отчетный период с 23.10.2020 г. по 29.10.2020 г.

За отчетный период  специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:

- бруцеллез крупного рогатого скота – 1486 проб;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 1001 проба;
- листериоз мелкого рогатого скота – 11 проб;
- инфекционный эпидидимит мелкого рогатого скота – 11 проб;
- хламидиоз мелкого рогатого скота – 11 проб;
- бруцеллез свиней – 121 проба;
- хламидиоз свиней – 121 проба;
- бруцеллез лошадей – 76 проб;
- сап лошадей – 76 проб;
- случная болезнь лошадей – 22 пробы;
- инфекционная анемия лошадей – 22 пробы;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 470 проб, положительных – 79 проб;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 98 проб, положительных – 1 проба;
- лептоспироз свиней – 157 проб, положительных– 6 проб;
- лептоспироз лошадей – 20 проб, положительных – 4 пробы;
- лейкоз крупного рогатого скота – 1065 проб, положительных – 218 проб.


За отчетный период в отдел химических исследований поступило 60 проб:

* корма – 26 проб;
* пищевая продукция – 26 проб;
* биоматериал (кровь) – 5 проб;
Также для радиологических исследований поступило 3 пробы.

За отчетный период выявлено 14 положительных результатов.

 1. Установлено несоответствие крови по 14 биохимическим показателям:

   ниже нормы – 6:  щелочной резерв – 1; альфа-глобулины – 3; бета-глобулины – 1;      гамма-глобулины – 1.

   выше нормы – 8: общий белок – 2; щелочной резерв – 1; общий кальций – 2; альбумины – 1; бета-глобулины – 2.
 
Рефрактометрический метод исследования для определения общего белка в сыворотке крови

