Отчетный период с 24.01.2025г. по 30.01.2025г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 1838 проб сыворотки крови животных, проведено 6605 исследований. Выявлено: 6 положительных проб на бруцеллёз у крупного рогатого скота, 8 положительных проб по лептоспирозу у лошадей.

Листериоз (Listeriosis) — инфекционная болезнь животных и человека.
К листериозу восприимчивы овцы, козы, крупный рогатый скот, свиньи, лошади, кролики, куры, гуси, утки, индейки. Болеют животные всех возрастов, особо чувствительны молодняк и беременные животные. Отмечены случаи заболевания листериозом кошек, собак и обезьян. Источник возбудителя инфекции — больные и переболевшие животные, выделяющие листерий во внешнюю среду с истечением из носовой полости и из половых органов (при абортах), с абортированным плодом, с калом, мочой, молоком (при маститах), а также здоровые животные листерионосители, играющие роль в возникновении вспышек листериоза. Основной резервуар возбудителя в природе — свободноживущие грызуны, являющиеся причиной заражения листериозом сельскохозяйственных животных, чаще всего через воду, корма, загрязнённые выделениями грызунов. Отмечена большая роль некачественного силоса в появлении и распространении листериоза, в особенности у овец. В циркуляции возбудителя листериоза между дикими животными (особенно грызунами), по-видимому, определённую роль играют клещи. В естественных условиях заражение листериозом, очевидно, происходит через слизистую оболочку носовой и ротовой полостей, конъюнктиву, пищеварительный тракт, повреждённую кожу. Листериоз проявляется спорадически, реже — в виде эпизоотии, у овец носит сезонный характер, проявляется в зимне-весенний период, что связано с активизацией механизма передачи возбудителя (миграция грызунов-листерионосителей к животноводческим помещениям и складам кормов) со снижением неспецифической резистентности организма. Для листериоза характерна также стационарность.
Инкубационный период 7—30 суток. Течение острое, подострое и хроническое. Листериоз проявляется в несколько формах: нервной, септической, смешанной, бессимптомной, а также с преимущественным поражением половых органов и вымени. У крупного рогатого скота чаще поражается нервная система. Болезнь начинается угнетением, вялостью, снижением аппетита. Через 3—7 суток у животных отмечают некоординируемые движения, судороги, приступы буйства, парезы нижней челюсти и отдельных групп мышц, потерю зрения, конъюнктивит. Температура тела повышается или остаётся в пределах нормы. Длительность болезни до 10 суток. Поражение половой системы проявляется абортами, задержанием последа, метритами. Иногда возникает мастит. У телят листериоз чаще всего протекает в виде септицемии. У овец и коз также поражается нервная система. Вначале отмечают необычное поведение животного, снижение аппетита, сонливость, конъюнктивит и ринит. Температура тела повышается до 40,5—41°C или остаётся в пределах нормы. Через 1—2 суток появляются признаки поражения нервной системы: круговые движения, потеря равновесия, оглумоподобное состояние, судороги, искривление шеи, расширение зрачков, потеря зрения. Болезнь длится от несколько часов до 10 суток. У ягнят чаще наблюдают септицемическую форму (поносы, лихорадка). У беременных овец и коз возникают аборты и маститы. У взрослых свиней отмечают исхудание, анемию, кашель, нарушение координации движений, абсцессы в различных органах и тканях, аборты и рождение мёртвых поросят. У поросят чаще наблюдают поражение нервной системы: расстройство координации движений, своеобразную «ходульную» походку, манежные движения, мышечную дрожь, судороги, возбуждение. Температура тела повышена, затем снижается и падает ниже нормы. При септической форме у поросят отмечают угнетение, отказ от корма, слабость, затруднённое дыхание, посинение кожи в области ушей и живота, реже — понос. Температура тела повышена. Длительность болезни до 3 суток.
Серологические исследования для диагностики листериоза проводят согласно Методическим рекомендациям по лабораторной диагностике листериоза животных и людей от 13.02.1987 г. п. 8.2 метод РСК.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 18 проб, 
проведено 65 исследований.

Зеараленон в зерновой продукции

Зеараленон – органическое соединение, относящееся к группе нестероидных микотоксинов, обладающий эстрогенной активностью и продуцируемый Fusarium graminearum, Fusarium culmorum и, в меньшей степени, Fusarium equiseti и Fesarium crookwellense.
Лучше всего данная плесень развивается при температуре выше 15 °С и высокой влажности, причем поражает как растения в поле, так и зерно в хранилищах. Обнаруживается на многих зерновых, особенно часто – на рисе, кукурузе, сорго и изготавливаемых из них продуктах. Кроме того – на бананах, черном перце, орехах и проч. При ферментации и термической обработке не разрушается.
Вещество обладает ярко выраженной эстрогенной активностью, у скота угнетает репродуктивные способности, иммунную систему, вызывает генные изменения.
Зеараленон может работать в синергии с ДОН, поскольку они синтезируются Fusarium graminearum и Fusarium culmurom.
Острой токсичностью по отношению к людям не обладает, однако предполагается, что соединение способствует возникновению онкологических заболеваний молочных желез.
В отделе химических исследований зеараленон определяют методом ВЭЖХ. Метод основан на экстракции зеараленона из пробы хлороформом, очистке полученного экстракта и определении зеараленона методом обращенно-фазовой жидкостной хроматографии с флуориметрическим детектированием. Для проведения исследования используется жидкостный хроматограф «Люмахром» с детектором «Люмохром ФЛД 2410 Флюорат 02-2М»

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 48 проб материала, проведено 48 исследований, положительных случаев не выявлено.

