отчетный период с 18.09.2020 г. по 24.09.2020 г.
За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллез крупного рогатого скота – 3184 пробы;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 845 проб, положительных – 1 проба;
- хламидиоз мелкого рогатого скота – 10 проб;
- листериоз мелкого рогатого скота – 10 проб;
- бруцеллез лошадей – 83 пробы;
- сап лошадей – 83 пробы;
- случная болезнь лошадей – 52 пробы;
- инфекционная анемия лошадей – 52 пробы;
- бруцеллез пони – 13 проб;
- сап пони – 13 проб;
- случная болезнь пони – 13 проб;
- инфекционная анемия пони – 13 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 73 пробы, положительных – 2 пробы;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 216 проб, положительных – 6 проб;
- лептоспироз лошадей – 22 пробы, положительных – 2 пробы;
- лейкоз крупного рогатого скота –1957 проб, положительных – 147 проб.
Возбудитель инфекции – неспороносные бактерии-палочки рода Salmonella.
Устойчивы во внешней среде, при низких температурах не погибают. В водоемах живут до 4-5 месяцев, в фекалиях до 3 лет, в молоке 1-3 недели, в яйцах птиц сохраняют жизнеспособность до 1 года. Устойчивы к большинству антибиотиков. При высоких температурах от 55 °С, а также под воздействием ультрафиолетового излучения гибнут. Для обеззараживания мяса рекомендуется нагревать его до 75-80 оС минимум 10 минут. Хорошо уничтожаются различными дезинфицирующими средствами.Основной источник заболевания сельскохозяйственные животные: коровы, свиньи, овцы, лошади; пушные звери, а также птицы, зачастую переносчиками являются грызуны. Переболевшее животное может многие годы выделять возбудитель во внешнюю среду.Возникает чаще всего при нарушениях правил санитарии и содержания. Пути передачи различные: через фекалии, мочу, молоко, слюну, употребление зараженного мяса, яиц или молока. Проникая в организм токсины, выделяемые сальмонеллой, повреждают стенку кишечника, проникают в кровеносную и лимфатическую системы, вызывая дегенеративные процессы в различных системах и органах.Инкубационный период от 5-6 часов (при пищевом заражении) до 3 недель. Существует несколько форм сальмонеллеза, каждому из которых свойственны свои симптомы.
Больных животных необходимо изолировать. Самая распространенная схема лечения – антибиотикотерапия и использованием сульфаниламидных препаратов. Но необходимо внимательно выбирать антибиотики, потому что бактерия приобретает резистентность.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 55 проб:
* корма – 23 пробы;
* пищевая продукция – 28 проб;
* вода – 2 пробы.
Также для радиологических исследований поступило 2 пробы.
За отчетный период выявлено 2 положительных результата.
1. В 2 пробах мясокостной муки установлена массовая доля сырой золы выше нормы – 2.

Проведение радиологических исследований в отделе
22 сентября 2020 года в рамках внутреннего обучения сотрудников с докладом о работе в радиологии выступил инженер-физик 1 категории отдела химических исследований Фиронов Олег Валерьевич.
Были рассмотрены такие темы как:
- Предназначение и состав установки спектрометрической МКС-01А "МУЛЬТИРАД";
- Приготовление счётных образцов для спектрометрических исследований;
- Измерение активности радионуклидов Cs-137 и Sr-90 с использованием установки спектрометрической МКС-01А "МУЛЬТИРАД";
- Проведение внутрилабораторного контроля качества измерений при проведении радиологических исследований.
Спектрометрическая установка МКС-01А «МУЛЬТИРАД» предназначена для измерения активности и определения удельной активности радионуклидов в счётных образцах (Цезий-137 и Стронций-90).
В состав установки входят:
• блок детектирования бета-излучения; блок детектирования гамма-излучения;
• свинцовая защита, обеспечивающая функции фиксации блоков детектирования и измерительной кюветы и защиты от фона внешнего гамма-излучения;
• измерительные кюветы, соответствующие требованиям геометрии измерения;
• контрольные источники для выполнения энергетической калибровки и для контроля сохранности характеристик детекторов;
• процессорный блок с программным обеспечением «Прогресс», реализующий алгоритм обработки спектра.

Для измерения содержания Цезия-137 пробу достаточно измельчить до такого размера, чтобы она равномерно заполнила объём измерительной кюветы. Проба помещается в измерительную кювету, на весах определяется её масса, и счётный образец готов к измерениям. В случае жидкости это делают при помощи мерного цилиндра.
При определении активности стронция-90 с помощью бета-спектрометра в пробах органического происхождениях нужно руководствоваться следующим правилом: при нормах более 100 Бк/кг продукты питания можно измерять неконцентрированными, применяя любой алгоритм обработки спектра в программе ПРОГРЕСС.
При нормативах менее 40 Бк/кг вещество пробы надо сконцентрировать.
