н7N3. Начиная с 1997 г., основная линия вируса Н7N2 поразила коммерческое поголовье, по крайней мере, три раза, и вызвала наиболее масштабную вспышку в Вирджинии в 2002 г. Весной 2003 г. в Нидерландах возникла эпизоотия высокопатогенного гриппа Н7N7, которая затем перекинулась в Бельгию и Германию. В этих странах уничтожено более 33 млн. кур, а также значительное число больных и контактировавших с птицами свиней. По данным ВОЗ, начиная с 1959 г., в мире зарегистрирована 21 эпизоотия ВГП, из которых пять характеризовались значительным охватом ферм и большими экономическими потерями.
Таким образом, имеющиеся сведения о возбудителе гриппа А/Н7 указывают на его большую эпизоотическую актуальность в ряду других разновидностей вируса. Последние события, связанные с вирусом субтипа H7N9, свидетельствуют о необходимости постоянного контроля над циркуляцией возбудителей гриппа в дикой орнитофауне.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 344 исследования.

КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА ДЕЗИНФЕКЦИИ

Критерии контроля качества дезинфекции. Бактериологический контроль качества дезинфекции осуществляют сотрудники ветеринарных лабораторий периодически или в сроки, установленные с учетом эпизоотической обстановки, технологии производства, целей дезинфекции и других конкретных особенностей.
При бактериологическом контроле качества дезинфекции определяют наличие на поверхностях обеззараживаемых объектов жизнеспособных клеток санитарно-показательных микроорганизмов — бактерий группы кишечных палочек (Escherichia, Citrobacter, Enterо bacter), стафилококков (S. aureus, S. epidermatis, S. saprophiticus), микобактерий или спорообразующих аэробов рода Bacillus.
По наличию или отсутствию бактерий группы кишечных палочек определяют качество профилактической и вынужденной (текущей и заключительной) дезинфекции при бруцеллезе, эшерихиозе, лептоспирозе, листериозе, болезни Ауески, лейкозе, пастереллезе, сальмонеллезах, трихомонозе, кампилобактериозе, трипаносомозе, токсоплазмозе, инфекционном ринотрахеите, парагриппе и вирусной диарее крупного рогатого скота, контагиозной эктиме, инфекционной агалактии и контагиозной плевропневмонии овец и коз, отечной болезни, инфекционном атрофическом рините, дизентерии, трансмиссивном гастроэнтерите, балантидиозе, гемофилезной плевропневмонии и роже свиней, ринопневмонии лошадей, пуллорозе-тифе птиц, миксомотозе кроликов, микоплазмозе птицы.
По наличию или отсутствию стафилококков контролируют качество текущей дезинфекции при туберкулезе, болезнях, вызываемых спорообразующими микроорганизмами, и экзотических инфекциях, а также качество заключительной дезинфекции при туберкулезе, аденовирусных инфекциях, ящуре, оспе, туляремии, орнитозе (пситтакоз), диплококкозе, стафилококкозе, стрептококкозе, некробакте- риозе, катаральной лихорадке, бешенстве, чуме животных всех видов, злокачественной катаральной горячке, ринопневмонии и паратуберкулезном энтерите крупного рогатого скота, инфекционной катаральной лихорадке, копытной гнили и инфекционном мастите овец, везикулярной болезни свиней, инфекционной анемии, инфекционном энцефаломиелите, эпизоотическом лимфангите, сапе и мыте лошадей, гепатите утят, вирусном энтерите гусят, инфекционном бронхите, ларинготрахеите, болезни Марека, болезни Гамборо, ньюкаслской болезни, вирусном энтерите, алеутской болезни, псевдо- монозе и инфекционном гепатите плотоядных, хламидиозах, риккетсиозах, энтеровирусных инфекциях, гриппе сельскохозяйственных животных и птицы, трихофитии, микроспории, других микозах животных и птицы, актиномикозе крупного рогатого скота, а также болезнях, вызываемых неклассифицированными вирусами, при дезинфекции вагонов II категории. Качество заключительной дезинфекции при микозах контролируют также по выделению соответствующих возбудителей.
Качество заключительной дезинфекции при туберкулезе контролируют по выделению стафилококков и микобактерий. При сибирской язве, эмфизематозном карбункуле, брадзоте, злокачественном отеке, других споровых инфекциях и экзотических инфекциях по наличию или отсутствию спорообразующих микроорганизмов рода Bacillus.