Эталонный тест-штамм – это чистая культура микроорганизма, данного вида, которая имеет характерные физиологические, морфологические и биохимические свойства. Направления использования эталонных тест-культур микроорганизмов:
• для проверки ростовых свойств питательных сред;
• для валидации методов контроля качества;
• для проверки пригодности методов испытания.
Контрольные штаммы хранят в лиофилизированном состоянии, в замороженном виде, в среде с криопротектором или на среде хранения в условиях и на протяжении сроков, приведенных ниже.
Восстановление контрольных штаммов микроорганизмов.
Для получения рабочих культур делают высев из субкультуры референтного образца. Со среды хранения штамм рассевают на плотные неселективные питательные потребности соответствующих микроорганизмов (1 пассаж). Посевы инкубируют в подходящих для роста условиях. При отсутствии роста на плотной среде культуру засевают на соответствующую жидкую питательную среду. После ингибирования делают высев на плотную питательную среду (1 пассаж). Так как микроорганизмы после 1 пассажа обладают пониженной жизнеспособностью, рекомендуется в качестве рабочих культур использовать культуры 2 или 3 пассажа.
Выросшую на питательном агаре культуру контрольного штамма визуально проверяют на чистоту роста и отсутствие диссоциации или просматривая под стереоскопическим микроскопом (лупой) в «проходящем свете». При выявлении контаминации или диссоциации следует уничтожить использованную пробирку с субкультурой референтного образца.
Оценку качества испытуемой среды по микробиологическим критериям проводят с помощью одного из методов:
• качественного;
• полуколичественного;
• количественного.
Выбор метода контроля определяется видами питательных сред и целями контроля (чувствительность, специфичность, селективность и т.д.).
Перечень необходимых контрольных штаммов указывается в сертификате на данную коммерческую среду либо указан в приложении к настоящей стандартизованной технологии на основные питательные среды.
При использовании контрольных штаммов по их росту на испытуемой питательной среде можно оценить следующие микробиологические критерии качества питательной среды:
• типичность морфологических, культуральных характеристик микроорганизма;
• скорость роста;
• чувствительность (продуктивность) среды;
• селективность (для селективных сред);
• специфичность, выраженность отличительных признаков различных микроорганизмов для дифференциально-диагностических сред;
• величина зон задержки роста вокруг дисков с антибиотиками для контроля сред и качества дисков с антибиотиками для диско-диффузионного метода определения чувствительности микроорганизмов к антибиотикам.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1761 исследование.
Здоровье животных зависит от качества и безопасности корма Употребление кормов, обсемененных микроорганизмами, провоцирует различные заболевания желудочно-кишечного тракта, поражает иммунную систему и может привести к летальному исходу.
При нарушении технологического процесса приготовления и условий хранения в кормах могут развиваться различные микроорганизмы, такие как кишечная палочка (Escherichia coli), сальмонелла (Salmonella), анаэробные микроорганизмы клостридии (Clostridium), энтерококки (Enterococcus), бактерии рода Proteus и др. Поэтому важно регулярно осуществлять микробиологический контроль кормов.
При микробиологическом исследовании кормов определяют показатели:
- корма растительного происхождения исследуются на отсутствие сальмонелл, энтеропатогенных типов кишечной палочки, анаэробов, ботулотоксина (токсин);
- корма животного происхождения исследуются не только на вышеперечисленные показатели, но и на определение общего количества микробных клеток в 1 г корма, а также на наличие энтерококков и бактерий рода Proteus.
При обнаружении сальмонелл, энтеропатогенных типов кишечной палочки и протея корм запрещается использовать животным без дополнительной обработки. Вторичную стерилизацию проводят в соответствии с технологическими режимами производства этих кормов или же этот корм подвергается проварке при температуре не ниже 100 градусов в течение 1 часа и дальнейшей обработке, согласно установленному технологическому режиму приготовления кормов к скармливанию.
При выявлении в кормах анаэробных микроорганизмов и их токсинов такие корма запрещается использовать животным без дополнительной термической обработки, которую проводят при температуре 120-130 градусов в течение 2 часов. После стерилизации корма подвергают бактериологическому исследованию с постановкой биологической пробы на наличие анаэробов и их токсинов, и при получении отрицательных результатов они могут быть использованы на кормовые цели. При положительных повторных результатах исследования эти корма уничтожают.
Корма животного происхождения, производство которых связано с тепловой обработкой, имеющие бактериальную обсемененность свыше 500 тыс. микробных клеток в 1г., при отсутствии патогенных микроорганизмов, подлежат повторной стерилизации согласно технологическим инструкциям или могут быть направлены для производства гранулированных кормов с термической обработкой, а также проварке.
Оценка санитарного состояния кормов включает в себя органолептический, микробиологический. Органолептическое исследование включает в себя определение цвета и запаха.
Во избежание обсемененности кормов различными микроорганизмами необходимо соблюдать ветеринарно-санитарные правила производства, обработки, хранения корма, в том числе при транспортировке.
Реализация и использование некачественных кормов для сельскохозяйственных животных влечет серьезные риски распространения инфекционных заболеваний и производство некачественной продукции животноводства.

Отчетный период с 17.01.2025г. по 23.01.2025г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 397 проб сыворотки крови животных, проведено 603 исследования. Выявлено: 1 положительная проба по лептоспирозу у крупного рогатого скота, 1 положительная проба по лейкозу крупного рогатого скота.