Содержание белка в сыворотке крови здоровых животных стабильно. Отклонения уровня белка от нормы свидетельствует о глубоких нарушениях обмена веществ в организме животных.
Снижением содержания белка в сыворотке крови характеризуется длительный недокорм, белковое голодание, плохое усвоение протеина из кормов вследствие хронических расстройств желудочно-кишечного тракта, заболеваний печени,  дефицита углеводов, макро- и микроэлементов и провитаминов в рационе.
Повышение уровня белка в сыворотке крови наблюдают при высококонцентратном типе кормления, заболеваниях печени (гепатиты, дистрофия), желудочно-кишечного тракта.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 644 пробы материала, проведено 817 исследований, получено 34 положительных случая.
Поступающий в отдел бактериологии и паразитологии материал (пчелы) исследуется на паразитарное заболевание (клещи варроа (Varraoajacobsoni)).
Varroa (лат.) - род паразитических клещей, использующих в качестве хозяев медоносных пчёл и их расплод, вызывая варроатоз. Род назван в честь Марка ТеренцияВаррона, римского учёного и практического пчеловода. Один из двух родов (вместе с Euvarroa) в составе семейства Varroidae. Эта болезнь представляет собой одну из наиболее актуальных проблем пчеловодства и наносит ему колоссальный ущерб.
В летний период клещ распространяется от больных пчел к здоровым через: блуждающих пчел; пчел-воровок; при кочевках пасек; семьи, стоящие на перелете пчел; с роями; при купле-продаже пчел и маток; при подселении семей зараженным расплодом; при контакте пчел на цветках растений; при всех работах по перестановке сот из одной семьи в другую; с других насекомых (шмелей, ос); при открытом хранении вырезанного трутневого расплода.
Варроатоз распространяется со скоростью 6-11 км в течение 3 месяцев, что зависит от степени насыщенности региона пчелами. В первую очередь, поражению подвержены отрутневшие семьи. Распространение и рост количества вредителя существенно выше в районах с жарким климатом.
Для борьбы с клещом следует выполнять целый комплекс мероприятий, который включает в себя общеорганизационные, специальные пчеловодческие и ветеринарные меры. Необходимо соблюдать условия содержания, кормления, разведения пчел, а также применять зоотехнические приемы борьбы с варроа и систематически проводить противоакарицидные обработки. Борьба с вредителем должна продолжаться ежегодно и комплексно. Очень важно снизить количество клещей после последней откачки меда. Так пчелы, которые выводятся и будут зимовать, смогут жить при минимальном уровне заражения. Вместе с тем, уменьшается и степень стресса при закармливании пчел. Следующая обработка будет максимально эффективна после окончания выведения расплода (в зимнее время). Весной же для уменьшения количества вредителей применяется метод вырезания трутневого расплода.
Чтобы снизить вред, наносимый клещом варроа, следует проводить различные профилактические мероприятия:
1 Приобретенные семьи и пойманные рои требуется хотя бы единожды обработать (например, рой – перицином, а остальное – муравьиной кислотой);
2 На основании числа паразитов на поддоне принимается решение о необходимости проведения дальнейшей обработки;
3 Следует проводить регулярные обследования поддона и трутневого расплода на наличие паразитов;
4 Обработку против варроатоза крайне важно согласовывать с соседними пчеловодческими фермами для получения хорошего результата и во избежание повторного заражения.
Методы борьбы применять регулярно, не пропускать периоды, наиболее подходящие для их осуществления, а также обязательна периодическая чистка, дезинфекция и своевременно перетапливать соты. Соблюдение обычных правил гигиены позволит уберечься от смешанных заболеваний.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики  поступило 355 проб, проведено  902 исследования.В ходе исследований было выявлено 3 положительных случая.
Санитарно-микробиологические исследования смывов являются одной из самых востребованных услуг лаборатории. Смыв – это образец жидкости с микроорганизмами, взятый с той среды, на которой они первоначально могут присутствовать (поверхностей рук работников, оборудования, столов, спецодежды и т.п.) Благодаря регулярно проводимым микробиологическим исследованиям и принимаемым собственниками компаний мерам повышается качество выпускаемой продукции и её безопасность для потребителей.
Процедура исследования смывов с рук, оборудования и т.д. является частью программы мероприятий производственного контроля, она законодательно закреплена в санитарных нормах. Этот метод исследования очень актуален и востребован благодаря его объективности и точности и является обязательным. Несоблюдение элементарных гигиенических требований является прямой угрозой бизнесу, здоровью занятых на предприятии сотрудников, клиентов.
Цели микробиологических исследований
Изучение микрофлоры смывов с рук и т.д. необходимо в следующих целях:
•          Оценка санитарно-гигиенической обстановки в лечебно-профилактических, учебных детских заведениях, на предприятиях общественного питания,
•          Исследование бактериологической загрязненности рук персонала, окружающих предметов, оборудования и техники (для этого проводится взятие смывов с оборудования),
•          Установление путей распространения различных инфекционных заболеваний,
•          Установление эпидемиологической безопасности выпускаемой на предприятии продукции,
•          Минимизация рисков отравлений, возникновения различных заболеваний, связанных с приемом или использованием загрязненной продукции и др.
При этом важно изучить те объекты, которые используются при приготовлении, хранении, транспортировке пищи.
Поэтому в первую очередь микробиологические исследования – смывы проводятся в отношении:
1.         Посуды, оборудования, кухонного инвентаря, бытовых и столовых приборов и т.п.,
2.         Собственно, продуктов – полуфабрикатов, сырья, готовых изделий, скоропортящихся продуктов питания и т.п.,
3.         Воды, используемой в процессе производства,
4.         Рук работающего персонала, рабочей одежды и рабочих поверхностей (столов, раковин, шкафов).
При изучении состава взятых проб работники лаборатории оценивают такие параметры, как:
•          Итоговая обсемененность,
•          Присутствие микроорганизмов Proteus,
•          Наличие бактерий, вызывающих кишечные инфекции – БГКП,
•          Присутствие сальмонеллы,
•          Присутствие золотистого стафилококка,
•          Общее микробное число (или ОМЧ).

Также смывы с рук покажут эффективность обработки рабочих поверхностей, поможет установить долю обсеменения продукта питания, которая вносится во время технологического процесса – для сравнения работники лаборатории берут как первичные, так и вторичные пробы готовой продукции.
Существуют нормативные документы, к примеру, МУ 2657-82, регламентирующие порядок сбора материалов для проведения исследования на бактериологическую обсемененность.
Так, забор смывов рук и оборудования производится с использованием специальных стерильных ватных тампонов, увлажненных специальной питательной средой и вмонтированных в пробирки. После взятия смывов тампоны погружают в питательную среду.
Вот примеры того, как происходит забор материала для анализа:
Смывы с оборудования и рабочего инвентаря берутся до начала работы или в санитарные дни после санобработки. При этом с крупного инвентаря и рабочих поверхностей для снятия смывов используют трафарет со сторонами 5 см. обычно исследуется поверхность в 100 кв.см, причем пробы берутся из нескольких точек.
Смывы с рук работников берутся следующим образом: сначала тампоном протираются ладони и пальцы рук (обеих, причем тампоном проводят не менее пяти раз), также протираются межпальцевые области, ногти и участки под ногтями.
Смывы с санитарной одежды берутся так: выбираются и протираются тампоном 4 участка площадью по 25 кв.см. каждый: на правом и левом рукаве, а также с передней и верхней части рабочей одежды.
Дополнительно необходимо взять смывы с систем кондиционирования и вентилирования.
Пробы для проведения посевов доставляются в лабораторию в термоконтейнерах. Срок доставки не должен превышать 4 часов. По результатам проведенного в бактериологической лаборатории анализа результатов микробиологических смывов клиент получает протокол лабораторных исследований.

