Отчетный период с 18.06.2021г. по 24.06.2021г.
За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на: 
- бруцеллез крупного рогатого скота – 1851 проба;
- паратуберкулез крупного рогатого скота – 60 проб;
- хламидиоз крупного рогатого скота – 60 проб;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 694 пробы;
- бруцеллез свиней – 47 проб;
- хламидиоз свиней – 47 проб;
- бруцеллез лошадей – 175 проб;
- сап лошадей – 133 пробы;
- случная болезнь лошадей – 80 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 80 проб;
- бруцеллез собак – 13 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 91 проба, положительных – 13 проб;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 127 проб, положительных нет;
- лептоспироз свиней – 102 пробы, положительных нет;
- лептоспироз лошадей – 77 проб, положительных – 14 проб;
- лейкоз крупного рогатого скота – 622 пробы, положительных – 85 проб.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 18 проб, проведено 48 исследований.
Определение общей токсичности кормов

Автоматической пипеткой с заменяемым наконечником отбирают по 20 мкл среды со стилонихиями и помещают в каждый из пяти микроаквариумов или лунок предметного стекла. Затем туда же автоматической пипеткой с чистым наконечником вносят по 20 мкл водного раствора ацетонового экстракта исследуемого корма, подготовленного для биотестирования или водного экстракта исследуемого корма, подготовленного для биотестирования.
Через 2 мин в каждом микроаквариуме или лунке подсчитывают количество стилонихий. Оптимальное количество - от 10 до 20 шт., при этом травмированные клетки стилонихий (неподвижные, округлой формы) не учитывают. Полученные данные заносят в журнал.
После подсчета стилонихий в каждый микроаквариум или лунку другой автоматической пипеткой вносят по 200 мкл водного раствора ацетонового экстракта или водного экстракта исследуемого корма и отмечают время начала испытаний.
Перед каждым внесением раствора экстракта анализируемой пробы в микроаквариум или лунку наконечник пипетки следует вытирать ватой во избежание попадания в них жировых загрязнений с наружной стороны пипетки.
Через 1 ч экспозиции при анализе водного раствора ацетонового экстракта или водного экстракта анализируемого корма вторично подсчитывают численность стилонихий. В контрольных тестах все стилонихии должны оставаться живыми. Для того чтобы за время экспозиции растворы в лунках не подсохли, под блок микроаквариумов или предметные стекла подкладывают смоченную водой фильтровальную бумагу и накрывают их стеклянным колпаком.
Слаботоксичные и токсичные корма направляют на биотестирование основными методами.
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 220 проб материала, проведено 288 исследований, выявлено 5 положительных результатов.
Эймериоз (кокцидиоз) – одно из самых распространенных и опасных заболеваний для молодняка. Развитие инфекции провоцируют простейшие паразиты – эймерии, паразитирующие на стенках кишечника и печени птицы. Теплая и влажная погода, нарушение санитарных условий содержания кур повышают риск вспышки болезни. Наиболее часто констатируется кокцидиоз у цыплят бройлеров и молодых несушек. Однако патология может поражать и взрослых особей при ослабленном иммунитете. У кур паразитируют 9 видов эймерий. Они относятся к отряду Coccidia, подсемейству Eimeriinae, роду Eimeria. Наиболее патогенные из них Е. tenella, E. necatrix, E. Acervulina.Источниками инвазии являются, как правило, больные или переболевшие цыплята, а также взрослые куры, которые могут быть носителями эймерий. Инвазионное начало распространяется через загрязненные ооцистами эймерий корма, воду, кормушки, подстилку, хозяйственный инвентарь.
Инкубационный период от 3 до 15 дней. Эймериозы протекают в острой, подострой и хронической формах. Клиническая картина зависит от доминирующего вида возбудителя, интенсивности инвазии и возраста животного. Отмечают угнетение, исхудание, слабость. Акт дефекации учащается, фекалии жидкие, с примесью слизи, иногда крови. Гибель цыплят до 100%.
Диагноз ставят комплексно с учетом эпизоотологических, клинических данных и патологоанатомических изменений. Их подтверждают лабораторными исследованиями, обнаружением в фекалиях и содержимом кишечника эймерий или стадий их развития — шизонтов и мерозоитов. Для этого делают мазки из соскобов кишечника или исследуют фекалии по методу Дарлинга, Фюллеборна и др.
При установлении заболевания больных кур изолируют. Больным и подозреваемым в заражении назначают эймериостатики. Однако при выборе нужного лекарства необходимо иметь в виду, что многие из них вызывают привыкание к себе эймерий и через некоторое время они становятся совершенно неэффективными.Для преждевременной адаптации эймерий к противоэймериозным препаратам в хозяйствах следует чередовать применение эймериостатиков. После перенесенной инфекции, а также в период лечения эймериоза, курам дают витаминные комплексы и пробиотики.
Все мероприятия по предупреждению этой болезни направлены на создание условий, исключающих возможность массового заражения восприимчивого поголовья, организацию полноценного кормления, оптимальных условий содержания по всем зоогигиеническим параметрам.
Основные меры профилактики:
1. Для профилактики кокцидиоза у птиц с первых дней жизни проводят вакцинопрофилактику;
2. Курятник регулярно проветривать и следить за сухостью и чистотой подстилки;
3. Куры должны получать сбалансированное питание, которое позволит птице поддерживать иммунитет на высоком уровне;
4. Важно обеспечить чистоту поилок, кормушек, а также другого инвентаря и оборудования, используемого по уходу за птицей;
5. Нельзя допускать скученность цыплят на ограниченной площади;
6. Рекомендовано содержать птицу на сетчатых полах, исключая попадание помета в кормушки и поилки.