Инфекционный эпидидимит мелкого рогатого скота (баранов) – хронически протекающая болезнь, поражающая как взрослых животных, так и молодняк. Возбудителем болезни является один из видов группы Brucella, а именно - Brucella ovis.
Наиболее частое клиническое проявление болезни у половозрелых баранов – эпидидимиты и орхиты, у овцематок иногда наблюдаются аборты, у молодняка болезнь протекает в бессимптомной форме.
Источник возбудителя инфекции – больные животные. Больные бараны выделяют возбудителя со спермой, овцы – с плодом, плодовыми оболочками и водами. Заражение происходит главным образом через слизистые оболочки половых путей при случке.
Диагноз ставят на основании результатов серологических, аллергических и бактериологических исследований с учетом эпизоотологических данных и клинических признаков болезни.
В серологическом отделе для диагностики инфекционного эпидидимита мелкого рогатого скота ставят реакцию длительного связывания комплемента на холоде (РДСК). Суть реакции заключается в обнаружении специфических антител в сыворотке крови овец к антигенам из бруцелл вида овис.
Лечение больных животных нецелесообразно.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 19 проб материала, проведено 29 исследований, положительных случаев не выявлено.
Лигулез – это распространенное заболевание рыб, обитающих в пресноводных водоемах, развивающееся в результате заражения плероцеркоидами (личиночная стадия) ленточных паразитов из родов Ligula, Digramma и Schistocephalus, относящихся к семейству Ligulidae. Личинки поражают практически все виды, относящиеся к семейству карповых.
Лигулидозы распространены почти повсеместно и регистрируются в реках, озерах, лиманах, водохранилищах и прудах. Заболевания чаще всего вызывает вид плероцеркои-дов: L. intestinalis (заболевание называется лигулезом).
Плероцеркоиды  ̶  крупные ремневидные гельминты белого или слегка желтоватого цвета, достигающие 5-120 см длины и 0,5-1,7 см ширины. На переднем конце стробилы находятся щелевидные ботрии, с помощью которых паразит прикрепляется к тканям хо-зяина.
Заболеванию лигулезом подвержены многие виды рыб: лещ; плотва; тарань; крас-ноперка; карась; густера; уклея; елец; пескарь; храмуля; усач; маринка; верховка; гольян и некоторые другие.
Заражение чаще всего происходит в прибрежных зонах, на мелководье, где рыбы питаются зоопланктоном. Рыбы, инвазированные плероцеркоидами ремнецов, чаще всего выявляются при отлове товарной рыбы в 2-4-летнем возрасте.
Экстенсивность инвазии промысловой ихтиофауны может достигать 40-60% при интенсивности 2-4 гельминта.
Симптомы заражения:
1. Пораженные особи держатся в поверхностном слое воды;
2. Плавают на боку или брюшком кверху;
3. Легко подвергаются вылову;
4. При сильном волнобое такие рыбы не могут уйти в глубину водоема, а прибиваются к зарослям и камышам;
5. В местах, где находится больная рыба, появляются большие колонии птиц, которые усиленно вылавливают их.
6. При осмотре рыбы обращает на себя внимание вздутие брюшка, особенно в передней части. Оно становится твердым, благодаря скоплению в нем плероцеркоидов лигулид. Иногда ремнецы так сильно давят на брюшную стенку, что она разрывается и паразиты выходят из брюшной полости наружу;
7. Рыба внешне выглядит истощенной
Диагноз устанавливают путем вскрытия рыбы и обнаружения в брюшной полости плероцеркоидов ремнецов. Затем определяют их видовую принадлежность.
Для борьбы с лигулидозами проводят комплекс мероприятий, основанный на особенностях биологии паразита, эпизоотологических закономерностях заболевания и специфике рыборазведения, принятой для прудового хозяйства или естественного водоема.
Данное заболевание не является опасным для человека. У многих рыболовов после вылавливания подобной карповых видов наблюдается отвращение.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 59 проб, проведено 334 исследования.

Дезоксиниваленол в кормах

Микотоксины - одни из наиболее опасных веществ, загрязняющих продукты питания и корма для животных. Постоянное поступление малых количеств микотоксинов с пищевыми продуктами представляет опасность для здоровья человека. Микотоксины – это, токсичные вещества, продуцируемые микроскопическими плесневыми грибами. Известно, более 250 видов грибов, способных произвести несколько сотен микотоксинов. Одним из самых распространенных является дезоксиниваленол.
Дезоксиниваленол относится к типу Трихотеценовые микотоксины. Он является вторичным метаболитом, вырабатываемым некоторыми разновидностями плесневых грибов рода Fusarium (особенно F.Graminearum). Наиболее часто поражаются пшеница, кукуруза и ячмень. Инфицирование происходит в период цветения. Одним из факторов риска являются влажные погодные условия. Если дезоксиниваленол попадает в корма для животных, то вызывает снижение аппетита или полный отказ откорма. Его действие распространяется на весь домашний скот, но больше всего ему подвержены свиньи.
Также дезоксиниваленол обладает иммуносупрессирующим свойством, у животных развиваются вторичные инфекции – диарея и респираторные болезни. Из-за своего рвотного действия дезоксиниваленол также получил название «вомитоксин» (в переводе – рвотный токсин).
В настоящее время уровень содержания дезоксиниваленола в продукции пищевой промышленности и кормах регулируется более чем в 100 странах. В России действуют технические регламенты Таможенного союза 015/2011 «О безопасности зерна» и 021/2011 «О безопасности пищевой продукции», согласно которым нормы содержания дезоксиниваленола в зерне и продуктах его переработки составляют от 0,7 до 1,0 мг/кг.
В отделе химических исследований массовую долю дезоксиниваленола определяют методом ВЭЖХ по ГОСТ Р 51116-2017 Комбикорма, зерно и продукты его переработки. Определение содержания дезоксиниваленола методом высокоэффективной жидкостной хроматографии, п. 8. Сущность метода заключается в экстракции ДОН из анализируемой пробы смесью ацетонитрила с водой, очистке экстракта с помощью колоночной хроматографии и определении ДОН с использованием обращенно-фазовой ВЭЖХ с фотометрическим детектированием.          

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1359 исследований.
Блютанг (катаральная лихорадка овец, «синий язык») - вирусная болезнь овец, коз, крупного рогатого скота, верблюдов, буйволов, оленей и других животных, относящихся к семействам полорогих, вилорогих, кабарговых, оленевых, верблюдовых.  Возбудителем блютанга является РНК-содержащий вирус семейства Reoviridae, рода Orbivirus (27 серотипов). Проведение исследований. От восприимчивых животных должны отбираться пробы крови в объеме 10 мл без антикоагулянта или с фактором свертывания крови для серологических исследований и пробы крови в объеме 10 мл с антикоагулянтом. Пробы биологического материала допускается хранить не более 10 календарных дней со дня отбора при температуре от 0 до 4°С, не допуская замораживания.
От трупов восприимчивых животных, абортированных плодов должны отбираться фрагменты (размером 3x3x3 см) селезенки, тканей плода, лимфатических узлов (нижнечелюстные, предлопаточные, мезентериальные - целиком). В случае доставки в лабораторию в течение 12 часов с момента отбора пробы патологического материала допускается хранить при температуре от 0 до 4°С. В иных случаях пробы патологического материала должны быть доставлены в лабораторию в замороженном виде.
Диагноз на блютанг считается установленным, если получен один из следующих результатов: выделен и идентифицирован возбудитель; выявлен антиген возбудителя или его генетический материал.
Лабораторные исследования в целях установления диагноза на блютанг проводиться с использованием методов лабораторных исследований: обратно-транскриптазная полимеразная цепная реакция в режиме реального времени; вирусовыделение в культуре клеток, на куриных эмбрионах или на не иммунных к блютангу овцах.
Методом ИФА выявлеяют антитела, спечифичных для всех серотипов вируса блютанга в сыворотках (в плазме овец, коз, крупного рогатого скота, оленей. В лаборатории исследование проводятся набором «BTV-ИФА-АТ» ФКП «Ставропольская биофабрика» с помощью него возможно обнаружить антитела ко всем серотипам вируса уже через 7-15 дней заражения.
Для установления серотипа возбудителя применяют: конкурентный иммуноферментный твердофазный анализ с использованием моноклональных антител, специфичных к различным серотипам возбудителя; реакция вируснейтрализации в культуре клеток; нуклеотидное секвенирование.
Методом ПЦР выявляется генетический материал возбудителя блютанга (РНК вируса блютанга). Материал для исследования: патологический материал, смывы, кровососущие насекомые, биологический материал (цельная кровь, сыворотка крови, сперма и др.). В лаборатории исследование проводятся набором «ПЦР-БЛЮТАНГ-ФАКТОР» ООО «ВЕТ ФАКТОР», г.Москва, г.Троицк.