отчетный период с 09.10.2020 г. по 15.10.2020 г.

За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:

- бруцеллез крупного рогатого скота – 3555 проб;
- паратуберкулез крупного рогатого скота – 53 пробы;
- хламидиоз крупного рогатого скота – 52 пробы, положительных – 5 проб;
- листериоз крупного рогатого скота – 1 проба;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 1780 проб;
- бруцеллез свиней – 100 проб;
- хламидиоз свиней – 100 проб;
- бруцеллез лошадей – 185 проб;
- сап лошадей – 201 проба;
- случная болезнь лошадей – 40 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 40 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 343 пробы, положительных – 115 проб;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 380 проб, положительных нет;
- лептоспироз свиней – 1 проба, положительных нет;
- лептоспироз лошадей – 101 проба, положительных – 19 проб;
- лейкоз крупного рогатого скота –3465 проб, положительных – 650 проб.

За отчетный период в отдел химических исследований поступила 21 проба:

* корма – 11 проб;
* пищевая продукция – 7 проб;
* вода – 2 пробы.
Также для радиологических исследований поступила 1 проба.

За отчетный период выявлено 3 положительных результата.

 1. В 2 пробах сена  установлена массовая доля сырого протеина в сухом веществе ниже нормы – 2.

 2. В 1 пробе мясокостной муки установлена массовая доля сырой золы выше нормы – 1.

Биохимические исследования крови крупного рогатого скота.
Определение щелочного резерва в плазме крови

Биохимические показатели крови полностью отражают метаболизм белков, жиров, углеводов, витаминов и гормонов, а также водно-минеральные характеристики организма. Благодаря им, можно интерпретировать рост и развитие организма, понимать патогенез того или иного патологического состояния животного, выявить скрытые формы заболевания, и, в конечном счете, поставить объективный диагноз.
Особый интерес биохимические показатели крови представляют для прогнозирования племенных и продуктивных характеристик стада скота. В частности, подбор животных при скрещивании по биохимическим характеристикам крови позволяет корректировать продуктивность и качество продукции у потомков.
Исследование комплекса биохимических характеристик крови зачастую используется и для совершенствования рационов и контроля обеспеченности потребностей животных в питательных веществах.
В отделе химических исследований определяют такие показатели крови, как резервная щелочность, содержание в крови каротина, кальция, неорганического фосфора, общего белка и белковых фракций, кетоновых тел, глобулинов.
Определение щелочного резерва в плазме крови диффузным методом проводят по Методическим указаниям по применению унифицированных биохимических методов исследований крови, мочи и молока в ветеринарных лабораториях, под редакцией В.П. Шишкова.
Принцип метода: в одной половине сдвоенной колбы плазма крови обрабатывается серной кислотой, благодаря чему выделяется углекислый газ, находящийся в составе бикарбонатов. Выделившийся углекислый газ поглощается раствором едкого натра, который находится в другой половине колбы. Избыток едкого натра, не вошедшего в реакцию с углекислым газом, и половину натрия углекислого, образовавшегося в процессе поглощения углекислого газа, оттитровывается раствором едкого натра. Затем определяют количество выделенного из плазмы углекислого газа, которое эквивалентно содержанию бикарбонатов.
Биохимические исследования крови есть незаменимые составляющие эффективного производства продукции. Выполняемые периодически исследования позволяют контролировать состояние животных и, при необходимости, проводить профилактические или лечебные мероприятия.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 844 проб материала, проведено 950 исследований, выявлено 37 положительных случаев.
Поступающий в отдел бактериологии и паразитологии материал (смывы с глаза, влагалища и др.) исследуется на патогенную микрофлору (возбудитель стафилококкоза).
Стафилококкоз - это острая инфекционная болезнь, проявляющаяся возникновением абсцессов в различных органах и тканях и развитием септицемии.
Возбудитель относится к роду Staphylococcus, среди которых наиболее встречаемые виды Staphylococcus aureus и Staphylococcus intermedius.
К стафилококкозу восприимчивы все виды собак, пушных зверей и кролики, особенно молодняк.
Источником возбудителя инфекции служат больные животные и бактерионосители, которые выделяют возбудителя во внешнюю среду с истечениями из носовой полости, гноем из абсцессов, фекальными массами, выделениями из пораженных долей лактирующих самок, а также с мочой.
Источником возбудителя инфекции служат больные животные и бактерионосители, которые выделяют возбудителя во внешнюю среду с истечениями из носовой полости, гноем из абсцессов, фекальными массами, выделениями из пораженных долей лактирующих самок, а также с мочой.
Факторами передачи возбудителя являются инфицированные корма, молоко, подстилка, инвентарь, спецодежда, шерсть. Заражение происходит аэрогенным и алиментарным путями, а также через поврежденную кожу и слизистые оболочки. У стафилококкоза ярко выражена стационарность.В местах размножения возбудителя развивается гнойное воспаление с дальнейшей интоксикацией организма. При суперинфекции щенков развивается тяжелая форма септицемии. У лактирующих самок нередко возникают гнойные маститы и эндометриты, а у быстро растущих самцов поражается мочевая система.
Период инкубации длится от 48 до 72 часов. Специалисты выделяют острый и хроническийформы течение болезни. Острое течение характеризуется везикулярным дерматитом, синюшностью пораженного участка кожи, воспалением. При хронической форме снижается иммунитет, уменьшается продуктивность.
Диагноз ставится комплексно с учетом клинико-эпизоотологических данных, результатов патологоанатомического вскрытия, с обязательным проведением микробиологического исследования патологического материала. С этой целью посылают в лабораторию гнойный экссудат, молоко, кровь, носовые и влагалищные ис­течения.
В случае обнаружения первых признаков болезни животное следует отделить от здоровых особей, а помещение для их содержания продезинфицировать. В это время кормление животных требует тщательного контроля. Проводится исследование на наличие патогенных стафилококков. 
Лабораторное исследование отделяемого больного животного должно дать полную картину о применении группы антибиотиков чувствительных к данному возбудителю. Стафилококк быстро вырабатывает резистентность к антибиотикам. При ее появлении необходимо поменять препарат с большей эффективностью. В комплексе с применением антибактериальной терапией необходим прием препаратов, повышающих общий иммунитет и витаминные комплексы.
В борьбе со стафилококкозом необходимо применять меры по улучшению рациона питания и условий содержания животных.