Отчетный период с 11.06.2021г. по 17.06.2021г.
За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллез крупного рогатого скота – 186 проб;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 59 проб;
- бруцеллез свиней – 48 проб;
- хламидиоз свиней – 48 проб;
- бруцеллез лошадей – 19 проб;
- сап лошадей – 19 проб;
- случная болезнь лошадей – 2 пробы;
- инфекционная анемия лошадей – 2 пробы;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 15 проб, положительных нет;
- лептоспироз свиней – 43 пробы, положительных нет;
- лептоспироз лошадей – 57 проб, положительных нет;
- лейкоз крупного рогатого скота – 260 проб, положительных –16 проб.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 25 проб, проведено 77 исследований.
За отчетный период выявлен 1 положительный результат.
1. В 1 пробе мясокостной муки установлена массовая доля сырой золы выше нормы – 1.
Метод определения массовой доли неомыляемых веществ в жире кормовом
Неомыляемыми веществами называются вещества, присутствующие в жирах в растворенном состоянии, извлекаемые петролейным или диэтиловым эфирами после омыления жиров спиртовыми растворами щелочей и не улетучивающиеся при сушке. К ним относятся стеролы, фосфолипиды, свободные жирные кислоты, некоторые пигменты, обусловливающие окраску жиров, вещества, определяющие вкус и запах жиров, углеводороды, свободные высшие алифатические спирты, липовитамины, воски, гликолипиды и др.
Неомыляемые вещества оказывают существенное влияние на пищевую ценность жиров. Одни из них являются источником эссенциальных нутриентов, другие, являясь токсичными веществами, делают жиры, не пригодными для пищевых целей.
В отделе химических исследований массовую долю неомыляемых веществ в жире кормовом исследуют экстракционным методом путем извлечения их петролейным или диэтиловым эфирами после омыления жиров спиртовыми растворами щелочей и не улетучивающиеся при сушке.
Ход исследования. Навеску жира 5 г омыляют при кипячении с 50 см3 спиртового раствора гидроокиси калия в течение 1 ч с обратным холодильником. Нагревание проводят на водяной бане. Затем прибавляют 50 см3 дистиллированной воды и если раствор будет мутным, то проводят вторичное кипячение.
Содержимое колбы охлаждают и переносят в делительную воронку, колбу несколько раз ополаскивают петролейным эфиром (общий объем петролейного эфира - 50 см3) и добавляют в ту же делительную воронку, затем сильно встряхивают в течение 1 мин, чтобы петролейный эфир хорошо смешался с раствором мыла. Смесь отстаивают до разделения ее на два слоя.
Мыльный раствор переводят в другую делительную воронку, встряхивают с 50 см3 петролейного эфира и дают отстояться, затем отделяют мыльный раствор и в третий раз проводят экстрагирование 50 см3 петролейного эфира.
Для того, чтобы избежать образования эмульсии при взбалтывании раствора мыла с петролейным эфиром, добавляют 5-10 см3 спирта.
Соединенные эфирные вытяжки промывают слабощелочным 50%-ным спиртом, затем для удаления остатков мыла повторно промывают 25 см3 50%-ного спирта (без щелочи) до тех пор, пока промывная жидкость (предварительно разбавленная двумя-тремя объемами воды) перестанет давать розовое окрашивание с фенолфталеином. Промытую эфирную вытяжку переносят в предварительно взвешенную колбу и отгоняют петролейный эфир на роторном испарителе с водоструйным насосом. Полученный остаток сушат в колбе при температуре (103±2) °С. Взвешивание проводят через 15 мин сушки до тех пор, пока разница двух последовательных взвешиваний будет не более 0,0002 г.
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 251 проба материала, проведено 291 исследование, выявлен 1 положительный результат.
Паратиф (сальмонеллез) – инфекционная болезнь рабочих пчел, маток и трутней, сопровождается нарушением процесса пищеварения, поносом и значительной гибелью пчел в пчелиной семье, преимущественно в конце зимы и весной.
Основным источником инфекции являются больные сальмонеллезом пчелиные семьи и животные, загрязненные фекалиями человека и животных водоемы, выгребные ямы, скотные дворы и пастбища животных, обсемененные возбудителем сальмонеллеза. Заражаются пчелы через инфицированный корм и воду. От больных пчелосемей здоровым паратиф передается при перестановке сотов, кормушек, использовании общей поилки, осмотре семей пчеловодом, при нападении и блуждании пчел. Здоровые пчелы могут также заразиться при поедании меда и перги, загрязненных каловыми массами больных сальмонеллезом пчел.Употребление человеком в пищу меда, вкотором находятся сальмонеллы, вызывает пищевое отравление.Развитию болезни способствуют неблагоприятные условия содержания пчел: холод, сырость, недоброкачественный или забродивший корм, плохая и длительная зимовка, отсутствие раннего весеннего взятка.
Для подтверждения паратифа пчел в ветеринарную лабораторию пчеловод направляет не менее 30 – 50 погибших(со вздутым брюшком) или живых пчел, остатки экскрементов.
Диагноз на паратиф ставиться на основании характерных клинических признаков, результатов бактериологических или серологических исследований с учетом эпизоотической ситуации в районе по болезням пчел. Проводиться дифференциация от нозематоза и септицемии.При установлении заболевания пчел сальмонеллезом на пасеку постановлением Губернатора области накладывается карантин сроком на 1 год и проводятся мероприятия в соответствии cинструкцией о мероприятиях по предупреждению и ликвидации болезней, отравлений и основных вредителей пчел.
