• глюкозооксидаза;
• инвертаза;
• амилаза;

Ход работы: В две пробирки  отмеряют из бюретки по 14 см комбинированного реактива. Пробирки закрывают пробками и помещают на водяную баню 40,0°С. Через 10 мин выдерживания при температуре (40,0±1,0)°С, не доставая пробирки из бани, в первую вносят пипеткой 1,0 см раствора меда, во вторую - 1,0 см дистиллированной воды, одновременно включая секундомер. Содержимое пробирок перемешивают и вновь помещают на водяную баню. Каждую пробирку выдерживают на водяной бане при температуре (40,0±1,0)°С в течение 15 мин.
В две мерные колбы вместимостью 50 см³ помещают по 40 см³ дистиллированной воды и по 1 см³ свежеприготовленного раствора йода, перемешивают и выдерживают на водяной бане при температуре (20,0±1,0)°С.
Через 15 мин, не доставая пробирок из водяной бани, быстро отбирают из каждой по 2,0 см реакционных смесей и вносят их при перемешивании в мерные колбы с раствором йода. Объемы растворов в колбах доводят до метки дистиллированной водой. Колбы закрывают пробками, содержимое тщательно перемешивают и выдерживают на водяной бане при температуре (20,0±1,0)°С ровно в течение 10 мин.
Затем быстро измеряют оптическую плотность испытуемого и контрольного растворов по отношению к дистиллированной воде на фотоэлектроколориметре при длине волны 590 нм.
При анализе каждой пробы выполняют два параллельных определения.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 65 проб материала, проведено 66 исследований, выявлено 7 положительных результатов.

Анаэробная энтеротоксемия  ̶ неконтагиозная токсико-инфекционная болезнь животных многих видов, преимущественно молодняка, характеризующаяся общим токсикозом организма с признаками поражения нервной системы и желудочно-кишечного тракта. Возникает она в результате интенсивного размножения в кишечнике разных типов анаэроба Clostridium perfringens и всасывания образовавшихся при этом токсинов.
Болезнь вызывают спорообразующие грамположительные палочки CI. perfringens, которые по выделению токсинов подразделяют на шесть типов: А, В, С, D, Е, F, отличающихся друг от друга антигенной структурой вырабатываемых ими токсинов.
CI. perfringens широко распространен в природе, его обнаруживают в почве, воде, навозе, продуктах животного и растительного происхождения, желудочно-кишечном тракте человека и животных.
В естественных условиях к возбудителю инфекционной энтеротоксемии наиболее восприимчив молодняк животных. Источник возбудителя инфекции - больные животные и бактерионосители, которые контаминируют почву, подстилку, предметы ухода, что обусловливает стационарность болезни. Заражение происходит алиментарным путем с инфицированными кормами, водой, при сосании вымени, загрязненного выделениями больных животных.
При анаэробной энтеротоксемии животных всех видов развитие патологического процесса происходит одинаково, независимо от типа возбудителя, вызвавшего заболевание. Накопившиеся в кишечнике токсины поражают слизистую кишечника и затем поступают в кровь и печень. В слизистой токсины вызывают глубокие изменения. Вследствие этого слизистая кишечника перестает выполнять барьерные функции, и токсины в необезвреженном виде поступают в кровяное русло, где поражают эндотелий сосудов, проникают в клетки организма, вызывая общую интоксикацию с характерным для анаэробной энтеротоксемии симптомо-комплексом.
В зависимости от типа вызванной клостридией у животного фиксируют различные изменения органов и тканей. Может иметь место вздутие, воспаление в подкожной клетчатке и мышцах, ощущается треск при нажатии, из тканей выделяется пенистый экссудат. При энтеротоксемии, в частности поражаются внутренние органы, а именно водянистая жидкость скапливается в брюшной полости, утолщаются стенки кишечника, увеличиваются лимфатические узлы, видны кровоизлияния в печени, почках, слизистых. При ботулизме и столбняке кровь густая и тёмная, а мышцы по цвету напоминают отварное мясо.
Окончательно диагностировать клостридиоз можно только в лабораторных условиях. Для этого на исследование отправляют необходимый биоматериал. В разных случаях таким могут бытькусочки поражённых тканей, содержимое кишечника, раны.
Если организм животного поражён клостридией, то после диагностики необходима комплексная терапия, которая зависит от приобретённой болезни.
Больных и подозрительных по заболеванию животных изолируют и лечат. Учитывая острое течение болезни, положительный терапевтический эффект достигается на ранней стадии болезни.
Мероприятия по профилактике болезни складываются из тщательного соблюдения зоогигиенических и ветеринарно-санитарных правил содержания и кормления животных.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 251 проба материала, проведено 291 исследование, выявлен 1 положительный результат.