Неконцентрированные пробы желательно помещать в измерительную кювету в виде фарша и использовать приспособление в виде небольшого пресса для выравнивания. Жидкие пробы непосредственно наливаются в кювету.
Концентрирование активности в счётных образцах можно проводить любым известным способом: с помощью муфеля, печи СВЧ и так далее, но самый простой способ на сковороде с электроплиткой.
Масса вещества пробы и полученного концентрата определяется на весах.
При выполнении измерений активности выполняются следующие операции:
• в программном обеспечении выбирают задачу, соответствующую режиму измерения активности. В окне задачи указывают геометрию измерений и предполагаемый радионуклидный состав счётного образца, массу счётного образца, указывают код пробы, время измерения (не менее 30 минут) и справочную информацию об исследуемом объекте;
• устанавливают счётный образец в устройство для измерения счётного образцов;
• включают режим накопления спектра.
По окончании измерения считывают результат измерения с экрана. Спектр с результатами измерений сохраняется в базе данных программы. Результат измерения представляет собой значение активности счётного образца.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики поступило 319проб, проведено 985 исследований.В ходе исследований было выявлено 26 положительных случаев (в 17 пробах обнаружены бактерии группы кишечной палочки).
Санитарно-микробиологические исследования смывов являются одной из самых востребованных услуг лаборатории. Смыв – это образец жидкости с микроорганизмами, взятый с той среды, на которой они первоначально могут присутствовать (поверхностей рук работников, оборудования, столов, спецодежды и т.п.) Благодаря регулярно проводимым микробиологическим исследованиям и принимаемым собственниками компаний мерам повышается качество выпускаемой продукции и её безопасность для потребителей.
Процедура исследования смывов с рук, оборудования и т.д. является частью программы мероприятий производственного контроля, она законодательно закреплена в санитарных нормах. Этот метод исследования очень актуален и востребован благодаря его объективности и точности и является обязательным. Несоблюдение элементарных гигиенических требований является прямой угрозой бизнесу, здоровью занятых на предприятии сотрудников, клиентов.
Цели микробиологических исследований
Изучение микрофлоры смывов с рук и т.д. необходимо в следующих целях:
- Оценка санитарно-гигиенической обстановки в лечебно-профилактических, учебных детских заведениях, на предприятиях общественного питания,
- Исследование бактериологической загрязненности рук персонала, окружающих предметов, оборудования и техники (для этого проводится взятие смывов с оборудования),
- Установление путей распространения различных инфекционных заболеваний,
- Установление эпидемиологической безопасности выпускаемой на предприятии продукции,
- Минимизация рисков отравлений, возникновения различных заболеваний, связанных с приемом или использованием загрязненной продукции и др.
При этом важно изучить те объекты, которые используются при приготовлении, хранении, транспортировке пищи.
Поэтому в первую очередь микробиологические исследования – смывы проводятся в отношении:
- Посуды, оборудования, кухонного инвентаря, бытовых и столовых приборов и т.п.,
- Собственно, продуктов – полуфабрикатов, сырья, готовых изделий, скоропортящихся продуктов питания и т.п.,
- Воды, используемой в процессе производства,
- Рук работающего персонала, рабочей одежды и рабочих поверхностей (столов, раковин, шкафов).
При изучении состава взятых проб работники лаборатории оценивают такие параметры, как:
- Итоговая обсемененность,
- Присутствие микроорганизмов Proteus,
- Наличие бактерий, вызывающих кишечные инфекции – БГКП,
- Присутствие сальмонеллы,
- Присутствие золотистого стафилококка,
- Общее микробное число (или ОМЧ).
Также смывы с рук покажут эффективность обработки рабочих поверхностей, поможет установить долю обсеменения продукта питания, которая вносится во время технологического процесса – для сравнения работники лаборатории берут как первичные, так и вторичные пробы готовой продукции.
Существуют нормативные документы, к примеру, МУ 2657-82, регламентирующие порядок сбора материалов для проведения исследования на бактериологическую обсемененность.
Так, забор смывов рук и оборудования производится с использованием специальных стерильных ватных тампонов, увлажненных специальной питательной средой и вмонтированных в пробирки. После взятия смывов тампоны погружают в питательную среду.
Вот примеры того, как происходит забор материала для анализа:
Смывы с оборудования и рабочего инвентаря берутся до начала работы или в санитарные дни после санобработки. При этом с крупного инвентаря и рабочих поверхностей для снятия смывов используют трафарет со сторонами 5 см. обычно исследуется поверхность в 100 кв.см, причем пробы берутся из нескольких точек.
Смывы с рук работников берутся следующим образом: сначала тампоном протираются ладони и пальцы рук (обеих, причем тампоном проводят не менее пяти раз), также протираются межпальцевые области, ногти и участки под ногтями.