Через 7-10 дней после последней лечебной подкормки пчеловод вторично направляет пробы пчел в ветеринарную лабораторию для определения эффективности проведенного лечения. Если лаборатория при исследовании проб дает отрицательный результат на сальмонеллёз, то это говорит о полном выздоровление больных пчелосемей от сальмонеллеза.Для предупреждения возникновения сальмонеллеза:
1. Пасеки необходимо размещать вдали от скотных дворов, водоемов со сточной водой, загрязненных прудов, пастбищ для животных и других мест, загрязняемых экскрементами;
2. Пчел обеспечивают чистой водой с добавлением поваренной соли;
3. Мед, оставленный пчелиным семьям, должен быть качественным;
4. Пчеловод должен соблюдать ветеринарно-санитарные правила содержания и кормления пчел.
отчетный период с 27.05.2021г. по 03.06.2021г.
За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллез крупного рогатого скота –984 пробы;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 661 проба;
- бруцеллез свиней – 142 пробы;
- хламидиоз свиней – 142 пробы;
- бруцеллез лошадей – 221 проба;
- сап лошадей – 228 проб;
- случная болезнь лошадей – 149 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 149 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота - 119 проб, положительных - 4 пробы;
- лептоспироз мелкого рогатого скота - 69 проб, положительных - нет;
- лептоспироз свиней – 61 проба, положительных – нет;
- лептоспироз лошадей – 164 пробы, положительных – 42 пробы;
- лейкоз крупного рогатого скота – 692 пробы, положительных – 61 проба.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 18 проб, проведено 56 исследований.
1. В 1 пробе мясокостной муки установлена массовая доля сырой золы выше нормы – 1.

Отравление животных ТМТД
ТМТД тетраметилтиурамдисульфид (тирам) производное дитиокарбаминовой кислоты, фунгицид. Кристаллический порошок белого или кремового цвета. Нерастворим в воде, хорошо в ацетоне, хуже в спирте и эфире. Стоек в окружающей среде. Выпускают в форме 80% смачивающегося порошка. DL50 (мг/кг) для крыс 400,0; кроликов 210,0; овец 225,0; для человека 50 мг/кг. DL0 (мг/кг) для кур и свиней 500,0; КРС 400,0. Применяют для протравливания семян практически всех культур. Входит в состав комплексных препаратов: витавакс 200, кемикар-Т, фенорам супер, раксил-Т.
Причины отравлений. Поступление препарата животным с кормом. Токсикодинамика. Дитиокарбаматы – аллергены! В желудочно-кишечном тракте расщепляются до сероуглерода и диметиламина. Снижается осмотическая резистентность эритроцитов, уровень кальция в крови, угнетается активность пируват- и сукцинатдегидрогеназы печени. Сероуглерод при остром отравлении оказывает наркозное и нейротоксическое действие. Нарушается синтез нуклеиновых кислот, отмечается их деструкция. Хроническое воздействие дитиокарбаматов в малых дозах приводит к дисфункции всех отделов нервной системы, эндокринных и внутренних органов, системы крови.
Клинические признаки. При остром отравлении симптомы проявляются через 6-12 часов с явлениями поражения ЦНС. Животное угнетено, нарушается координация движений, анорексия, диарея (фекалии с примесью крови), бронхит, бронхо спазм, конъюнктивит, тахикардия.
На последней стадии отравления отмечают выраженную депрессию, парезы и параличи конечностей. Нарушается зрение (сероуглерод). При хронических отравлениях отмечают прогрессирующую слабость, угнетение, пониженный аппетит, диарею, фекалии с резким запахом сероводорода.
Патологоанатомические изменения. При остром отравлении: отек легких, пневмония, кровоизлияния и некрозы в паренхиматозных органах. Дистрофия миокарда, серозный отек подчелюстного пространства и тканей окружающих крупные сосуды. В хронических случаях – дистрофия паренхиматозных органов, гастроэнтерит, коллоидный зоб.
Диагностика. Комплексная, с учетом химико-токсикологического анализа.
Профилактика. Соблюдать сроки ожидания и сроки убоя отравленных животных. Запрещается использовать протравленные семена на корм животным. Не выпасать животных вблизи угодий, обработанных дитиокарбаматами. Соблюдать сроки ожидания, МДУ ТМТД в кормах - 0,01 мг/кг.
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 34 пробы материала, проведено 100 исследований, положительных результатов не выявлено.
Цитробактериоз — инфекционная болезнь медоносных пчёл и их личинок. Возбудитель — Citrobactersp. — представляет собой короткую, грамотрицательную, не образующую спор, капсул и не обладающую кислотоустойчивостью палочку размером (1-1,2)х(0,4-0,8) мкм.В естественных условиях представители рода Citrobacter широко распространены в природе. Источником С. freundii служат взрослые пчёлы. Возбудитель с кормом и водой, а также при нарушении целостности кутикулы через гемолимфу попадает в организм пчелы. При пониженном иммунитете быстро размножается в гемолимфе, клетках кишечника, вызывая интоксикацию и гибель пчёл и личинок. В лиофильном состоянии при -4 0С культура Citrobactersp. может сохранять свою высокую патогенность для пчел более семи лет.