Паратиф (сальмонеллез) – инфекционная болезнь рабочих пчел, маток и трутней, сопровождается нарушением процесса пищеварения, поносом и значительной гибелью пчел в пчелиной семье, преимущественно в конце зимы и весной.
Основным источником инфекции являются больные сальмонеллезом пчелиные семьи и животные, загрязненные фекалиями человека и животных водоемы, выгребные ямы, скотные дворы и пастбища животных, обсемененные возбудителем сальмонеллеза. Заражаются пчелы через инфицированный корм и воду. От больных пчелосемей здоровым паратиф передается при перестановке сотов, кормушек, использовании общей поилки, осмотре семей пчеловодом, при нападении и блуждании пчел. Здоровые пчелы могут также заразиться при поедании меда и перги, загрязненных каловыми массами больных сальмонеллезом пчел.Употребление человеком в пищу меда, вкотором находятся сальмонеллы, вызывает пищевое отравление.Развитию болезни способствуют неблагоприятные условия содержания пчел: холод, сырость, недоброкачественный или забродивший корм, плохая и длительная зимовка, отсутствие раннего весеннего взятка.
Для подтверждения паратифа пчел в ветеринарную лабораторию пчеловод направляет не менее 30 – 50 погибших(со вздутым брюшком) или живых пчел, остатки экскрементов.
Диагноз на паратиф ставиться на основании характерных клинических признаков, результатов бактериологических или серологических исследований с учетом эпизоотической ситуации в районе по болезням пчел. Проводиться дифференциация от нозематоза и септицемии.
При установлении заболевания пчел сальмонеллезом на пасеку постановлением Губернатора области накладывается карантин сроком на 1 год и проводятся мероприятия в соответствии cинструкцией о мероприятиях по предупреждению и ликвидации болезней, отравлений и основных вредителей пчел.
Через 7-10 дней после последней лечебной подкормки пчеловод вторично направляет пробы пчел в ветеринарную лабораторию для определения эффективности проведенного лечения. Если лаборатория при исследовании проб дает отрицательный результат на сальмонеллёз, то это говорит о полном выздоровление больных пчелосемей от сальмонеллеза.
Для предупреждения возникновения сальмонеллеза:
1. Пасеки необходимо размещать вдали от скотных дворов, водоемов со сточной водой, загрязненных прудов, пастбищ для животных и других мест, загрязняемых экскрементами;
2. Пчел обеспечивают чистой водой с добавлением поваренной соли;
3. Мед, оставленный пчелиным семьям, должен быть качественным;
4. Пчеловод должен соблюдать ветеринарно-санитарные правила содержания и кормления пчел.