Смывы с санитарной одежды берутся так: выбираются и протираются тампоном 4 участка площадью по 25 кв.см. каждый: на правом и левом рукаве, а также с передней и верхней части рабочей одежды.
Дополнительно необходимо взять смывы с систем кондиционирования и вентилирования.
Пробы для проведения посевов доставляются в лабораторию в термоконтейнерах. Срок доставки не должен превышать 4 часов. По результатам проведенного в бактериологической лаборатории анализа результатов микробиологических смывов клиент получает протокол лабораторных исследований.
Обучение сотрудников лаборатории
В рамках реализации плана внутреннего обученияс целью поддержания профессиональных знаний сотрудников и во исполнение п. 20 Критериев аккредитации № 326 «Об утверждении Критериев аккредитации, перечня документов, подтверждающих соответствие заявителя, аккредитованного лица критериям аккредитации, и перечня документов в области стандартизации, соблюдение требований которых заявителями, аккредитованными лицами обеспечивает их соответствие критериям аккредитации» от 30.05.2014 г. в Испытательной лаборатории с 21.09.2020 по 25.09.2020 проходило обучение по темам:
- «Контроль питательных сред. Качественный и количественный контроль», докладчик - Попова Татьяна Николаевна – сотрудник отдела приготовления питательных сред;
- «Предназначение и состав установки спектрометрической МКС-01А "МУЛЬТИРАД". Приготовление счётных образцов для спектрометрических исследований. Измерение активности радионуклидов Cs-137 и Sr-90 с использованием установки спектрометрической МКС-01А "МУЛЬТИРАД". Проведение внутрилабораторного контроля качества измерений при проведении радиологических исследований», докладчик - Фиронов Олег Валерьевич - специалист отдела химических исследований;
- «МУК по диагностике лейкоза КРС №13-7-2/2130. Методы диагностики. Гематологический метод (подготовка проб к исследованию)», докладчик - Мячина Ольга Федоровна – сотрудник отдела бактериологии и паразитологии.
- «Прием проб сыворотки крови КРС для серологических исследований» - докладчик - Давыдкина Анна Сергеевна – сотрудник отдела приема материала, обработки и выдачи результатов.
Данными специалистами в своих докладах были освещены теоретические и практические особенности проведения исследований (испытаний) и измерений, а также отбора проб.С целью закрепления представленной информации по итогам обучения были заданы вопросы слушателям и определены задачи по развитию и мониторингу деятельности персонала как обязательного условия для получения достоверных результатов.
отчетный период с 11.09.2020 г. по 17.09.2020 г.
С целью обучения вновь принятых сотрудников и поддержания профессиональных знаний и навыков действующих специалистов в дополнение к плановому внешнему обучению, составленному с учетом требований письма Росаккредитации от 31.12.2014 № 26218/04-СМ «О требованиях к образованию работников испытательных лабораторий», подготовленного на основании Федерального закона от 29.12.2012 № 273-ФЗ «Об образовании в Российской Федерации», в Испытательной лаборатории организовано внутреннее обучение правилам и требованиям к лабораторной деятельности и методам диагностики инфекционных заболеваний сельскохозяйственных животных.
Следует отметить, что требование о наличии у работников, участвующих в выполнении работ по исследованиям (испытаниям) и измерениям, навыков и профессиональных знаний, необходимых для выполнения работ по исследованиям (испытаниям) в области аккредитации установлено пунктом 20 Критериев аккредитации.
ГБУ «Оренбургская облветлаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллез крупного рогатого скота – 5173 пробы;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 536 проб;
- бруцеллез свиней – 162 пробы;
- хламидиоз свиней – 163 пробы;
- бруцеллез лошадей – 3 пробы;
- сап лошадей – 3 пробы;
- бруцеллез морских свинок – 2 пробы;
- бруцеллез собак – 1 проба;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 263 пробы, положительных – 50 проб;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 169 проб, положительных нет;
- лептоспироз свиней – 208 проб, положительных – 8 проб;
- лептоспироз лошадей – 19 проб, положительных – 12 проб;
- лептоспироз пони – 13 проб, положительных – 3 пробы;
- лептоспироз собак – 1 проба, положительных нет;
- лептоспироз свиней (моча) – 6 проб, возбудителей лептоспироза не обнаружено;
- лептоспироз лошадей (моча) – 1 проба, возбудителей лептоспироза не обнаружено;
- лейкоз крупного рогатого скота – 2429 проб, положительных – 332 пробы.
Все инвазионные заболевания, в зависимости от возбудителя, делят на несколько групп – гельминтозы, протозоозы, арахнозы и энтомозы. Гельминтозы – инвазионные заболевания, вызываемые паразитическими червями, или глистами. Эта группа заболеваний является самой многочисленной (60 %) и распространена почти повсеместно. К гельминтозам относятся трематодозы, цестодозы и нематодозы.