отчетный период с 16.10.2020г. по 22.10.2020г.

За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:

- бруцеллез крупного рогатого скота – 3773 пробы;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 771 проба;
- хламидиоз мелкого рогатого скота – 78 проб, положительных – 14 проб;
- бруцеллез свиней – 31 проба;
- хламидиоз свиней – 31 проба;
- бруцеллез лошадей – 79 проб;
- сап лошадей – 92 пробы;
- случная болезнь лошадей – 50 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 50 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 198 проб, положительных – 37 проб;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 34 пробы, положительных нет;
- лептоспироз свиней – 31 проба, положительных нет;
- лептоспироз лошадей – 76 проб, положительных – 15 проб;
- лейкоз крупного рогатого скота –1497 проб, положительных – 335 проб.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1945 проб материала, проведено 2232 исследования, выявлено 86 положительных случаев.
Поступивший в отдел бактериологии и паразитологии материал (мясо от вынужденно убитого животного) исследовался на протейную инфекцию. В ходе исследования была выделена бактерия из рода Протеус (протей) – Proteus vulgaris.
Протейная инфекция – факторная, энтеробактериальная болезнь животных, в том числе птиц, характеризующаяся нарушением пищеварения.
Протей - факультативный аэроб, оптимальная
температура культивирования 25-37 ⁰С. Хорошо растет на обычных питательных средах с образованием гнилостного запаха.
Род Proteus включает четыре вида: P. vulgaris, P. mirabilis, P. morganil и P. retigeri. В этиопатогенезекишечных расстройств у животных участвуют в основном P. vulgaris и P. mirabilis. Эти виды протея - наиболее часто выделяемые у животных, в том числе птиц, а также у людей и с объектов окружающей среды. Дифференцирующие признаки P. vulgaris - индолообразование и ферментация мальтозы с образованием кислоты, P. mirabilis -положительный тест с орнитиндекарбоксилазой и ферментация ксилозы с образованием кислоты.
Из лабораторных животных к парентеральному введению протея чувствительны белые мыши, кролики, морские свинки.
Протей относится к группе сапро­фитных микроорганизмов желудочно-кишечного тракта животных. Удельный вес протейных бактерий относительно микроорга­низмов других родов в тонком кишечнике здорового молодняка сельскохозяйственных животных - 1,1 %. Развитие инфекционного заболевания - протейной диареи - во многом зависит от санитарной культуры, условий кормления, зоогигиенических параметров содержания животных, иммунного статуса.
При остром течении протейной инфекции инкубационный период составляет от двух до нескольких суток. Болезнь проявляется у молодняка всех видов животных лихорадкой (часто невысокой), угнетением, анорексией. Развивается диарея серо-коричневого цвета с зеленоватым оттенком, у телят профилакторного периода - желтого цвета с кисловатым и гнилостным запахом.
На 3-4-е сутки отмечают западение глаз, потерю эластичности кожи, слабость конечностей, одышку и тахикардию. Поражаются органы мочевыделительной системы: развивается болезненность паховой области, возможны странгурия и тенезмы, в моче - много слизи, белка, эпителиального детрита. На 4-5-е сутки вероятна гибель животных.
Диагностика протейной инфекции комплексная, базирующаяся на эпизоотологических данных, клинических при­знаках, патологоанатомических изменениях. Основой постановки диагноза являются бактериологические исследования с обязатель­ной постановкой биопробы.
Из средств специфического лечения разработаны поливалентная сыворотка против колибактериоза, сальмонеллеза, клебсиеллеза и протейной инфекции молодняка сельскохозяйственных животных, а также протейный бактериофаг и полифаг. Применение сыворотки заболевшим острым кишечным заболеванием молодняка позволяет снизить их летальность в среднем на 70 %.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 36 проб: 