Отчетный период с 13.12.2024г. по 19.12.2024г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 600 проб сыворотки крови животных и 1 проба молока, проведено 1281 исследование. Положительных проб не выявлено.
Лептоспироз (Leptospirosis, инфекционная желтуха, собачья лихорадка, болезнь Васильева–Вейля) — инфекционная, природно-очаговая болезнь многих видов животных и птиц, проявляющаяся лихорадкой, гемоглобинурией (гематурией), желтушным окрашиванием и некрозами слизистых оболочек и кожи, атонией желудочно-кишечного тракта, абортами, рождением нежизнеспособного потомства, снижением продуктивности животных.
Возбудитель был выявлен А. Вейлем в 1886 году и Н. П. Васильевым в 1888 году. Возбудители лептоспироза — лептоспиры, принадлежащие к семейству спирохет, которые занимают промежуточное положение между бактериями и простейшими. Лептоспира состоит из тонкой осевой нити, которую окружает цитоплазматическая спираль. Длина лептоспир колеблется от 5 до 20, толщина — от 0,1 до 0,2 микрон. Концы лептоспир крючкообразно загнуты и имеют пуговчатое утолщение. У отдельных лептоспир наблюдаются и безкрючковые формы. Размножаются лептоспиры путем поперечного деления материнской клетки на две или три части.
Лептоспиры отличаются большим разнообразием серотипов, разделенных на 19 серогрупп. У сельскохозяйственных животных выделено 7 серогрупп.
Лептоспироз сезонная болезнь. В умеренном климате пик заболеваемости приходится на лето и первую половину осени.
На территории РФ возбудителями лептоспироза сельскохозяйственных животных и собак являются лептоспиры серогрупп: Pomona, Tarassovi, Grippotyphosa, Sejroe, Hebdomadis, Icterohaemorrhagiae, Canicola; в природных очагах установлена циркуляция лептоспир серогрупп: Grippotyphosa, Pomona, Sejroe, Javanica, Icterohaemorrhagiae, Bataviae, Australis, Autumnalis.
К лептоспирозу восприимчивы все сельскохозяйственные животные (крупный и мелкий рогатый скот, лошади, овцы, свиньи), домашние (собаки, кошки), дикие плотоядные (лисицы, волки, шакалы), пушные звери (норки, песцы), грызуны (нутрии, мыши, полевки, крысы), хищные, домашние и дикие птицы.
Основной источник инфекции — мыши, крысы, ежи, землеройки. Грызуны являются пожизненными носителями и основными резервуарами инфекции. Вторичными носителями лептоспир являются КРС, МРС, свиньи, собаки/лисицы.
Резервуаром и источником лептоспироза служат больные и переболевшие лептоспирозом животные, которые выделяют из организма лептоспир во внешнюю среду с молоком, мочой (в 1мл мочи больных свиней содержится от 500 000 до 750 000 лептоспир), фекалиями, а также с выделениями из легких и половых органов. Лептоспионсительство у разных видов животных разное: у крупного рогатого скота, овец и коз - до 6 месяцев, свиней-12 месяцев, лошадей -7 месяцев, собак - от нескольких месяцев до 3-4 лет, кошек - до 4 месяцев, лис - до 17месяцев. Лептоспироз еще называют «водной лихорадкой», потому что основной путь передачи инфекции происходит через воду. Второстепенные пути передачи это алиментарный и контактный.
Факторами передачи возбудителя инфекции при лептоспирозе являются водоемы, загрязненные мочой больных животных. При этом наибольшую опасность представляют застойные водоемы, заболоченные луга. Заражение здоровых животных происходит через корма, воду, подстилку, пастбища и почву, которые уже инфицированы выделениями больных и животных-лептоспироносителей, при поедании трупов грызунов (свиньи, собаки, кошки, лисицы), необезвреженных продуктов убоя больных животных (песцы, лисицы). Лептоспиры обладают способностью проникать в организм животных через поврежденную кожу и слизистые оболочки. Молодняк может заразиться лептоспирозом через молоко, полученное от больных матерей. 

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 14 проб, проведено 33 исследования.
За отчетный период выявлено 2 положительных результата: 
В 1 пробе силоса кукурузного массовая доля сырой клетчатки в сухом веществе – выше нормы
В 1 пробе силоса кукурузного установлена общая токсичность.