16.09.2020 г. в Испытательной лаборатории ГБУ «Оренбургская облветлаборатория» проходило внутреннее обучение по теме: «Парвовирусная инфекция свиней. Метод РТГА». Докладчик Камчатная Валерия Александровна - ветеринарный врач отдела бактериологии и паразитологии, освоившая внешнее обучение в ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный аграрный университет».
Данным специалистом была представлена информация по возбудителю парвовирусной инфекции свиней, названы основные пути заражения и характер течения заболевания. Также более подробно былизатронуты практические аспекты проведения реакции торможения гемагглютинациис использованием набора для диагностики парвовирусной болезни свиней в реакции гемагглютинации (РГА) и реакции торможения гемагглютинации (РТГА).
По итогам доклада,а также в рамках реализации пункта 20 Критериев аккредитации № 326 «Об утверждении Критериев аккредитации, перечня документов, подтверждающих соответствие заявителя, аккредитованного лица критериям аккредитации, и перечня документов в области стандартизации, соблюдение требований которых заявителями, аккредитованными лицами обеспечивает их соответствие критериям аккредитации» от 30.05.2014 г. были заданы вопросы слушателям с целью закрепления представленной информации. Дополнительно определена концепция лаборатории по совершенствованию диагностики данного заболевания как направления лабораторной деятельности.
За отчетный период с 11.09.2020 по 17.09.2020г. в отделе ВСЭ и диагностики поступило 592 пробы, проведено 1834 исследования.В ходе исследований было выявлено 8 положительных случаев ( в 1 пробы сырого коровьего молока были обнаружены антибиотики).
Животные могут болеть, и их приходится лечить, в том числе антибиотиками. Коровы дают молоко круглогодично, что противоестественно для их биологической природы, и это вызывает воспалительные процессы в их организме. Одна из серьезных проблем современного животноводства – заболевание дойных коров маститом. Из-за скученности животных, тесноты, часто возникают различные инфекции, которые быстро передаются от одного животного к другому. Также делается профилактика заболеваний животных. Так что одним из источников антибиотиков в молоке является лечение и профилактика заболеваний. Каждому антибиотику определен срок выведения из организма (с молоком, из тканей и т.д.) средний срок от 2х до 3х недель. Как правило, для выведения пенициллина из организма животного достаточно 3-5 дней, однако в ряде случаев для больных животных этот период может увеличиться до 6-11 дней. По санитарным правилам молоко от пролеченных коров в течение 5-10 дней (зависит от примененного препарата) должно утилизироваться. Но при общем недостатке молока, когда крупные производители скупают буквально все подряд, фермеры просто разбавляют молоко от нормальных коров молоком с антибиотиками. Да, концентрация стала меньше, но антибиотики никуда не делись. Помимо лечения антибактериальные препараты могут применяться для стимуляции роста животного (привес увеличивается на 30%). Недобросовестные фермеры могут добавлять антибиотики в корма для их консервирования, но это тоже противозаконно. Это второй источник антибиотиков в молоке. Какие антибиотики можно обнаружить в молоке? В животноводстве используются более 70 видов антибиотиков, но наиболее употребимыми являются давно известные и недорогие бета-лактамы (пенициллины), тетрациклины, сульфаниламиды, стрептомицин, производные фторхинолона, левомицетин. Тетрациклин — самый дешевый и один из самых опасных антибиотиков, обладающий широким спектром антибактериального действия. Согласно инструкции по применению, тетрациклин может вызывать гастрит и проктит, не говоря о понижении аппетита. Тетрациклин и другие препараты этого ряда могут повысить чувствительность кожи к действию солнечных лучей (фотосенсибилизация). В последнее время в связи с распространенностью тетрациклиноустойчивых штаммов микроорганизмов и частыми побочными явлениями применение тетрациклина в медицинских целях стало ограниченным. Чем опасны для человека антибиотики в молоке и вообще в продуктах питания? Конечно, говоря о наличии антибиотиков в молоке, купленном в магазине, речь идет о микроскопических дозах этих веществ. Но, по мнению специалистов, из-за специфических особенностей этих препаратов, даже минимальные дозы антибиотиков негативно влияют на микрофлору кишечника, а также повышают риск возникновения устойчивости (или резистентности) болезнетворных микроорганизмов к лекарствам. Всё это в итоге снижает иммунитет организма. Длительное использование в пищу продуктов, содержащих остаточные количества антибиотиков, может вызвать неблагоприятные для здоровья человека последствия — аллергические реакции, дисбактериоз. К примеру, для антибиотиков тетрациклинового ряда характерен кумулятивный эффект. Накапливаясь в организме, они могут негативно воздействовать на органы слуха, вызывать снижение количества тромбоцитов, вызывать токсические реакции в печени. Накапливаясь в костной ткани, тетрациклины могут нарушать ее формирование, особенно опасно это для детей, потому что у них может замедлиться рост. У взрослых регулярное поступление тетрациклина приводит к разрушению зубов. Сульфат стрептомицина оказывает нефропатическое действие и вызывает нарушение центральной части слухового рецептора. Производные фторхинолона у детей до 14 лет накапливаются в хрящевой ткани, что приводит к нарушениям скелета. Получается парадокс: пьем молоко из-за полезного для зубов и костей кальция, а получаем совершенно обратный результат. На прилавках магазинов можно встретить молоко с различными сроками годности – от 2 месяцев до полугода. Означает ли это, что молоко с длительным сроком хранения содержит антибиотики? Нет, в данном случае причина в способе обработки молока и свойствах упаковки. Тепловая обработка молока – это пастеризация или стерилизация.