* корма – 13 проб;
* пищевая продукция – 14 проб;
* вода – 4 пробы;
* дез. растворы – 2 пробы.
Также для радиологических исследований поступило 3 пробы.

За отчетный период выявлено 4 положительных результата.

1. В 1 пробе сена  установлена массовая доля сырого протеина в сухом веществе ниже нормы – 1.

2. В 3 пробах мясокостной муки установлена массовая доля сырой золы выше нормы – 3.

Метод определения жира с использованием экстракционного аппарата Сокслета

При производстве практически всех без исключения мясных и мясосодержащих продуктов используется разнообразное жиросодержащее сырьё, для придания продукту необходимой нежности, сочности, пищевой и энергетической ценности и других показателей качества продукции.

Предварительно высушенную до постоянной массы экстракционную колбу аппарата Сокслета заполняют растворителем. Собирают аппарат Сокслета.

Экстракционную колбу помещают в колбонагреватель или на водяную баню.

Продолжительность экстракции составляет от 5 до 7 часов.

Полноту обезжиривания проверяют, нанося на фильтровальную бумагу каплю экстракта, стекающего из экстрактора. На бумаге не должно оставаться жирного пятна.

После окончания экстрагирования растворитель из экстракционной колбы отгоняют.

Экстракционную колбу, с оставшимся после экстракции жиром, высушивают в сушильном шкафу при температуре (103±2)°С до постоянной массы.

Проводят обработку результатов.

отчетный период с 02.10.2020 г. по 08.10.2020 г.

За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на: 

- бруцеллез крупного рогатого скота – 4864 пробы;
- хламидиоз крупного рогатого скота – 4 пробы;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 1695 проб;
- бруцеллез свиней – 223 пробы;
- хламидиоз свиней – 224 пробы;
- бруцеллез лошадей – 163 пробы;
- сап лошадей – 162 пробы;
- случная болезнь лошадей – 35 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 33 пробы;
-лептоспироз крупного рогатого скота – 513 проб, положительных – 111 проб;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 300 проб, положительных нет;
- лептоспироз свиней – 324 пробы, положительных – 7 проб;
- лептоспироз лошадей – 38 проб, положительных – 9 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота (моча) – 8 проб, возбудителей лептоспироза не обнаружено;
- лептоспироз лошадей (моча) – 2 пробы, возбудителей лептоспироза не обнаружено;
- лейкоз крупного рогатого скота –2669 проб, положительных – 355 проб.


За отчетный период в отдел химических исследований поступило 56 проб:

* корма – 19 проб;
* пищевая продукция – 21 проба;
* биоматериал (кровь) – 6 проб;
* биоматериал (яйцо-каротиноиды) – 2 пробы;
* вода – 4 пробы;
* дез. растворы – 1 проба.
Также для радиологических исследований поступило 3 пробы.

За отчетный период выявлено 10 положительных результатов

1.  В 2 пробах мясокостной муки установлена массовая доля сырой золы выше

нормы – 2.

   2. Установлено несоответствие крови по 8 биохимическим показателям:

   ниже нормы – 6: общий белок – 3; щелочной резерв – 3;

   выше нормы – 2: общий кальций – 2.