Автоматической пипеткой с заменяемым наконечником отбирают по 20 мкл среды со стилонихиями и помещают в каждый из пяти микроаквариумов или лунок предметного стекла. Затем туда же автоматической пипеткой с чистым наконечником вносят по 20 мкл водного раствора ацетонового экстракта исследуемого корма, подготовленного для биотестирования или водного экстракта исследуемого корма, подготовленного для биотестирования.
Через 2 мин в каждом микроаквариуме или лунке подсчитывают количество стилонихий. Оптимальное количество - от 10 до 20 шт., при этом травмированные клетки стилонихий (неподвижные, округлой формы) не учитывают. Полученные данные заносят в журнал.
После подсчета стилонихий в каждый микроаквариум или лунку другой автоматической пипеткой вносят по 200 мкл водного раствора ацетонового экстракта или водного экстракта исследуемого корма и отмечают время начала испытаний.
Перед каждым внесением раствора экстракта анализируемой пробы в микроаквариум или лунку наконечник пипетки следует вытирать ватой во избежание попадания в них жировых загрязнений с наружной стороны пипетки.
Через 1 ч экспозиции при анализе водного раствора ацетонового экстракта или водного экстракта анализируемого корма вторично подсчитывают численность стилонихий. В контрольных тестах все стилонихии должны оставаться живыми. Для того чтобы за время экспозиции растворы в лунках не подсохли, под блок микроаквариумов или предметные стекла подкладывают смоченную водой фильтровальную бумагу и накрывают их стеклянным колпаком.
Слаботоксичные и токсичные корма направляют на биотестирование основными методами.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 220 проб материала, проведено 288 исследований, выявлено 5 положительных результатов.

Эймериоз (кокцидиоз) – одно из самых распространенных и опасных заболеваний для молодняка. Развитие инфекции провоцируют простейшие паразиты – эймерии, паразитирующие на стенках кишечника и печени птицы. Теплая и влажная погода, нарушение санитарных условий содержания кур повышают риск вспышки болезни. Наиболее часто констатируется кокцидиоз у цыплят бройлеров и молодых несушек. Однако патология может поражать и взрослых особей при ослабленном иммунитете. У кур паразитируют 9 видов эймерий. Они относятся к отряду Coccidia, подсемейству Eimeriinae, роду Eimeria. Наиболее патогенные из них Е. tenella, E. necatrix, E. Acervulina.
Источниками инвазии являются, как правило, больные или переболевшие цыплята, а также взрослые куры, которые могут быть носителями эймерий. Инвазионное начало распространяется через загрязненные ооцистами эймерий корма, воду, кормушки, подстилку, хозяйственный инвентарь.
Инкубационный период от 3 до 15 дней. Эймериозы протекают в острой, подострой и хронической формах. Клиническая картина зависит от доминирующего вида возбудителя, интенсивности инвазии и возраста животного. Отмечают угнетение, исхудание, слабость. Акт дефекации учащается, фекалии жидкие, с примесью слизи, иногда крови. Гибель цыплят до 100%.
Диагноз ставят комплексно с учетом эпизоотологических, клинических дан­ных и патологоанатомических измене­ний. Их подтверждают лабораторными исследованиями, обнаруже­нием в фекалиях и содержимом кишечника эймерий или стадий их развития — шизонтов и мерозоитов. Для этого делают мазки из соскобов кишечника или исследуют фекалии по методу Дарлинга, Фюллеборна и др.
При установлении заболевания больных кур изолируют. Больным и подозреваемым в заражении назначают эймериостатики. Однако при выборе нужного лекарства необходимо иметь в виду, что многие из них вызывают привыкание к себе эймерий и через некоторое время они становятся совершенно неэффективными.Для преждевременной адаптации эймерий к противоэймериозным препаратам в хозяйствах следует чередовать применение эймериостатиков. После перенесенной инфекции, а также в период лечения эймериоза, курам дают витаминные комплексы и пробиотики.
Все мероприятия по предупреждению этой болезни направлены на создание условий, исключающих возможность массового заражения восприимчивого поголовья, организацию полноценного кормления, оптимальных условий содержания по всем зоогигиеническим параметрам.
Основные меры профилактики:
1. Для профилактики кокцидиоза у птиц с первых дней жизни проводят вакцинопрофилактику;
2. Курятник регулярно проветривать и следить за сухостью и чистотой подстилки;
3. Куры должны получать сбалансированное питание, которое позволит птице поддерживать иммунитет на высоком уровне;
4. Важно обеспечить чистоту поилок, кормушек, а также другого инвентаря и оборудования, используемого по уходу за птицей;
5. Нельзя допускать скученность цыплят на ограниченной площади;
6. Рекомендовано содержать птицу на сетчатых полах, исключая попадание помета в кормушки и поилки.