Биотестирование на стилонихиях (Stylonychia mytilus)

Stylonychia – это, род инфузорий подкласса Hypotrichia. Виды Stylonychia очень распространены в пресной воде и почве, их можно найти на нитчатых водорослях, поверхностных пленках и среди частиц осадка. Как и его родственники, Stylonychia имеет реснички, сгруппированные в мембранеллы вдоль рта и усики по всему телу. Члены группы являются плотоядными и охотятся на других простейших и бактерий.
Stylonychia mytilus применяют при методе определения общей токсичности кормов. Методы биотестирования (экспресс-методы) являются качественными. Они дают возможность оценить общую токсичность корма. Этот метод позволяет в течение времени от 1,5 до 3 ч провести биотестирование кормов на инфузориях: стилонихиях.
Сущность метода заключается на извлечении из исследуемых кормов различных фракций токсических веществ параллельно ацетоном и водой с последующим воздействием этих экстрактов на стилонихий. Оценку результату биотеста дают по реакции гибели инфузорий. Безопасным в этом случае следует считать корм, определенный как нетоксичный при одновременном параллельном исследовании как ацетонового, так и водного экстракта.
Приблизительно через год-полтора работы с культурой она стареет, теряет однородность, жизнеспособность, подвижность, неадекватно реагирует на токсиканты. В этом случае необходимо раз в год подсаживать свежий клон стилонихий к старой культуре или полностью заменять ее на новую.
Для получения достоверных результатов биотестирования необходимо регулярно проверять состояние стилонихий, их подвижность, а один раз в месяц - реакцию культуры на действие модельного токсиканта, для чего каплю со стилонихиями помещают в лунку предметного стекла и после подсчета их количества заливают 0,2 см3 раствора модельного токсиканта рабочей концентрации 0,1 мг/дм3. Через 30 мин подсчитывают количество оставшихся живыми стилонихий. Результат считают удовлетворительным, если выживают не менее 50% стилонихий.  
В отделе химических исследований общую токсичность кормов определяют по ГОСТ 31674-2012 Корма, комбикорма, комбикормовое сырье. Методы определения общей токсичности.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1 проба материала, проведено 2 исследования, положительных результатов не выявлено.

Некробактериоз — инфекционная болезнь домашних и диких животных, характеризующаяся гнойно- некротическими поражениями кожи и подлежащих тканей, слизистых оболочек и внутренних органов. Некробактериозом может заболеть и человек.  Возбудитель болезни — бактериум некрофорум — строгий анаэроб, грамотрицательный, неподвижный, не образующая спор и капсул палочка, весьма полиморфна, способна принимать причудливые формы. К некробактериозу восприимчивы все виды сельскохозяйственных животных и большинство диких. Чаще других болеют северные олени и мелкий рогатый скот, реже — крупный рогатый скот и свиньи.
Течение и симптомы болезни зависят от вида животного, возраста, локализации болезни, степени вирулентности возбудителя. Инкубационный (скрытый) период составляет 1-3 дня. У молодняка болезнь протекает остро, у взрослых — подостро и хронически. Болезнь может протекать с преимущественным поражением кожи и слизистых оболочек, некрозом паренхиматозных органов или оститом и остеомиелитом. Чаще всего первичный процесс локализуется на конечностях, реже на коже шеи, туловища, вымени. У больного животного повышается температура тела до 40 и выше градусов, которая держится в течение 1-2 дней, а затем снижается. У животного наблюдается сильное угнетение, снижается аппетит. Больная конечность сильно увеличена в объеме, становится горячей и очень болезненной. При благоприятном течении болезни острые процессы затухают, к 10-12 дню кожа и соединительная ткань в местах поражения некротизируется и отпадает, рана начинает постепенно заживать, и животное через 3-4 недели выздоравливает. При злокачественном течении болезни патологический процесс с одного участка распространяется на другие, при этом некроз ткани происходит как вширь, так и вглубь, образуя свищевые ходы. У животного постепенно развивается гнойно-некротическое, или гангренозное поражение венчика и кожи в межкопытной щели, пяточной и зацепной части подошвы. В местах поражения образуются язвы и свищи, секрет из них имеет резкий гнилостный запах. В результате развития процесса идет поражение копытной кости с сосудами, копытца уродливо разрастаются, наступает отслоение роговой части, в дальнейшем происходит отпадание рогового башмака. Болезнь может длиться месяцами. При хроническом течении патологический процесс распространяется на сухожилия, связки, суставы, иногда поражая при этом кости и костный мозг, может переходить на кожу шеи, туловища, на вымя. Возможно развитие гнойно-некротических очагов в различных органах (печени, легких). При неоказании своевременной и квалифицированной помощи животное погибает от истощения или септикопиемии.

Отчетный период с 20.12.2024г. по 16.01.2025г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 3405 проб сыворотки крови животных, проведено 6767 исследований.  Проведено исследование 1 пробы молока (КР с молоком) на бруцеллёз.  Выявлено: 6 положительных проб по бруцеллёзу у крупного рогатого скота, 243 положительных пробы по лейкозу крупного рогатого скота, 2 положительных пробы по лептоспирозу у лошадей.

Инфекционная анемия лошадей (ИНАН) - вирусная болезнь лошадей и других непарнокопытных животных, характеризующаяся поражением кроветворных органов, рецидивирующей лихорадкой, геморрагическими явлениями на фоне пожизненного вирусоносительства.
ИНАН характеризуется сверхострым, подострым, хроническим и бессимптомным течением.
Восприимчивые животные, больные ИНАН, остаются вирусоносителями пожизненно.
Возбудителем ИНАН является РНК-содержащий вирус семейства Retroviridae подсемейства Orthoretrovirinae рода Lentivirus.
Возбудитель устойчив к физико-химическим воздействиям. В моче, навозе возбудитель сохраняется до 75 суток, в кормах - до 270 суток.
Инкубационный период болезни составляет от 7 до 90 суток.
Источником возбудителя являются больные восприимчивые животные.
Передача возбудителя осуществляется трансмиссивным, ятрогенным, внутриутробным, половым, контактным и алиментарным путями.
В целях предотвращения возникновения и распространения ИНАН юридические лица, физические лица, являющиеся собственниками (владельцами) восприимчивых животных, обязаны:
- предоставлять по требованиям специалистов органов и организаций, входящих в систему Государственной ветеринарной службы Российской Федерации восприимчивых животных для осмотра;
- извещать в течение 24 часов специалистов госветслужбы о случаях заболевания или гибели восприимчивых животных, а также об изменениях в их поведении, указывающих на возможное заболевание;
- принимать меры по изоляции подозреваемых в заболевании восприимчивых животных, а также обеспечить изоляцию трупов восприимчивых животных;
- выполнять требования специалистов госветслужбы о проведении в личном подсобном хозяйстве, крестьянском/фермерском хозяйстве, хозяйстве индивидуального предпринимателя, организациях, в которых содержатся восприимчивые животные противоэпизоотических мероприятий;
- соблюдать условия, запреты, ограничения в связи со статусом региона, на территории которого, расположено хозяйство.
Комплектование хозяйств должно осуществляться здоровыми восприимчивыми животными из хозяйств, в которых отсутствовали случаи заболевания ИНАН в течение 90 календарных дней до дня вывоза/отправки из хозяйства. Поступившие в хозяйство восприимчивые животные должны содержаться обособленно от других восприимчивых животных в течение 30 календарных дней со дня ввоза с целью выявления клинических признаков, характерных для ИНАН.
Восприимчивые животные, являющиеся донорами спермы, эмбрионов, должны содержаться обособленно от других восприимчивых животных и не использоваться для случки в течение 60 календарных дней до дня сбора спермы, эмбрионов.
От восприимчивых животных 6 месяцев и старше, используемых для племенных и рабоче-пользовательных целей, осуществляется отбор проб крови для лабораторных исследований не более чем за 30 календарных дней до дня вывоза/отправки из хозяйства, за исключением лошадей, перемещаемых в пределах земельных участков, зданий, строений, принадлежащих на праве собственности юридическому лицу и его дочерним и зависимым обществам в пределах одного субъекта Российской Федерации; от спортивных лошадей - не более чем за 90 календарных дней до дня вывоза/отправки из хозяйства. Проводиться отбор проб крови для серологических исследований от восприимчивых животных старше 6-месячного возраста – 1 раз в год.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 35 проб, 
проведено 71 исследование.