Основная масса пчёл гибнет на 3-5 день после заражения. Болезнь характеризуется наличием малоподвижных, ползающих пчёл, не способных к полету. Гемолимфа у больных особей имеет беловатый цвет и становится мутной. Естественным инокулятором (внедрителем) микроорганизма, вероятно, является клещ V. jacobsoni, известный как переносчик возбудителей многих болезней.Диагноз ставят на основании эпизоотологических данных, клинических признаков, а также лабораторно. Наряду с этим при диагностике ставят биопробу на пчёлах. Цитробактериоз следует отличать от гафниоза, колибактериоза, сальмонеллеза септицемии и нозематоза.
Для профилактики недопущения возникновения заболевания, на пасеках следует соблюдать ветеринарно-санитарные правила содержания и кормления пчёл, а также ежегодно в два срока проводить лечение варроатоза пчёл.
Обнаружив заболевание, проводят стандартные санитарно-профилактические мероприятия по предупреждению и ликвидации заразных болезней пчёл.
За отчетный период в отдел ВСЭ и диагностики поступило 175 проб, проведено 484 исследований. В ходе исследований выявлено 4 положительных случая.
Показатель КМАФАнМ – как критерий качества продукции.
Динамичное развитие экономики пищевой отрасли невозможно без повышения конкурентоспособности товаров и услуг. Определяющим для потребителей является качество продукции. Производители должны знать и изучать требования, предъявляемые к качеству выпускаемых ими товаров, уметь количественно и качественно анализировать и оценивать их показатели.
В нормативно-технической документации контролируемые показатели качества разделяют на 3 группы: органолептические, физико-химические и микробиологические.
Микробиологические методы исследования устанавливают степень обсеменения продукта микроорганизмами и позволяют выявить наступающие изменения качества продукта, его порчу.
КМАФАнМ (количество мезофильных аэробных и факультативно анаэробных микроорганизмов) – наиболее распространенный тест на микробную безопасность. Данный показатель применяется повсеместно для оценки качества продуктов, за исключением тех, в производстве которых используются специальные микробные культуры (например, пиво, квас, кисломолочные продукты и т.п.). В составе КМАФАнМ представлены различные таксономические группы микроорганизмов – бактерии, дрожжи, плесневые грибы. Их общая численность свидетельствуют о санитарно-гигиеническом состоянии продукта, степени его обсемененности микрофлорой.Продукты, содержащие большое количество бактерий, даже непатогенных и не изменяющих их органолептические показатели, нельзя считать полноценными. Значительное содержание жизнеспособных бактериальных клеток в пищевых продуктах (за исключением тех, при производстве которых применяют закваски) свидетельствует либо о недостаточно эффективной термической обработке сырья, либо о плохой мойке оборудования, либо о неудовлетворительных условиях хранения продукта. Повышенная бактериальная обсемененность продукта свидетельствует также о его возможной порче.
Для потребителя показатель КМАФАнМ характеризует качество, свежесть и безопасность продуктов питания. В то же время, оценка качества продукта только по этому показателю имеет ряд недостатков. Во-первых, это только общая, количественная оценка микроорганизмов, поскольку при исследовании не учитываются патогенные, условно патогенные, психрофильные и термофильные микроорганизмы. Во-вторых, метод неприемлем для продуктов, содержащих технологическую и специфическую микрофлору.
Показатель КМАФАнМ позволяет оценивать уровень санитарно-гигиенических условий социальной сферы на производстве, он позволяет выявлять нарушения режимов хранения и транспортировки продукта.
Высокое содержание КМАФАнМ в продуктах питания также может вызвать пищевое отравление с признаками диареи, гастроэнтерита. Особенно чувствительны к действию микроорганизмов дети, пожилые люди, лица, страдающие заболеваниями желудочно-кишечного тракта.
Отчетный период с 04.06.2021г. по 10.06.2021г.
За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллез крупного рогатого скота – 242 пробы;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 50 проб;
- бруцеллез свиней – 37 проб;
- хламидиоз свиней – 37 проб;
- бруцеллез лошадей – 43 пробы;
- сап лошадей – 41 проба;
- случная болезнь лошадей – 41 проба;
- инфекционная анемия лошадей – 41 проба;
- лептоспироз крупного рогатого скота - 114 проб, положительных - 27 проб;
- лептоспироз мелкого рогатого скота- 21 проба, положительных- нет;
- лептоспироз свиней – 85 проб, положительных – нет;
- лептоспироз лошадей – 31 проба, положительных – нет;
- лейкоз крупного рогатого скота – 308 проб, положительных – 23 пробы.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 17 проб, проведено 47 исследований.
За отчетный период выявлено 5 положительных результатов.
- В 1 пробе мясокостной муки установлена массовая доля сырой золы выше нормы – 1.
- В 2 пробах патологического материала от крупного рогатого скота обнаружены ТМТД-2, нитриты-2.

Отравление животных нитратами и нитритами
Соли азотной кислоты (селитры): аммоний азотнокислый, натрий азотнокислый, калий азотнокислый, барий азотнокислый, кальций азотнокислый (нитраты), а также другие азотсодержащие вещества (мочевина, аммиак) используют в сельском хозяйстве в качестве минеральных удобрений. Производные азотистой кислоты (нитраты), например натрий азотистокислый, применяют для борьбы с трипсами растений и для консервирования мясных продуктов. В почве азот минеральных и органических удобрений постепенно превращается в нитратный. Нитраты и нитриты хорошо растворяются в воде и легко могут поступать в водоисточники. В растениях нитраты иногда накапливаются в количествах, которые вызывают отравления животных. Содержание нитратов в растениях может достигать 2,2- 7,5, а в отдельных случаях и до 20%. Специалистам необходимо иметь в виду, что содержание нитратов в кормах до 0,1%, а в воде до 0,01% не опасно для животных. Опасным для животных является содержание 0,5% нитратов из расчета на сухое вещество корма, при содержании 1% нитратов в корме может наступить у животных тяжелое отравление, а при 1,5% и более – смертельное отравление.