Отравление животных нитратами и нитритами

Соли азотной кислоты (селитры): аммоний азотнокислый, натрий азотнокислый, калий азотнокислый, барий азотнокислый, кальций азотнокислый (нитраты), а также другие азотсодержащие вещества (мочевина, аммиак) используют в сельском хозяйстве в качестве минеральных удобрений. Производные азотистой кислоты (нитраты), например натрий азотистокислый, применяют для борьбы с трипсами растений и для консервирования мясных продуктов. В почве азот минеральных и органических удобрений постепенно превращается в нитратный. Нитраты и нитриты хорошо растворяются в воде и легко могут поступать в водоисточники. В растениях нитраты иногда накапливаются в количествах, которые вызывают отравления животных. Содержание нитратов в растениях может достигать 2,2- 7,5, а в отдельных случаях и до 20%. Специалистам необходимо иметь в виду, что содержание нитратов в кормах до 0,1%, а в воде до 0,01% не опасно для животных. Опасным для животных является содержание 0,5% нитратов из расчета на сухое вещество корма, при содержании 1% нитратов в корме может наступить у животных тяжелое отравление, а при 1,5% и более – смертельное отравление.
В ЛПХ, КФХ и сельхозпредприятиях отравление животных чаще всего наступает при введение в рацион кормления сахарной, кормовой и столовой свеклы, а также их ботвы, кукурузы, особенно в стадии молочно-восковой спелости. Отравление животных может наступить при использование в корм травы, соломы пшеницы, ржи, ячменя, овса, тимофеевки, овсяницы луговой, люцерны, клевера, гороха, люпина, а также подсолнечника, рапса, ботвы бахчевых культур, а также различных сорняков – щирица, лебеда, пасленовые, крапива и минеральных кормовых добавок (костная мука, ракушки, мел и др.).
Нитраты менее токсичны для животных, чем нитриты. Нитраты в желудочно-кишечном тракте животных под действием микроорганизмов ферментативным путем превращаются в нитриты. Нитраты восстанавливаются в нитриты в результате длительного хранения измельченных зеленых кормов в кучах и в теплых помещениях, а также при запаривание и медленном остывании кормовой, сахарной и столовой свеклы. Отравлению животных способствует использование в корм животных недоброкачественных кормов, несбалансированность рационов по питательным и минеральным веществам, длительные перерывы в кормлении животных.
Клиническая картина. Отравление у животных может протекать молниеносно, остро и хронически. При молниеносном течении отравления владельцы регистрируют смерть животных в течение 30 минут от асфиксии. У жвачных животных при остром течении отравления уже через 2-3 часа появляются первые признаки отравления.  
Патологоанатомические изменения. При вскрытии трупов цвет крови буровато-коричневый. Кровь свертывается, образуя коричнево-смолистые сгустки. В дыхательных путях обнаруживается пенистая жидкость. Легкие гиперемированы и отечные. У некоторых животных в плевральной полости накапливается большое количество транссудата. Под эпикардом, в сердечной мышце и под эндокардом множественные точечные и полосчатые кровоизлияния. Кровоизлияния встречаются также в мускулатуре спины, поясницы и крупа. Слизистая оболочка сычуга и 12-ти перстной кишки резко гиперемирована. В тонком отделе кишечника имеются кровоизлияния. Содержимое рубца с аммиачным запахом. Встречается жировое перерождение печени и почечных канальцев даже у тех животных, которые пали в течение часа после приема корма с большим содержанием нитратов и нитритов.
Диагностика. Комплексная, с учетом химико-токсикологического анализа.