Кипячение и стерилизация практически не влияют на содержание антибиотиков в молоке. После кипячения в молоке остается от 90 до 95 % исходного количества антибиотиков, то есть разрушается от 5 до 10 % их количества. После стерилизации в молоке остается от 92 до 100 % исходного количества антибиотиков. Такие данные позволяют сделать выводы о непригодности параметров кипячения и стерилизации для разрушения антибиотиков в молоке. Наибольшее снижение количества антибиотиков в образцах происходит при длительной пастеризации. Возможно, это связано с наиболее длительным влиянием на антибиотики высокой температуры, которая приводит к коагуляции белков и оседанию их вместе с антибиотиком на стенках ёмкостей. Сохраняются ли антибиотики в молочных продуктах – в сухом молоке, кефире, сырах и т.д.? К счастью для потребителя, из молока с антибиотиками сложно изготовить кисломолочные продукты. Микроорганизмы, которые используются в кисломолочном производстве, очень чувствительны к антибиотикам. Присутствие их в молоке приводит к технологическим проблемам на молочном предприятии. Антибиотики влекут отставание или полное задерживание ферментативных процессов при производстве сыров, творога и кисломолочных напитков. Изменение соотношения микроорганизмов в заквасках негативно влияет на показатели качества, в частности, на внешний вид продукта (например, отсутствие глазков в сыре). Большая часть антибиотиков из жидкого молока переходят в порошковое. Они, к сожалению, при сушке не разрушаются. Если из молока с антибиотиками изготовить сливочное масло, то антибиотики сохранятся и в нем. В меньшей, конечно, степени. Но жирорастворимые антибиотики там остаются. То есть во многих продуктах, изготовленных из молока, антибиотики присутствовать могут, в чем и опасность.
11.09.2020 г. в рамках реализации пункта 20 Критериев аккредитации № 326 «Об утверждении Критериев аккредитации, перечня документов, подтверждающих соответствие заявителя, аккредитованного лица критериям аккредитации, и перечня документов в области стандартизации, соблюдение требований которых заявителями, аккредитованными лицами обеспечивает их соответствие критериям аккредитации» от 30.05.2014 г. в Испытательной лаборатории ГБУ «Оренбургская облветлаборатория»проходило внутреннее обучение по теме: «Общие правила отбора и доставки патологического материала», докладчик – Лобачева Елена Владимировна - заведующий отделом приема материала, обработки и выдачи результатов, кандидат биологических наук.
Были освещены основные аспекты обеспечения правильного отбора проб как гарантия получения достоверных результатов исследований (испытаний). Так, при отборе патологического материала необходимо учесть:
- соблюдение правил работы с патологическим материалом, согласно требований СП 1.3.3118-2013;
- организацию подготовки к отбору как до выезда на отбор, так и на месте отбора;
- особенности проведения отбора патологического материала;
- надлежащую упаковку и транспортировку либо доставку материала для проведения исследований (испытаний).
Таким образом, целью организации внутреннего обучения является своевременное обучение и развитие сотрудников лаборатории в соответствии с поставленными задачами. Данное обучение будет проходить в форме лекций и тренингов. Представителями обучающего материала являются специалисты лаборатории,прошедшие повышение квалификации в лицензированных обучающих центрах.
отчетный период с 28.08.2020 г. по 03.09.2020 г.
За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллез крупного рогатого скота – 704 пробы;
- паратуберкулез крупного рогатого скота – 96 проб;
- хламидиоз крупного рогатого скота – 96 проб;
- бруцеллез свиней – 67 проб;
- хламидиоз свиней – 67 проб;
- бруцеллез лошадей – 41 проба;
- сап лошадей – 41 проба;
- случная болезнь лошадей – 75 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 75 проб;
- бруцеллез морских свинок – 2 пробы;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 92 пробы, положительных – 3 пробы;
- лептоспироз лошадей – 3 пробы, положительных – 3 пробы;
- лептоспироз свиней (моча) – 7 проб, возбудителей лептоспироза не обнаружено;
- лейкоз крупного рогатого скота –1255 проб, положительных – 163 пробы.
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 161 проб материала, проведено 248 исследований, выявлено 9 положительных случаев.