Фотометрический метод исследования

Фотометрия – оптический метод анализа, основанный на поглощении электромагнитного излучения анализируемым веществом. Наиболее часто в практике используется ультрафиолетовая фотометрия, видимая и инфракрасная.
В фотометрическом методе используют избирательное поглощение света молекулами анализируемого вещества. Исследуемый образец может облучаться светом строго определенной длины волны, либо световым потоком определенного интервала длин волн. В первом случае электромагнитное излучение называется монохроматическим, а измерения с его использованием называются спектрофотометрическими. Спектрофотометрия возможна в ультрафиолетовой, видимой и инфракрасной – областях с помощью приборов спектрофотометров. Электромагнитные излучения, представляющие собой световой поток определенного интервала длин волн, называется немонохроматическим (полихроматическим). В этом случае метод носит название фотоколориметрия (или фотоэлекроколоримерия). Определения осуществляются на фотоколориметрах различных типов, для выделения лучей с определенным интервалом длин волн в которых имеются светофильтры.
В отделе химических исследований, использую фотометрический метод, определяют следующие физико-химические показатели качества пищевой продукции:
• Массовая доля общего фосфора, выраженная в виде массовой доли пентоксида (пятиокиси) фосфора (Р2О5);
• Массовая доля нитрита натрия;
• Величина активности кислой фосфатазы, выраженная массовой долей фенола;
• Содержание каротиноидов.
Для проведения исследований используется фотометр фотоэлектрический «КФК-3-01-«ЗОМЗ».
Фотометр предназначен для измерения спектрального коэффициента направленного пропускания, оптической плотности и скорости изменения оптической плотности прозрачных жидкостных растворов, а также для определения концентрации веществ в растворах после предварительной градуировки фотометра. Отличается малой погрешностью измерения и высоким спектральным разрешением. Применение дифракционной решетки и микропроцессорной системы обеспечивает широкий и непрерывный спектральный диапазон от 315 до 990 нанометров.
Для определения того или иного показателя сначала строят градуировочный график, откладывая полученные средние данные измерений из трех стандартных растворов против соответствующих концентраций разбавленных стандартных растворов.
Далее измеряют оптическую плотность исследуемых образцов и по градуировочному графику находят концентрацию определяемого вещества в растворе пробы.
К достоинствам фотометрического метода относятся:
• высокая точность измерений;
• простота аппаратурного обеспечения;
• экспрессность анализа.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 2120 проб материала, проведено 2337 исследований, выявлено 45 положительных случаев.
В поступившем в отдел бактериологии и паразитологии для исследования материале (эмбрионы-задохлики) было обнаружено инфекционное антропозоонозное заболевание Salmonellagallinarum-pullorum.
Сальмонеллез ‑ самая распространенная из инфекционных болезней, передающихся от животных к человеку. Эта болезнь чаще всего встречается у молодых животных и птиц (цыплят, утят, гусят, индюшат, попугаев, голубей и других). Данная болезнь поражает желудочно-кишечный тракт и протекает с признаками септицемии.  Подострое и хроническое течение болезни сопровождается пневмонией и поражением суставов.
Согласно систематике, сальмонеллы принадлежат к семейству энтеробактерий (Enterobacteriaceae), роду сальмонелл (Salmonella), который подразделяется на два вида: энтерика (enterica) и бонгори (bongori). Непосредственный возбудитель сальмонеллеза  Salmonellagallinarum - представляет не образующую спор, не окрашивающуюся по Граму, бескапсульцую, неподвижную палочку, длиной 1 - 2,5 ц и 0,3 - 1,5 /л в диаметре, является факультативным анаэробом. Бактерия хорошо размножается на стандартных питательных средах, при Т= 37 °С.  Для дифференцирования бактерии от эшерихий применяют выращивание на специальных средах Эндо, Плоскорева, Левина, висмут-сульфитагаре.
По чувствительности к химическим дезинфицирующим средствам (первая группа) сальмонеллы входят в  группу малоустойчивых бактерий. В земле и навозе   сохраняют свои свойства в течение 9-10 месяцев, в питьевой воде сохраняются  от 10 до 120 дней.  В домашней пыли бактерии выживают в течение 8 - 18 мес.; при солении и копчении мяса возбудитель сохраняется  2,5 - 3 мес., в твороге и масле - 6 мес. При заморозке могут сохранять свои свойства около 4 - 5 месяцев. Нагрев до 80° С убивает бактерии через 15 минут. Губительное действие на сальмонеллы оказывают 2%-ные горячие растворы гидроксида натрия или калия, 2%-ные растворы формальдегида, препараты, содержащие хлор (однохлористый йод, хлорная известь и др.) с концентрацией не менее 2% активного хлора и 3%-ная перекись водорода, при выдержке в растворе не менее 1 часа.
При сальмонеллезе птиц различают следующие виды:
- сальмонеллез, вызываемый бактерией S.gallinarum - pullorum (пуллороз-тиф) и S.enteritidis (сальмонелла энтеритидис);
- сальмонеллез водоплавающей птицы, вызываемый S.typhimurium;
- птичий сальмонеллез, вызываемый не относящимися к ней сероварами сальмонелл (S.haifa, S.anatum, S.heidelberg, S.london и др.).
Сальмонелла галлинарум – пуллорум (S.gallinarum – pullorum).
Данная бактерия вызывает такие заболевания, как пуллороз и тиф кур, индеек, фазанов, цесарок, перепелов и попугаев. У людей в небольшом числе случаев наблюдают пищевые токсикоинфекции.У голубей болезнь в 90% случаев вызывается бактерией S. typhimurium, которая является самым основным возбудителем пищевых токсикоинфекций у людей.
Молодые птицы до двухнедельного возраста болеют  ввиде септической формы с симптомами гастроэнтерита. У птиц годовалого возраста и старше  чаще возникает  хроническое течение болезни, реже подострое или острое. Птица,  перенесшая болезнь пуллороз - тиф, на всю жизнь остается  сальмонеллоносителем: она переносит и распространяет болезнь. Возбудитель может передаваться потомству внутриутробно через яйцо.