Профилактика. Владельцы должны обеспечить строгое хранение минеральных азотных удобрений. Норма внесения органических и минеральных азотных удобрений под кормовые культуры по азоту не должно превышать 150 кг/га с учетом природного запаса азота в почве. Перед массовым скармливанием зеленой массы растений и корнеплодов с новых посевных площадей, а также перед выгоном животных на пастбище владельцы ЛПХ, КФХ должны в ветеринарной лаборатории проводить химико-аналитическое исследование проб кормов для определении содержания нитратов и нитритов.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 87 проб материала, проведено 188 исследований, выявлено 10 положительных результатов.
В поступившем материале (концентрированный корм) обнаружены микроскопические грибы (Mucor racemosus, Aspergillus fumigatus).
Концентрированные корма являются неотъемлемой частью рациона домашних животных в сельском хозяйстве. С их помощью можно значительно повысить прирост и производительность питомцев за короткий срок, насытив их всеми необходимыми полезными веществами. Поэтому при правильном хранении концентрированного корма необходимо не допустить рост микроскопических грибов.
Окружающая среда является источником загрязнителей биотического и ксенобиотического происхождения, а развитие промышленности, широкая урбанизация, ненормированное использование пестицидов, минеральных добавок и т.п., способствуют поступлению в продовольственное сырье и пищевые продукты чужеродных веществ, которые негативно влияют на здоровье живого организма. Повсеместное применение интенсивных технологий выращивания сельскохозяйственных культур привело к существенным изменениям состава микробиоценоза почв и, как следствие, распространением и накоплением в кормовых субстратах контаминантов биотического происхождения  ̶  микроскопических грибов.
Плесневые грибы, как патогенные, так и сапрофиты, являются источником возникновения многих заболеваний сельскохозяйственных животных. Известно 350 видов различных микроскопических грибов, продуцирующих около 100 токсических соединений, которые могут стать причиной отравлений.Размножаясь на кормах и кормовом сырье, плесневые грибы не только загрязняют их токсинами, но и ухудшают органолептические свойства, снижают пищевую ценность, обусловливают порчу кормов, делают их непригодными к технологической переработке. Использование в животноводстве кормов, пораженных грибами, может вызвать хронические токсикозы и как следствие, гибель скота.
Развитие плесневых сапрофитов на кормовом субстрате и их способность к токсинообразования зависят от температуры и влажности окружающей среды и самого продукта. Оптимальным условием для синтеза токсичных веществ является влажность воздуха 90-95%, что соответствует влажности зерна 18-21%.Большинство микромицетов растет при температуре от 0 до 60 °С. Их споры хорошо переносят низкую температуру, сохраняют жизнедеятельность в течение нескольких месяцев при температуре от -20 до +20°С.
Чаще всего корма контаминируются представителями родов Aspergillus, Penicillium, Mucor, Fusarium, Rhizopus, Cladosporium и др. Попадая в организм с кормом в пищеварительный канал или воздухом в дыхательные пути, прорастают в слизистую оболочку и глубокие ткани. В частности, их можно обнаружить на слизистой оболочке ротовой полости, глотки, кишечника, между мочевыми канальцами почек, в плаценте беременных животных, в бронхах, легких, печени.
Чаще всего корма контаминируются представителями родов Aspergillus, Penicillium, Mucor, Fusarium, Rhizopus, Cladosporium и др. Попадая в организм с кормом в пищеварительный канал или воздухом в дыхательные пути, прорастают в слизистую оболочку и глубокие ткани. В частности, их можно обнаружить на слизистой оболочке ротовой полости, глотки, кишечника, между мочевыми канальцами почек, в плаценте беременных животных, в бронхах, легких, печени.
В связи с выше сказанным, важнейшим вопросом в обеспечении выпуска безопасной и качественной продукции, предупреждении перехода в организм животного вредных веществ в количествах, превышающих гигиенические нормы, является контроль за содержанием микроскопических грибов.
Систематизированный микомониторинг позволит не только четко охарактеризовать и установить систематическое положение микобиоты кормов и кормового сырья, а и выявить потенциальные токсинообразующие виды, гетерогенность состава внутривидовой популяции за токсигенными свойствами. Следовательно, контроль загрязнения микроскопическими грибами - основных контаминантов биотического происхождения является актуальным в вопросе безопасности кормов.