Кислотность коровьего молока 

Коровье молоко – это один из самых полезных продуктов, как для взрослых, так и для детей. Оно содержит огромное количество компонентов, необходимых нашему организму.
Химический состав молока зависит от множества факторов. На него влияют условия содержания животного, его физиологическое состояние и другое. Процесс формирования молока довольно-таки сложный, в котором имеет значение состояние внешней среды проживания животного.
Кислотность – один из важнейших показателей качества молока, характеризующий свежесть молока, его пригодность к дальнейшей переработке и пастеризации, а также его сорт.
Чем ниже показатель кислотности, тем более свежим является молоко. Молоко с высоким показателем кислотности при нагревании сворачивается быстрее, поэтому подлежит переработке на кисломолочные продукты. Такое молоко целесообразно перерабатывать в сыры, так как оно быстрее свертывается сычужным ферментом.
На кислотность влияет несколько факторов:
1) особенности животных (возраст, порода, наличие мастита, условия выпаса скота, рацион питания);
2) лактационный период (кислотность повышается после отела и понижается перед концом лактации);
3) соблюдение санитарно-гигиенических норм (кислотность повышается, если в молоке содержатся микроорганизмы).
В отделе химических исследований кислотность молока определяется индикаторным методом согласно ГОСТ Р 54669-2011 «Молоко и продукты переработки молока. Методы определения кислотности».  Данный метод основан на нейтрализации свободных кислот, кислых солей и свободных кислотных групп, содержащихся в продукте, раствором гидроокиси натрия в присутствии индикатора фенолфталеина.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 44 пробы материала, проведено 109 исследования, выявлено 2 положительных случая.

Посев отделяемого глаз на микрофлору с определением чувствительности к антимикробным препаратам. Срок исследования 7 дней. При отсутствии роста результат может быть выдан 3 сутки. Исследуемый материал: отделяемое конъюнктивы Метод определения – бактериологический.
Нормальная микрофлора поверхности глаза у собак и кошек это непатогенные резидентные аэробные и анаэробные бактерии, находящиеся на здоровых поверхностях глаз, таких как конъюнктива и роговица. Эти микроорганизмы могут находиться на поверхности кожи и колонизировать область глаз. Это стабильная экосистема, если она не нарушена болезнями и травмами глаза, хирургическим вмешательством или применением антибиотиков. Наличие различных микроорганизмов на поверхности глаза зависит от возраста, окружающей среды, времени года, географии, иммунной системы хозяина, условий содержания у разных видов животных.
Бактериальный конъюнктивит характеризуется гнойными выделениями, часто сопровождающимися отеком или опуханием глаз и некоторым дискомфортом, но обычно не сопровождается изменением зрения или болью в глазах. Бактериальная резидентная и условно-патогенная флора конъюнктивы собак может представлять собой основной источник распространения патогенов в окружающей среде или к другим животным и людям. Тем не менее, заражение бактериями из внешних источников является обычным явлением. Бактериальный конъюнктивит возникает при неконтролируемом росте микрофлоры (Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis и Streptococcuss pp. и пр.).
Показания: воспалительные процессы в офтальмологии (конъюнктивиты, кератиты, блефариты). Противопоказания: неизвестны.
Подготовка пациента: Исследование проводят до начала приема системных и местных АМП. При наличии гнойного отделяемого из глаза – предварительно удалить марлевой салфеткой, смоченной стерильным физиологическим раствором (0,9%).
При необходимости определения дрожжеподобных грибов и их чувствительности к антимикотическим препаратам, дополнительно назначают исследование AN 442ГЛА.
Метод отбора биоматериала: мазок с конъюнктивы с помощью аппликатора.  Температурный режим транспортировки в лабораторию +2°С …+8°С.
Результаты исследования содержат информацию исключительно для врачей. Диагноз ставится на основании комплексной оценки различных показателей, дополнительных сведений и зависит от методов диагностики.
Указывается наличие или отсутствие роста микрофлоры, дается количественная оценка выросших бактерий (КОЕ/тамп.), проводится определение чувствительности к АМП при положительном результате.
В норме отделяемое глаза не стерильно. При интерпретации результата посева необходимо учитывать контаминацию пробы бактериями с кожного покрова.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 531 исследование.