В поступившей в отдел бактериологии и паразитологии для исследования труп курицы был обнаружен возбудитель аспергиллеза (Aspergillus niger).Аспергиллез - инфекционное заболевание всех видов домашних животных, вызываемая грибами рода аспергиллюс и сопровождающаяся поражением органов дыхания и серозных оболочек.
Основным возбудителем аспергиллеза у птиц и млекопитающих является гриб Aspergilliusfumigatus,A. flavus, A. niger и A. nidulans.
Аспергиллы широко распространены в природе. На растительных остатках и в почве аспергиллы живут как сапрофиты. При благоприятных условиях для их развития и в процессе приспособления аспергиллы приобретают свойства паразитов и развиваются в органах и тканях животных. Попав в организм гриб начинает выделять протеолитические ферменты и эндотоксин, который обладает гемолизирующими и токсическими свойствами.Источником возбудителя являются пораженные грибками корма (сено, солома, зерно и т.д.). Заболеванию способствуют факторы снижающие резистентность организма (содержание животных в сырых, плохо вентилируемых помещениях, отсутствие прогулок, несбалансированное кормление и т.д.). Животные в основном заражаются аэрогенным путем, но и бывает заражение алиментарным, путем проникновения грибка в организм. Источником возбудителя инфекции служат больные животные, когда они своими выделениями заражают корма, инвентарь и подстилку.
У птиц в зависимости от возраста болезнь имеет острое, подострое и хроническое течение. Инкубационный (скрытый) период продолжается от 3 до 10дней. При остром течении болезни симптомы заболевания появляются внезапно, птица становится малоподвижной, крылья опущенными, перья взъерошенными, отказ от корма. Затем у больной птицы появляется одышка, она начинает дышать ртом, появляются истечения из носовой полости. Острая форма болезни у птиц длится 1-4 дня. Падеж составляет 80-100%.Диагноз на аспергиллез ставится на основании учета эпизоотических данных, клинических признаков болезни, результатов патологоанатомического вскрытия и лабораторной диагностики.
Лабораторная диагностика аспергиллеза заключается в микроскопическом исследовании патологического материала на предмет обнаружения мицелия гриба и выделения из пораженных органов чистой культуры возбудителя методом культивирования на средах Сабуро, Чапика, сусло-агаре и др. Кроме того, для определения источника заболевания исследуют корма и подстилку, овоскопируют яйца.
Специфическая терапия аспергиллеза не разработана. Для предупреждения распространения болезни среди птиц и других видов животных применяют препараты йода (йодистый калий, йодинол, люголевый раствор), нистатин и амфотерицинВв виде аэрозоля, с питьевой водой или кормом.Животным необходимо давать только доброкачественный корм. Необходим контроль за соблюдением правил заготовки кормов. Корма желательно хранить в закрытых, сухих помещениях. При содержании животных в помещении скотных дворов не допускают сырости, которая способствует быстрому развитию гриба. В период зимне-стойлового содержания животным предоставляем ежедневные прогулки. В помещении скотных дворов проводят систематическую механическую очистку и периодическую дезинфекцию помещений и кормушек растворами едкого натра и формалина, смешанных в равных пропорциях. Оставшиеся корма подвергают сжиганию. Для профилактики аспергиллеза устанавливают строгий ветеринарно-санитарный контроль за качеством кормов, особенно комбикормов, зерноотходов и отрубей.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 30 проб:
* корма – 4 пробы;
* пищевая продукция – 22 пробы;
* вода – 1 проба.
Также для радиологических исследований поступило 3 пробы.
За отчетный период выявлено 3 положительных результата.
1.В 1 пробе мясокостной муки установлена массовая доля сырой золы выше нормы – 1.
2.В 1 пробе прудовой воды выявлены содержание хлорид-ионов - 1 выше нормы, содержание нитрит-ионов -1 выше нормы.
Титриметрический или объемный метод анализа является одним из методов количественного анализа. В основе этого метода лежит точное измерение объемов растворов двух веществ, реагирующих между собой. Количественное определение с помощью титриметрического метода анализа выполняется довольно быстро, что позволяет проводить несколько параллельных определений и получать более точное среднее арифметическое.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики поступило 299 проб, проведено 958 исследований.В ходе исследований было выявлено 25 положительных случаев.
Микробиологический анализ смывов.
Изучение микрофлоры смывов необходимо:
1.Для определения санитарно-гигиенического состояния заведений общественного питания – ресторанов, кафе, столовых в школах, детских садах, больницах, а также предприятий пищевых торговых сетей – при этом исследуется загрязненность рабочих поверхностей, окружающих предметов и рук работающего в сфере общепита персонала.
2.Для выявления путей распространения опасных инфекционных заболеваний – при этом изучаются смывы, взятые с поверхностей исследуемых объектов и рук людей.