В ЛПХ, КФХ и сельхозпредприятиях отравление животных чаще всего наступает при введение в рацион кормления сахарной, кормовой и столовой свеклы, а также их ботвы, кукурузы, особенно в стадии молочно-восковой спелости. Отравление животных может наступить при использование в корм травы, соломы пшеницы, ржи, ячменя, овса, тимофеевки, овсяницы луговой, люцерны, клевера, гороха, люпина, а также подсолнечника, рапса, ботвы бахчевых культур, а также различных сорняков – щирица, лебеда, пасленовые, крапива и минеральных кормовых добавок (костная мука, ракушки, мел и др.).
Нитраты менее токсичны для животных, чем нитриты. Нитраты в желудочно-кишечном тракте животных под действием микроорганизмов ферментативным путем превращаются в нитриты. Нитраты восстанавливаются в нитриты в результате длительного хранения измельченных зеленых кормов в кучах и в теплых помещениях, а также при запаривание и медленном остывании кормовой, сахарной и столовой свеклы. Отравлению животных способствует использование в корм животных недоброкачественных кормов, несбалансированность рационов по питательным и минеральным веществам, длительные перерывы в кормлении животных.
Клиническая картина. Отравление у животных может протекать молниеносно, остро и хронически. При молниеносном течении отравления владельцы регистрируют смерть животных в течение 30 минут от асфиксии. У жвачных животных при остром течении отравления уже через 2-3 часа появляются первые признаки отравления.
Патологоанатомические изменения. При вскрытии трупов цвет крови буровато-коричневый. Кровь свертывается, образуя коричнево-смолистые сгустки. В дыхательных путях обнаруживается пенистая жидкость. Легкие гиперемированы и отечные. У некоторых животных в плевральной полости накапливается большое количество транссудата. Под эпикардом, в сердечной мышце и под эндокардом множественные точечные и полосчатые кровоизлияния. Кровоизлияния встречаются также в мускулатуре спины, поясницы и крупа. Слизистая оболочка сычуга и 12-ти перстной кишки резко гиперемирована. В тонком отделе кишечника имеются кровоизлияния. Содержимое рубца с аммиачным запахом. Встречается жировое перерождение печени и почечных канальцев даже у тех животных, которые пали в течение часа после приема корма с большим содержанием нитратов и нитритов.
Диагностика. Комплексная, с учетом химико-токсикологического анализа.
Профилактика. Владельцы должны обеспечить строгое хранение минеральных азотных удобрений. Норма внесения органических и минеральных азотных удобрений под кормовые культуры по азоту не должно превышать 150 кг/га с учетом природного запаса азота в почве. Перед массовым скармливанием зеленой массы растений и корнеплодов с новых посевных площадей, а также перед выгоном животных на пастбище владельцы ЛПХ, КФХ должны в ветеринарной лаборатории проводить химико-аналитическое исследование проб кормов для определении содержания нитратов и нитритов.
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 87 проб материала, проведено 188 исследований, выявлено 10 положительных результатов.
В поступившем материале (концентрированный корм) обнаружены микроскопические грибы (Mucor racemosus, Aspergillus fumigatus).Концентрированные корма являются неотъемлемой частью рациона домашних животных в сельском хозяйстве. С их помощью можно значительно повысить прирост и производительность питомцев за короткий срок, насытив их всеми необходимыми полезными веществами. Поэтому при правильном хранении концентрированного корма необходимо не допустить рост микроскопических грибов.
Окружающая среда является источником загрязнителей биотического и ксенобиотического происхождения, а развитие промышленности, широкая урбанизация, ненормированное использование пестицидов, минеральных добавок и т.п., способствуют поступлению в продовольственное сырье и пищевые продукты чужеродных веществ, которые негативно влияют на здоровье живого организма. Повсеместное применение интенсивных технологий выращивания сельскохозяйственных культур привело к существенным изменениям состава микробиоценоза почв и, как следствие, распространением и накоплением в кормовых субстратах контаминантов биотического происхождения ̶ микроскопических грибов.
Плесневые грибы, как патогенные, так и сапрофиты, являются источником возникновения многих заболеваний сельскохозяйственных животных. Известно 350 видов различных микроскопических грибов, продуцирующих около 100 токсических соединений, которые могут стать причиной отравлений.Размножаясь на кормах и кормовом сырье, плесневые грибы не только загрязняют их токсинами, но и ухудшают органолептические свойства, снижают пищевую ценность, обусловливают порчу кормов, делают их непригодными к технологической переработке. Использование в животноводстве кормов, пораженных грибами, может вызвать хронические токсикозы и как следствие, гибель скота.
Развитие плесневых сапрофитов на кормовом субстрате и их способность к токсинообразования зависят от температуры и влажности окружающей среды и самого продукта. Оптимальным условием для синтеза токсичных веществ является влажность воздуха 90-95%, что соответствует влажности зерна 18-21%.Большинство микромицетов растет при температуре от 0 до 60 °С. Их споры хорошо переносят низкую температуру, сохраняют жизнедеятельность в течение нескольких месяцев при температуре от -20 до +20°С.Чаще всего корма контаминируются представителями родов Aspergillus, Penicillium, Mucor, Fusarium, Rhizopus, Cladosporium и др. Попадая в организм с кормом в пищеварительный канал или воздухом в дыхательные пути, прорастают в слизистую оболочку и глубокие ткани. В частности, их можно обнаружить на слизистой оболочке ротовой полости, глотки, кишечника, между мочевыми канальцами почек, в плаценте беременных животных, в бронхах, легких, печени.