Орнитоз – это зоонозная инфекция с преимущественно аэрозольным механизмом передачи, характеризующаяся в типичных случаях лихорадкой, интоксикацией и поражением органов дыхания. Возбудитель орнитоза – бактерии Chlamydia psittaci. Они устойчивы к холоду, но чувствительны к действию высоких температур, ультрафиолетовых лучей и дезинфицирующих средств.
Источником и резервуаром C. psittaci являются различные виды синантропных (живущих в населенных пунктах), декоративных и домашних птиц, у которых орнитоз может протекать в острой форме или в виде носительства.  Наибольшее эпидемиологическое значение имеют домашние птицы (особенно утки и индюшки), комнатные птицы (попугаи, волнистые попугайчики, канарейки и другие мелкие певчие птицы) и городские голуби.
Среди симптомов орнитоза у птиц ринит, диарея, воспаления глаз, заторможенность, вялость, слипание перьев, взъерошенность оперения, отказ от еды. Но чаще наблюдается бессимптомно форма. Внешне такие птицы кажутся вполне здоровыми, но, тем не менее они так же, как и больные птицы, способны распространять инфекцию.
Механизм передачи возбудителя преимущественно аэрозольный, путь передачи – воздушно-пылевой. Возможна также реализация фекально-орального механизма с пищевым путем передачи.
Заражение человека в основном происходит воздушно - капельным или воздушно - пылевым путем., контактным путем через поврежденные кожные покровы и слизистые (ранение, поклевывание), а также алиментарным путем (попадание возбудителя в организм с загрязненными продуктами питания).
Клинические признаки при заболевания орнитозом.
Симптомы заболевания орнитозом у попугаев и других декоративных птиц выражаются в вялости, сонливости, потере аппетита, диарее, одышке и воспалении носовой полости. При продолжительном течении возможны нервные расстройства (параличи ног и крыльев). Часто заболевание протекает в скрытой форме без характерных признаков.
У человека повышается температура тела до 38-39 ° С с ознобом, появляются головная боль, миалгия, потливость, тошнота, бессонница, заторможенность. На 2-3-й день появляется сухой кашель, иногда мокротой, симптомами ларингита, трахеобронхита. Возможны проявления симптомов менингита.
Диагноз на заболевание птиц орнитозом устанавливают на основании комплекса эпизоотологических данных, клинической картины, патологоанатомических изменений и результатов лабораторных исследований.
ГБУ «Оренбургская облветлаборатория» проводит исследования материала для выявления возбудителя орнитоза (ДНК возбудителя хламидиоза Chlamydophila psittac) методом ПЦР. Материалом для исследования служат: мазки с конъюктивы, мазки из клоаки, мазки со слизистой оболочки глотки, тканевой (аутопсийный) материал (фрагменты органов), помет птиц.

Отчетный период с 06.12.2024 по 12.12.2024г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 3789 проб сыворотки крови животных, проведено 6228 исследований. Выявлено: 5 положительных проб по бруцеллёзу у крупного рогатого скота; 255 положительных проб по лейкозу крупного рогатого скота; 1 положительная проба по лептоспирозу у лошадей и 2 положительные пробы по лептоспирозу у крупного рогатого скота.
Бруцеллез (Brucellosis) — инфекционная, хронически протекающая болезнь домашних, некоторые виды диких животных и человека, характеризующаяся поражением многих систем жизнеобеспечения, нарушением функций сосудистой, пищеварительной, мочеполовой систем и системы воспроизводства.
Длительность инкубационного периода 2 – 3 недели. Первым показателем развившегося инфекционного процесса служит появление в крови инфицированных животных агглютининов в постепенно нарастающих титрах. У коров основным клиническим признаком бруцеллеза является аборт и реже рождение нежизнеспособного приплода. Коровы, заразившиеся до покрытия, в большинстве случаев приносят нормальный приплод. Аборт чаще всего происходит на 5 – 8-м месяце. За 1 – 2 дня до наступления аборта у коров отмечается припухание наружных половых органов, выделение из влагалища бесцветной или буроватой жидкости и набухание вымени. После аборта происходит задержка последа и развивается эндометрит, сопровождающийся обильными слизисто-гнойными или гнойно-фибринозными выделениями. При тяжело протекающем эндометрите повышается температура тела, снижаются удои, отмечается потеря веса, убыстряется СОЭ; умеренный лейкоцитоз. Эндометритам нередко сопутствуют серозные или серозно-катаральные маститы. В процессе могут вовлекаться яичники и фаллопиевы трубы, что приводит к нарушению полового цикла и временному или стойкому бесплодию. У отдельных животных в связи с абортом или независимо от него можно наблюдать развитие серозных бурситов или серофибринозных артритов. Последние в большинстве случаев возникают в суставах передних конечностей — запястном, путовом, коленном, локтевом. У быков бруцеллез, хотя и редко, сопровождается развитием орхитов и эпидидимитов.
Стадиями развития бруцеллеза являются:
Острая – длится от одного до двух месяцев, в зависимости от сопротивляемости организма. Характеризуется общим недомоганием, повышением температуры, апатией, интоксикацией и возникновением отеков;
Подострая – длится до трех месяцев, протекает с чередованием лихорадки и нормальной температуры тела. Наблюдается высокая интоксикация, снижение продуктивности, жажда, запоры, воспаление суставов и непроизвольное прерывание беременности;
Хроническая – отличается устойчивостью возбудителя ко всем формам антибиотикотерапии. Стадия возникает, если не были ранее приняты меры по лечению животного.
Лабораторная диагностика бруцеллеза основана на результатах бактериологического и серологического исследований. Бактериологическое исследование в основном применяют при первичной постановке диагноза на бруцеллез в ранее благополучных хозяйствах.
В лабораторию направляются пробы крови (сыворотки) для серологического исследования, абортивный плод с плодными оболочками, околоплодную жидкость, истечения из родовых путей или желудок плода, кусочки печени, селезенки, пробы молока (последние порции). При убое животных берут паренхиматозные органы, лимфатические узлы, пораженные суставы, у самцов — семенники. Объектом исследования могут быть молочные продукты (брынза, сыр, масло), объекты внешней среды. 
При массовых диагностических исследованиях ставят пробирочную РА, роз бенгал пробу (РА на стекле), РСК, РДСК, кольцевую реакцию с молоком (КР).

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 65 проб, проведено 383 исследования
За отчетный период выявлено 3 положительных результатов:
В 1 пробе молока сырого коровьего кислотность – выше нормы;
В 1 пробе сенажа массовая доля сухого вещества – ниже нормы;
В 1 пробе силоса кукурузного массовая доля сырой клетчатки в сухом веществе – выше нормы

Кислотность коровьего молока

Коровье молоко — это один из самых полезных продуктов, как для взрослых, так и для детей. Оно содержит огромное количество компонентов, необходимых нашему организму.
Кислотность – один из важнейших показателей качества молока, характеризующий свежесть молока, его пригодность к дальнейшей переработке и пастеризации, а также его сорт.