Микоплазмоз крупного рогатого скота – труднодиагностируемое и, главное, трудноизлечимое заболевание, приносящее фермерам значительный экономический ущерб. Возбудитель широко распространен по всему миру, но из-за успешной «маскировки» заболевание часто идентифицируют ошибочно.
Что это за заболевание «микоплазмоз»?
Возбудитель болезни – одноклеточный организм, занимающий промежуточное положение между бактериями и вирусами. Представители рода Mycoplasma способны к самостоятельному размножению, но у них нет клеточной оболочки, присущей бактериям. Вместо последней у микоплазм только плазматическая мембрана.
Заболеванию микоплазмозом подвержены многие виды млекопитающих и птиц, включая человека. Но эти одноклеточные, как и многие вирусы, специфичны и обычно не передаются от одного вида млекопитающего к другому.
Микоплазмоз у КРС вызывают 2 разновидности:
М. Bovis провоцирует пневмоартрит КРС;
М. Bovoculi вызывает кератоконъюнктивит у телят.
Кератоконъюнктивит – относительно редкое явление. Заболевают им чаще телята. В основном микоплазмоз КРС проявляется в 3 формах:
- пневмония;
- полиартрит;
- уреаплазмоз (генитальная форма).
Так как первые две формы плавно перетекают одна в другую, нередко их объединяют под общим названием пневмоартрит. Уреаплазмозом болеют только взрослые особи КРС, так как в этом случае заражение происходит при половом контакте.
Примерно так под электронным микроскопом выглядят возбудители микоплазмоза крупного рогатого скота
Причины заражения
К микоплазмам наиболее чувствительны телята, хотя заражается КРС в любом возрасте. Основные разносчики микоплазмоза – больной и переболевший скот.
Внимание!
В организме выздоровевших животных возбудители сохраняются в течение 13-15 месяцев.
От заболевших животных возбудитель выделяется во внешнюю среду вместе с физиологическими жидкостями:
- мочой;
- молоком;
- истечениями из носа и глаз;
- слюной, в том числе при кашле;
другими секретами.
Микоплазмы попадают на подстилку, корма, в воду, на стены, на инвентарь, заражая всю окружающую среду и передаваясь здоровым животным.
Также заражение микоплазмозом КРС происходит и «классическими» путями:
- орально;
- воздушно-капельным;
- контактным;
- внутриутробно;
- половым.
Ярко выраженной сезонности у микоплазмоза нет, но наибольшее число заражений происходит в осенне-зимний период, когда КРС переставляют на фермы.
Замечание! Скученность скота всегда была основной причиной эпизоотий.
Область распространения и интенсивность заражения во многом зависят от условий содержания и кормления и микроклимата помещений. Микоплазмоз КРС долго держится «на одном месте». Это объясняется длительным периодом сохранения бактерий в организме переболевших животных.
Симптомы микоплазмоза у коров
Инкубационный период длится 7-26 дней. Чаще всего симптомы микоплазмоза наблюдают у телят весом 130-270 кг, но клинические признаки могут появиться и у взрослых животных. Явное проявление микоплазмоза происходит лишь спустя 3-4 недели после заражения. Быстрее всего заболевание распространяется в холодную влажную погоду и при большой скученности КРС. Первоначальные симптомы микоплазмоза очень похожи на пневмонию:
- затрудненное дыхание: КРС прилагает максимум усилий, чтобы втянуть воздух в легкие и потом вытолкнуть его;
- частый резкий кашель, который может перейти в хроническую форму;
- истечения из носа;
- иногда конъюнктивит;
- потеря аппетита;
- постепенное истощение;
- температура 40° С, особенно если на микоплазмоз «подсела» вторичная инфекция;
- при переходе заболевания в хроническую стадию температура выше нормальной лишь немного.
Артрит начинается спустя неделю после появления пневмонии. При артрите у КРС отекают один или несколько суставов. Падеж начинается спустя 3-6 недель после появления клинических признаков.
Артриты у КРС – «нормальное» явление при микоплазмозе
При генитальной форме микоплазмоза крупного рогатого скота наблюдают обильные гнойные выделения из влагалища. Слизистая оболочка вульвы сплошь покрыта мелкими красными узелками. Больная корова больше не оплодотворяется. Возможно также воспаление вымени. У быков пальпацией определяют отек придатка семенника и семенного канатика.