Чаще всего корма контаминируются представителями родов Aspergillus, Penicillium, Mucor, Fusarium, Rhizopus, Cladosporium и др. Попадая в организм с кормом в пищеварительный канал или воздухом в дыхательные пути, прорастают в слизистую оболочку и глубокие ткани. В частности, их можно обнаружить на слизистой оболочке ротовой полости, глотки, кишечника, между мочевыми канальцами почек, в плаценте беременных животных, в бронхах, легких, печени.
В связи с выше сказанным, важнейшим вопросом в обеспечении выпуска безопасной и качественной продукции, предупреждении перехода в организм животного вредных веществ в количествах, превышающих гигиенические нормы, является контроль за содержанием микроскопических грибов.
Систематизированный микомониторинг позволит не только четко охарактеризовать и установить систематическое положение микобиоты кормов и кормового сырья, а и выявить потенциальные токсинообразующие виды, гетерогенность состава внутривидовой популяции за токсигенными свойствами. Следовательно, контроль загрязнения микроскопическими грибами - основных контаминантов биотического происхождения является актуальным в вопросе безопасности кормов.
За отчетный период в отдел ВСЭ и диагностики поступило 630 проб, проведено 1166 исследований. В ходе исследований выявлено 4 положительных случая. В ГБУ «Оренбургская облветлаборатория» для диагностики инфекционных заболеваний и оценка эффективности вакцинации и напряженности иммунитета у животных применяется методиммуноферментного анализа (ИФА). На сегодняшний день в отделе имеется широкий перечень диагностических наборов.
Иммуноферментный анализ (ИФА)
ИФА — это современное лабораторное исследование, в ходе которого ведется поиск специфических антител в крови (либо антигенов) к конкретным заболеваниям с целью выявления не только этиологии, но и стадии болезни.
В ветеринарной практике ИФА рекомендован в следующих случаях:
1. поиск специфических антител к любому инфекционному заболеванию;
2. поиск антигенов каких-либо инфекционных заболеваний;
Преимущества метода:
1. высокая специфичность и чувствительность метода (более 90%);
2. возможность определения заболевания и отслеживания динамики процесса, то есть сравнение количества антител в разных временных промежутках;
3. доступность и скорость данного исследования;
4. не инвазивный способ забора материала не исследование;
Суть метода ИФА:
Выделяют несколько разновидностей ИФА: прямой, непрямой, метод блокирования, конкурентный. Однако на практике чаще всего используется гетерогенный твердофазный иммунный анализ или ELISA.
Основу иммуноферментного анализа составляет иммунная реакция антигена и антитела с образованием иммунного комплекса, в результате чего происходит изменение ферментативной активности специфических меток на поверхности антител.
Этапы анализа:
- на поверхности лунок планшета тест-системы находится очищенный антиген определенного возбудителя. При добавлении сыворотки крови животного происходит специфическая реакция между этим антигеном и искомым антителом;
- далее, в лунку добавляется особый хромоген (конъюгат, меченный пероксидазой). Происходит ферментативная реакция, результатом которой является образование окрашенного вещества в лунке планшета. Интенсивность окраски его зависит от количества содержащихся в сыворотке животного иммуноглобулинов (антител);
- далее происходит оценка результата. С помощью многоканального спектрофотометра, происходит сравнение оптической плотности исследуемого материала с оптической плотностью контрольных проб и математическая обработка результатов. Количество антител у пациента напрямую зависит от высоты оптической плотности данной лунки.
При оценке результатов на конкретные инфекции имеет значение класс обнаруженных антител и их количество. От этого зависит не только вопрос этиологии инфекции, но и предполагаемая стадия заболевания (острая, хроническая), а также наличие активной инфекции (острой или обострения хронической) на момент обследования.
Каковы приблизительные сроки появления антител?
Самыми ранними антителами являются IgM. Выявить их можно через 1-3 недели после возможного инфицирования, что характеризует острую фазу инфекционного процесса. Вторая ситуация появления антител IgM – обострение хронического процесса. IgM циркулируют в среднем около 3х месяцев, затем их количество постепенно исчезает. Однако следовые количества IgM могут обнаруживаться в течение 1-2х лет с момента инфицирования.
С 4й недели после инфицирования начинают появляться антитела IgG. При большинстве инфекций титр их постепенно увеличивается с максимумом в разные сроки (в среднем через 1,5-2 мес), далее титр остается на невысоком уровне и указывает на иммунитет. При некоторых заболеваниях уровень IgG не бывает высоким.
Варианты обнаружения антител
- Изолированное обнаружение антител IgM предполагает наличие первичного инфицирования.
- Одновременное выявление в крови IgM и IgG характерно для первичного инфицирования в предыдущие 2-3 месяца, а также при обострении хронического заболевания.
- Выявление изолированно IgG может указывать как на иммунитет к данному заболеванию, так и на хроническую инфекцию. Во второй ситуации имеет значение и количество антител (титр), и изменение этого титра в динамике. Обычно исследования проводят с интервалом в 2-4-6 недель.
Отчетный период с 20.05.2021г. по 27.05.2021г.