На кислотность влияет несколько факторов:
1) особенности животных (возраст, порода, наличие мастита, условия выпаса скота, рацион питания);
2) лактационный период (кислотность повышается после отела и понижается перед концом лактации);
3) соблюдение санитарно-гигиенических норм (кислотность повышается, если в молоке содержатся микроорганизмы).
Чем ниже показатель кислотности, тем более свежим является молоко. Молоко с высоким показателем кислотности при нагревании сворачивается быстрее, поэтому подлежит переработке на кисломолочные продукты. Такое молоко целесообразно перерабатывать в сыры, так как оно быстрее свертывается сычужным ферментом.
В отделе химических исследований кислотность коровьего молока определяется согласно ГОСТ Р 54669-2011. Метод основан на нейтрализации свободных кислот, кислых солей и свободных кислотных групп, содержащихся в продукте, раствором гидроокиси натрия в присутствии индикатора фенолфталеина.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 63 проб материала, проведено 67 исследования, положительных случаев не выявлено.

Сальмонеллез кур (Salmonelles) – инфекционная болезнь, протекающая у кур в виде септицемии и расстройства кишечника у молодняка и скрытого бактериологического носительства у взрослых.
Возбудителем болезни является сальмонелла. Кур поражает три разновидности сальмонелл- Salmonella typhimurium, Salmonella enteritis, Salmonella galinarum-pullorum. Сальмонелла является грамотрицательным микроорганизмом, имеет вид маленькой палочки с вогнутыми краями. Сам по себе микроб анаэробный, подвижный, спор не имеет. В высушенном помете кур возбудитель сохраняется 5 месяцев, на яичной скорлупе при температуре 37°С – более 111 дней, внутри яйца – более 13 месяцев, в воде до 4 месяцев, в замороженном мясе – до 5 месяцев.
В естественных условиях наиболее восприимчив молодняк в возрасте от 1 до 30дней; у взрослых кур болезнь протекает бессимптомно. Источником возбудителя сальмонеллеза является больная и переболевшая птица. Заражение кур сальмонеллезом чаще всего происходит через пищеварительный тракт после приема инфицированного корма и воды. Отмечены случаи заражения через дыхательные пути.
В зависимости от путей заражения инкубационный период составляет от суток (воздушный путь) до недели (при алиментарном заражении). Сальмонеллез у птицы может протекать в зависимости от возраста – сверхостро, остро, подостро и хронически. Сверхострое течение отмечается у молодняка выводка больных сальмонеллезом кур, который погибает через несколько часов после рождения. Острое течение сальмонеллеза характерно для цыплят до 10 дневного возраста. При клиническом осмотре такие цыплята выглядят вялыми, сидят с опущенными крылышками, не едят корм, часто пищат, дыхание учащено. Для больных цыплят характерен понос, часто заболевание сопровождается параличами, цыплята скучиваются у источника тепла.
Для подострой и хронической форм сальмонеллеза характерно слабо выраженные клинические симптомы. У взрослой птицы течение болезни часто бессимптомное. У больной птицы отсутствует аппетит, она становиться малоподвижной, появляется хромота, дрожание ног, отмечаем отеки, особенно плечевых и ножных суставов, происходит повышение температуры тела до 42-43°С, появляется жажда и частый понос, птица отстает в росте и развитии, происходит снижение яйценоскости.
Диагноз на сальмонеллез ставится комплексно на основании эпизоотологических, клинических данных, патологоанатомических изменений и результатов бактериологических исследований. Во всех случаях решающее значение имеет бактериологическое исследование. При лечении сальмонеллеза применяют антибиотики и нитрофурановые препараты.
Сальмонеллез представляет реальную опасность для жизни и здоровья не только птиц и сельскохозяйственных животных, но и для человека. На птицефермах необходимо ответственно подходить к проведению профилактических мер, останавливающих распространение инфекции среди кур.

 

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 747 исследований.
Здоровье животных не в малой степени зависит от качества и безопасности кормов. Употребление кормов, обсемененных микроорганизмами, провоцирует различные заболевания желудочно-кишечного тракта, поражает иммунную систему и может привести к летальному исходу.
При нарушении технологического процесса приготовления и условий хранения в кормах могут развиваться различные микроорганизмы, такие как кишечная палочка (Escherichia coli), сальмонелла (Salmonella), анаэробные микроорганизмы клостридии (Clostridium), энтерококки (Enterococcus), бактерии рода Proteus и др. Поэтому важно регулярно осуществлять микробиологический контроль кормов.
При микробиологическом исследовании различных видов кормов, определяют следующие показатели:
- корма растительного происхождения, на отсутствие сальмонелл, энтеропатогенных типов кишечной палочки, анаэробов, ботулотоксина (токсин); определение общего количества микробных клеток в 1 г корма, а также на наличие энтерококков и бактерий рода Proteus.
При обнаружении сальмонелл, энтеропатогенных типов кишечной палочки и протея корм запрещается использовать животным без дополнительной обработки. Вторичную стерилизацию проводят в соответствии с технологическими режимами производства этих кормов или же этот корм подвергается проварке при температуре не ниже 100 градусов в течение 1 часа и дальнейшей обработке, согласно установленному технологическому режиму приготовления кормов к скармливанию.
При выявлении в кормах анаэробных микроорганизмов и их токсинов такие корма запрещается использовать животным без дополнительной термической обработки, которую проводят при температуре 120-130оС в течение 2 часов. После стерилизации корма подвергают бактериологическому исследованию с постановкой биологической пробы на наличие анаэробов и их токсинов, и при получении отрицательных результатов они могут быть использованы на кормовые цели. При положительных повторных результатах исследования эти корма уничтожают.
Корма животного происхождения, производство которых связано с тепловой обработкой, имеющие бактериальную обсемененность свыше 500 тыс. микробных клеток в 1г, при отсутствии патогенных микроорганизмов, подлежат повторной стерилизации согласно технологическим инструкциям или могут быть направлены для производства гранулированных кормов с термической обработкой, а также проварке.
Оценка санитарного состояния кормов включает в себя органолептический, микробиологический. Органолептическое исследование включает в себя определение цвета и запаха.
Во избежание обсемененности кормов различными микроорганизмами необходимо соблюдать ветеринарно-санитарные правила производства, обработки, хранения корма, в том числе при транспортировке.

Подкатегории