При проверке организаций общественного питания микробиологический анализ смывов позволяет определить общий уровень загрязненности предприятия, наличие или отсутствие нарушений в технологиях приготовления продуктов питания, сделать выводы о соблюдении санитарно-гигиенических норм. Также с помощью анализа смывов можно определить правильность хранения продуктов и готовых блюд. Главная же цель микробиологического анализа смывов – это снижение рисков отравлений, острых кишечных отравлений и других заболеваний, связанных с приемом некачественной пищи. Анализ результатов исследования и принятие соответствующих мер по повышению санитарно-гигиенического уровня на предприятии – залог высокого качества и безопасности продукции.
Что проверяется при лабораторном анализе смывов. Каждое предприятие общественного питания обязано регулярно осуществлять санитарно-бактериологический контроль, который связан с исследованием предметов и объектов, соприкасающихся с пищей или используемых при её приготовлении, обработке и хранении. Обычно исследуются:
Вода, используемая в процессе производства,
Оборудование, бытовые предметы, кухонный инвентарь,
Продукты и полуфабрикаты, готовые блюда и сырье,
Смывы с рабочей одежды и кожи рук работников предприятия общепита, с рабочих столов (используемых для обработки пищевых продуктов),
Пробы с посуды и столовых приборов.
Виды исследований микробиологических смывов
Методика сбора и изучения смывов широко используется во всем мире, поскольку дает очень точные и объективные результаты, а также помогает определить присутствие тех или иных патогенных микроорганизмов.
Микробиологические смывы БГКП – позволяют определить наличие или отсутствие бактерий группы кишечных палочек.
Особенности забора проб и проведения микробиологического анализа смывов.
Смывы собирают стерильными салфетками или ватными тампонами, которые предварительно смачивают стерильным изотоническим раствором.
Существуют некоторые правила забора материала для анализов:
Смывы с инвентаря и оборудования производят в санитарные дни после санитарной обработки или перед началом работы,
Если смыв необходимо взять с больших площадей – столы, стены, тогда пробы берут в нескольких местах (для площади в 100*100 см).
При сборе смывов с рук сотрудников общепита используют также стерильные тампоны или салфетки, которыми протирают тыльную часть кисти, затем ладонь не менее 5 раз, после чего межпальцевые участки и ногтевое ложе, а также зону под ногтями.
Собирая смывы с санитарной одежды, необходимо протереть 4 участка площадью 5*5 см каждый: нижние части обоих рукавов, а также 2 участка с нижней и верхней части переда спецовки.
Имеющиеся инструктивные материалы по санитарно- микробиологическому контролю предприятий общественного питания и торговли пищевыми продуктами указывают на то, что фекальное загрязнение должно быть исключено, т. е. не должно быть БГКП на оборудовании (не соприкасающимся с сырыми продуктами), на вымытой посуде. На всех обследуемых предметах обихода и оборудования не должны обнаруживаться патогенные микроорганизмы: их присутствие указывает на реальную опасность заражения. К сожалению, не всегда удается избежать фекального загрязнения на производстве.
отчетный период с 04.09.2020 г. по 10.09.2020 г.
За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллез крупного рогатого скота – 2241 проба;
- хламидиоз крупного рогатого скота – 4 пробы;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 260 проб;
- бруцеллез свиней – 83 пробы;
- хламидиоз свиней – 67 проб;
- бруцеллез лошадей – 43 пробы;
- сап лошадей – 36 проб;
- случная болезнь лошадей – 32 пробы;
- инфекционная анемия лошадей – 38 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 440 проб, положительных – 24 пробы;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 52 пробы, положительных нет;
- лептоспироз свиней – 83 пробы, положительных – 5 проб;
- лептоспироз лошадей – 33 пробы, положительных – 6 проб;
- лейкоз крупного рогатого скота –1179 проб, положительных – 130 проб.
Одним из главных этапов при систематическом контроле хранения зерна является исследование на микроскопические грибы.
В зерне в основном встречаются грибы рода Fusarium, Alternaria, Mucorи др.
Если рассматривать без микроскопа, можно наблюдать плотную бархатистую массу с воздушным мицелием. Колония гриба имеет серый, темно-оливковый или зеленый цвет – в зависимости от питательной среды. При увеличении можно увидеть:
1. Сегменты конидий с продольными и поперечными перегородками;
2. Споры, различающиеся по цвету, форме;
3. Конидии – одиночные или объединенные в легко распадающиеся цепочки;
4. Отличие по толщине перегородок, количеству клеток в спорах.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 59 проб:
* корма – 34 пробы;
* пищевая продукция – 19 проб;
* вода – 4 пробы;
* дез. растворы – 1 проба.
Также для радиологических исследований поступила 1 проба.
За отчетный период выявлен 1 положительный результат.
1. В 1 пробе мясокостной муки установлена массовая доля сырой золы выше нормы – 1.