- бруцеллез крупного рогатого скота – 2869 проб;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 975 проб;
- бруцеллез свиней – 66 проб;
- хламидиоз свиней – 66 проб;
- хламидиоз крупного рогатого скота – 87 проб;
- бруцеллез собак -7 проб;
- бруцеллез лошадей – 189 проб;
- сап лошадей – 215 проб;
- случная болезнь лошадей – 87 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 113 проб;
- паратуберкулез крупного рогатого скота - 87 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота - 331 проба, положительных - 73 пробы;
- лептоспироз мелкого рогатого скота - 464 пробы, положительных - 4 пробы;
- лептоспироз свиней – 103 пробы, положительных – 1 проба;
- лептоспироз лошадей – 232 пробы, положительных – 45 проб;
- лептоспироз пони – 1 проба, положительных нет;
- лейкоз крупного рогатого скота – 1776 проб, положительных – 243 пробы.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 22 пробы, проведено 84 исследования.
За отчетный период выявлен 1 положительный результат.
1.В 1 пробе мясокостной муки установлена массовая доля сырой золы выше нормы – 1.
Определение содержания сырого протеина в кормах
Определение содержания сырого протеина — самый массовый вид химических исследований в комбикормовой отрасли.
Протеин (белок) — это органическое соединение, в состав которого входит азот. Все белки, независимо от структуры, свойств и функций, построены из одних и тех же аминокислот, в состав которых и входит азот. Однако белки отличаются друг от друга по количественному соотношению аминокислот, которое зависит от биологического объекта. Это определяет содержание азота в белке, имеющее характерные для каждого объекта значения. Так, белок животных тканей содержит 16% азота, зерновых — 17,54%, кукурузы — 16,77%.
Показатель «сырой протеин» означает количество общего азота, найденного в образце одним из аналитических методов, умноженное на коэффициент.
В отделе химических исследований для определения общего азота с последующим пересчетом в сырой протеин применяют метод Къельдаля.
Определение общего азота по методу Къельдаля проводится в три основных этапа: минерализация (разложение) образца; нейтрализация кислоты концентрированной щелочью с последующей перегонкой (дистилляцией) водяным паром; титрование перегнанного дистиллята раствором кислоты или щелочи известной концентрации (титрантом). 
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 685 проб материала, проведено 872 исследования, получено 19 положительных результатов.
Пастереллез (холера) птиц – инфекционная болезнь птиц, вызываемая пастереллами и проявляющаяся при остром течении симптомами септицемии с образованием на серозных и слизистых оболочках множественных кровоизлияний.
Экономический ущерб значительный и складывается из падежа, вынужденного убоя больной птицы, пастереллоносителей и финансовых затрат на проведение оздоровительных и профилактических мероприятий. Летальность может достигать 50-80%.
Возбудитель болезни являются болезнетворные палочки – пастереллы P.Haemolytica и P.Multocida.
Устойчивость пастерелл относительно невысокая — в навозе, земле и гниющих трупах пастереллы остаются жизнеспособными от 1 до 3 месяцев. В тушках кур и уток, хранившихся в замороженном состоянии, пастереллы остаются жизнеспособными в течение года. При температуре 70-90°С погибают в течение 5-10минут, при 1-5°С – в течение нескольких дней. При высушивании на открытом воздухе и солнце пастереллы погибают в течение 48часов, при действии прямых солнечных лучей – в течение 10минут. На инфицированных предметах – от 35 минут до 34 дней, в помете птиц – от 12 до 22-72дней.
Эпизоотологические данные. К пастереллезу восприимчивы все возрастные группы домашней и дикой птицы. Источником возбудителя пастереллеза является больная и переболевшая птица. Возбудитель инфекции передается через трупы птиц и животных, павших от пастереллеза, а также боенские отходы, яйца, пух-перо, корм, воду, оборудование и другие инфицированные объекты. Переносчиками возбудителя пастереллеза могут быть грызуны, насекомые (клещи, клопы, мухи), дикая птица, животные других видов, а также обслуживающий персонал. При этом не исключается и трансовариальный путь передачи заболевания. Чаще всего пастереллезом птиц заболевает молодняк гусей, уток и кур. Заражаются птицы преимущественно аэрогенным и реже алиментарным путем. К факторам, способствующими возникновению пастереллеза, относятся нарушения ветеринарно-санитарного режима, технологии содержания и кормления птицы. Патогенез. При спонтанном заражении пастерелла локализуется в слизистой оболочке желудочно-кишечного тракта, которая в дальнейшем подвергается зернистой дистрофии и некрозу. Подобного рода изменения в дальнейшем появляются в печени, вызывая нарушение ее функции. В результате появления токсинов происходят глубокие поражения сердечной мышцы и сопровождаются острым паренхиматозным воспалением с выпотом серозно-геморрагического экссудата. Клинические признаки. Инкубационный (скрытый) период от нескольких часов до 2-4 дней. Пастереллез у птиц может иметь сверхострое, острое и хроническое течение болезни. При этом сверхострое течение болезни у птиц чаще всего наблюдается в начале эпизоотии, и сопровождается внезапной гибелью птицы. Больная птица неожиданно падает и, взмахнув несколько раз крыльями, погибает без каких-либо клинических признаков. Сверхострое течение болезни у птиц обычно бывает в начале эпизоотии и более часто встречается у водоплавающей птицы. При остром течении болезни больная птица в большинстве случаев сидит нахохлившись, угнетена, голову держит под крылом или запрокидывает ее назад, крылья опущены, температура тела повышается до 43-44°С, гребень и сережки синюшны, перья взъерошены, аппетит ослаблен, у больных отмечаем сильную жажду, из клюва слизистые или пенистые истечения, на расстоянии слышны влажные хрипы и затрудненное дыхание. Диарея сопровождается жидкими фекалиями с кровью. По мере развития заболевания у больной птицы прогрессирует слабость, иногда бывают судороги, летальный исход отмечаем через 2-3 дня.