За отчетный период  в отдел ВСЭ и диагностики  поступило 630 проб, проведено  1166 исследований. В ходе исследований выявлено 4 положительных случая. В ГБУ «Оренбургская облветлаборатория» для диагностики инфекционных заболеваний и оценка эффективности вакцинации и напряженности иммунитета у животных  применяется методиммуноферментного анализа (ИФА). На сегодняшний день в отделе имеется широкий перечень диагностических наборов.
Иммуноферментный анализ (ИФА)
ИФА — это современное лабораторное исследование, в ходе которого ведется поиск специфических антител в крови (либо антигенов) к конкретным заболеваниям с целью выявления не только этиологии, но и стадии болезни.
В ветеринарной практике ИФА рекомендован в следующих случаях:
1. поиск специфических антител к любому инфекционному заболеванию;
2. поиск антигенов каких-либо инфекционных заболеваний;
Преимущества метода:
1. высокая специфичность и чувствительность метода (более 90%);
2. возможность определения заболевания и отслеживания динамики процесса, то есть сравнение количества антител в разных временных промежутках;
3. доступность и скорость данного исследования;
4. не инвазивный способ забора материала не исследование;
Суть метода ИФА:
Выделяют несколько разновидностей ИФА: прямой, непрямой, метод блокирования, конкурентный. Однако на практике чаще всего используется гетерогенный твердофазный иммунный анализ или ELISA.
Основу иммуноферментного анализа составляет иммунная реакция антигена и антитела с образованием иммунного комплекса, в результате чего происходит изменение ферментативной активности специфических меток на поверхности антител.
Этапы анализа:

1. на поверхности лунок планшета тест-системы находится очищенный антиген определенного возбудителя. При добавлении сыворотки крови животного происходит специфическая реакция между этим антигеном и искомым антителом;
2. далее, в лунку добавляется особый хромоген (конъюгат, меченный пероксидазой). Происходит ферментативная реакция, результатом которой является образование окрашенного вещества в лунке планшета. Интенсивность окраски его зависит от количества содержащихся в сыворотке животного иммуноглобулинов (антител);
3. далее происходит оценка результата. С помощью многоканального спектрофотометра, происходит сравнение оптической плотности исследуемого материала с оптической плотностью контрольных проб и математическая обработка результатов. Количество антител у пациента напрямую зависит от высоты оптической плотности данной лунки.

При оценке результатов на конкретные инфекции имеет значение класс обнаруженных антител и их количество. От этого зависит не только вопрос этиологии инфекции, но и предполагаемая стадия заболевания (острая, хроническая), а также наличие активной инфекции (острой или обострения хронической) на момент обследования.
Каковы приблизительные сроки появления антител?
Самыми ранними антителами являются IgM. Выявить их можно через 1-3 недели после возможного инфицирования, что характеризует острую фазу инфекционного процесса. Вторая ситуация появления антител IgM – обострение хронического процесса.  IgM циркулируют в среднем около 3х месяцев, затем их количество постепенно исчезает. Однако следовые количества IgM могут обнаруживаться в течение 1-2х лет с момента инфицирования.
С 4й недели после инфицирования начинают появляться антитела IgG. При большинстве инфекций титр их постепенно увеличивается с максимумом в разные сроки (в среднем через 1,5-2 мес), далее титр остается на невысоком уровне и указывает на иммунитет. При некоторых заболеваниях уровень IgG не бывает высоким.

Варианты обнаружения антител

• Изолированное обнаружение антител IgM предполагает наличие первичного инфицирования.
• Одновременное выявление в крови IgM и IgG характерно для первичного инфицирования в предыдущие 2-3 месяца, а также при обострении хронического заболевания.
• Выявление изолированно IgG может указывать как на иммунитет к данному заболеванию, так и на хроническую инфекцию. Во второй ситуации имеет значение и количество антител (титр), и изменение этого титра в динамике. Обычно исследования проводят с интервалом в 2-4-6 недель.