Диагностика микоплазмоза у КРС
Из-за схожести симптомов микоплазмоза с другими заболеваниями КРС диагноз можно поставить только комплексным методом. При определении болезни учитывают:
- клинические признаки;
- эпизоотологические данные;
- патанатомические изменения;
- результаты лабораторных исследований.
Основной упор делают на патанатомические изменения и лабораторные исследования.
Внимание! На исследование патологоанатомических изменений надо отправлять ткани и трупы животных, не подвергавшихся лечению.
Патологоанатомические изменения
Изменения зависят от области основного поражения микоплазмами. При заражении воздушно-капельным и контактным путем в первую очередь страдают слизистые глаз, пасти и носовой полости.
При заболевании глаз отмечают помутнение роговицы и ее шероховатость. Конъюнктива отечная и покрасневшая. В результате вскрытия чаще всего параллельно с поражением глаз обнаруживают гиперемию слизистой носовых проходов. Очаги поражения в средних и главных долях легких обнаруживают при скрытом или начальном течении болезни. Очаги плотные, серого или красно-серого цвета. Соединительная ткань серо-белого цвета. В бронхах слизисто-гнойный экссудат. Бронхиальные стенки утолщенные, серые. Лимфатические узлы в районе заражения могут быть увеличенными. При осложнении микоплазмоза вторичной инфекцией в легких обнаруживают некротические очаги.
Селезенка припухшая. Почки немного увеличены в объеме, могут быть кровоизлияния в почечную ткань. Дистрофические изменения в печени и почках.
В случае проникновения микоплазм в вымя консистенция его тканей плотная, соединительная междольковая ткань разросшаяся. Возможно развитие абсцессов.
При поражении микоплазмозом половых органов у коров наблюдают:
- набухшую слизистую матки;
- утолщение фаллопиевых труб;
- серозные или серозно-гнойные массы в просвете яйцепроводов;
- катарально-гнойный сальпингит и эндометрит.
У быков развиваются эпидидимит и везикулит.
Выделения из глаз и носа необходимо отправить в лабораторию на анализ
Лабораторные исследования.
Для проб в лабораторию отправляют:
- смывы из влагалища коровы;
- сперму;
- эмбриональные оболочки;
- молоко;
- кусочки легких, печени и селезенки;
- бронхиальный лимфоузлы;
- кусочки головного мозга;
- абортированные или мертворожденные плоды;
- пораженные суставы в целом состоянии;
- смывы и слизь из носа при условии поражения верхних дыхательных путей.
Образцы тканей доставляют в лабораторию в замороженном или охлажденном виде.
Внимание! Отбирают материал для исследований строго в течение 2-4 часов после падежа или вынужденного забоя.
Для прижизненной диагностики в лабораторию отправляют 2 пробы сыворотки крови: 1-ю при появлении клинических признаков, 2-ю спустя 14-20 дней.
Меры профилактики
Профилактика микоплазмоза начинается со стандартных ветеринарных правил:
- не перемещать животных из неблагополучных по микоплазмозу хозяйств;
- осеменять коров только здоровой спермой;
- не вводить в стадо КРС новых особей без месячного карантина;
- регулярно проводить дезинсекцию, дезинфекцию и дератизацию помещений, где содержится скот;
- регулярно дезинфицировать оборудование и инвентарь на ферме;
- обеспечить КРС оптимальными условиями содержания и рационом.
При обнаружении микоплазмоза молоко от больных коров подвергают термической обработке. Только после этого оно пригодно к употреблению. Больных животных немедленно изолируют и лечат. За животными остального стада устанавливают наблюдение. Помещения и инвентарь дезинфицируют растворами формалина, йодоформа или хлора.
Прививки не проводят по причине отсутствия вакцины от микоплазмоза для КРС. Пока такой препарат разработан лишь для домашней птицы.
Микоплазмоз КРС – заболевание, требующее постоянного контроля со стороны владельца животных. Тот самый случай, когда лучше лишний раз принять простое засорение глаз за микоплазмоз, чем запустить болезнь. Чем выше будет концентрация возбудителя заболевания в организме, тем тяжелее будет вылечить животное.