Хроническое течение пастереллеза у птиц бывает после острого или подострого или может быть связано с наличием менее вирулентного штамма возбудителя. Хроническое течение пастереллеза у птицы проявляется общей слабостью, прогрессирующим истощением, из клюва идут вязкие истечения, наблюдаются отечность и твердые припухлости на голове и сережках, воспаление суставов, конъюнктивит, затрудненное и учащенное дыхание, отмечается снижение яйценоскости. Дополнительно для хронического течения болезни у птиц характерны признаки синусита, ринита и скопления вязкого экссудата вокруг носовых отверстий и на конъюнктиве. Птица при данной форме болезни погибает редко.
Диагноз на пастереллез у птиц ставят на основании эпизоотологических данных, клинических признаков, патологоанатомических изменений и результатов лабораторных исследований. Для лабораторного исследования берется только свежий патологический материал от не подвергавшихся лечению птиц и не ранее чем через 7-10дней после лечения.
Профилактика. Птице создают оптимальные условия содержания и кормления, хозяйство охраняют от заноса возбудителя извне, строго соблюдают другие ветеринарно-санитарные правила, а при непосредственной угрозе – своевременно иммунизируют все поголовье.
За отчетный период в отдел ВСЭ и диагностики поступило 306 проб, проведено 832 исследования. В ходе исследований выявлено 3 положительных случая (методом ПЦР выявлен генетический материал микроорганизмов семейства Chlamydiaceae в патологическом материале животного).
Хламидиоз - контагиозное, хронически протекающее инфекционное заболевание сельскохозяйственных животных, птиц.
1) Характеристика возбудителя: хламидии - большая группа патогенных организмов
2) Источники инфекции, пути распространения: хламидии - возбудители с широким спектром хозяев - вызывают у человека, млекопитающих и птиц острые и хронические формы инфекций различной этиологии и локализации и бессимптомное носительство. Существует природный резервуар хламидиозов среди диких птиц (особенно голубей), грызунов и диких животных. Латентное течение хламидиоза у домашних животных и птиц затрудняет борьбу с ним. Хламидии не обладают «хозяиноспецифичностью», что обеспечивает восприимчивость к ним разных видов птиц, животных и человека. Животные, являясь латентными носителями, могут долгое время выделять возбудителя во внешнюю среду. Но при снижении резистентности организма болезнь проявляется клинически или переходит в деятельно рецидивирующую форму. Спонтанного самоизлечения при хламидиозе не происходит. Основным источником инфекции являются больные и переболевшие животные, выделяющие во внешнюю среду возбудителя при слезотечении, кашле, мочой и калом, маточными истечениями, молозивом, молоком, контаминированными хламидиями эякулятом, и больных и латентно инфицированных производителей. Основной путь передачи хламидиозной инфекции в стадии - генитальной.
Хламидиз у крупного рогатого скота проявляется:
- у коров - хроническим бесплодием (удлинением сервис-периода и аритмией полового цикла), выкидышами, абортами, рождение мертвых, больных и латентно инфицированных телят;
- у молодняка раннего возраста - энтеритами, энцефалитами, артритами, бурситами, кератоконъюктивитами, бронхопневмониями, задержкой роста и развития на фоне иммунодефицита.
- у быков-производителей - артритами, бурситами, хроническими пневмониями, воспалением семенного канатика, может протекать бессимптомно. Во всех случаях хламидиоз у производителей сопровождается обсеменением эякулята хламидиями.
Эпизоотология: в выраженных хламидиями стадах наблюдается высокий процент абортов (10-40%) и преждевременных отелов или рождение слабых телят с различными патологическими изменениями. Заболевание носит стационарный характер. Наибольшее число больных животных регистрируют зимой и летом.
Симптомы: заболевание характеризуется абортами, повышается лишь температура тела до 40,5о С. Иногда отмечают прогрессивное истощение животных,развиваются метриты, вагиниты,бесплодие. Хламидийный аборт может протекать совместно с бактериальными или паразитарными болезнями. В этих случаях возможны явления общей септицемии и гибель ослабленных животных.
Иммунитет. Как и на любую инфекцию, микроорганизм отвечает регуляцией клеточного и гуморального иммунитета, однако есть особенности:
- постинфекционный иммунитет не вырабатывается;
- если заражение происходит в эмбриональном периоде, то после рождения у телят теряется способность в выработке к хламидиям антител так же, как и на собственный блок.
Общие мероприятия по предупреждению заноса и распространения хламидийных инфекций.
В целях охраны хозяйств от заноса возбудителей хламидийных инфекций необходимо:
- 1. Обеспечить санитарное состояние фермы
- 2. Установить дезбарьер
- 3. Запрещать ввоз (ввод) животных из пунктов, неблагополучных по хламидийным инфекциям
- 4. Всех вновь поступающих в хозяйство животных подвергать обязательному 30-тидневному карантированию с проведением периодического клинического осмотра и выборочной термометрии
- 5. Соблюдать норму размещения животных и создавать оптимальный микроклимат в помещениях и надлежащее ветеринарно-санитарное состояние на пастбищах и в местах поения животных.