Автоматический прибор для дистилляции с паром UDK-159
На прошлой неделе мы с Вами рассмотрели метод ручного титрования, применяемый в ходе испытаний. Однако при работе в отделе химических исследований используется также и UDK 159 – полностью автоматическая система дистилляции и титрования.
Прибор UDK 159, произведённый компанией VELP отлично подходит для того, чтобы решить задачи типа: выявление по Кьельдалю число азота белкового, аммонийного числа, фенолов, восстановившейся азотной кислоты, концентрация азота по Деварду, содержание в соединении спиртов и жирных летучих кислот. Дистиллятор предназначен для колориметрического определения конечной точки титрования. В приборе присутствует встроенный автотитратор.
Анализтор UDK 159 автоматически начинает работу после задания времени дистилляции, объёмов щёлочи, воды для разбавления, борной кислоты и уровня подачи пара. Характеристики задают с помощью 6-дюймового цветного сенсорного экрана.
Благодаря бюретке и насосам с высокой точностью обеспечивается постоянное добавление необходимых реагентов в определённом количестве. Наличие встроенного колориметрического титратора позволяет быть полностью уверенным в том, что полученные результаты будут надёжными и точными.
Анализатор UDK 159 оснащен уникальным запатентованным парогенератором, который обеспечивает высокую производительность, а также безопасность эксплуатации, так как не создает внутри высокого давления. Более того, парогенератор не требует технического обслуживания. Другая уникальная особенность данного аппарата — титановый конденсатор, который значительно сокращает расход охлаждающей воды, поддерживает температуру дистиллята ниже порогового значения и обеспечивает бесперебойную работу прибора.
В отделе химических исследований при помощи UDK 159 определяют массовую долю белка в пищевой продукции и кормах.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики поступило 1090 проб, проведено 1761 исследование.В ходе исследований было выявлено 17 положительных случаев.
КМАФАнМ - количество мезофильных аэробных и факультативно анаэробных микроорганизмов или общая бактериальная обсемененность. Это критерий, который позволяет выявить при температуре 30 °С в течение 48-72 часов все группы микроорганизмов, растущие на определенных средах. Эти микроорганизмы присутствуют всегда и везде (вода, воздух, поверхность оборудования).
Данный показатель характеризует общее содержание микроорганизмов в продукте, применяется повсеместно для оценки качества продуктов, за исключением тех, в производстве которых используются специальные микробные культуры (например, пиво, квас, кисломолочные продукты и т.п.). Его контроль на всех технологических этапах позволяет проследить, насколько "чистое" сырье поступает на производство, как меняется степень его "чистоты" после тепловой обработки и не претерпевает ли продукт повторного загрязнения после термообработки, во время фасовки и хранения.
Величина показателя КМАФАнМ зависит от многих факторов. Наиболее важные – режим термической обработки продукта, температурный режим в период его транспортировки, хранения и реализации, влажность продукта и относительная влажность воздуха, наличие кислорода, кислотность продукта и т.д. Увеличение КМАФАнМ свидетельствует о размножении микроорганизмов, в числе которых могут оказаться патогены и микроорганизмы, вызывающие порчу продукта (например, плесени); большое количество КМАФАнМ чаще всего свидетельствует о нарушениях санитарных правил и технологического режима изготовления, а также сроков и температурных режимов хранения, транспортирования и реализации пищевых продуктов.
Для потребителя показатель КМАФАнМ характеризует качество, свежесть и безопасность продуктов питания. В то же время, оценка качества продукта только по этому показателю имеет ряд недостатков. Во-первых, это только общая, количественная оценка микроорганизмов, поскольку при исследовании не учитываются патогенные, условно патогенные, психрофильные и термофильные микроорганизмы. Во-вторых, метод неприемлем для продуктов, содержащих технологическую и специфическую микрофлору.
Высокое содержание КМАФАнМ в продуктах питания может вызвать пищевое отравление с признаками диареи, гастроэнтерита. В наибольшей степени восприимчивы к данному заболеванию дети раннего возраста, пожилые и ослабленные люди.
Очень опасно покупать продукты питания на так называемых стихийных рынках, на улице с рук. Полюбившиеся нам готовые салаты, в состав которых входят колбаса, грибы, сыр и яйца, портятся очень быстро. Менее получаса вне холодильника достаточно, чтобы такой продукт скис и стал опасным для жизни. Сыры, кефир, йогурты, сметана и другие молочные производные в жару портятся особенно быстро. Стоит проверить не только дату выпуска, но и герметичность упаковки. Поэтому посещайте большие городские рынки, специально оборудованные для торговли. В торговой точке обязательно должен быть холодильник, нельзя, чтобы скоропортящийся товар лежал на прилавке. На все продукты продавец обязан предоставить сертификаты качества, ветеринарные свидетельства и заключения, а также свою собственную медкнижку. Покупайте продукты в крупных магазинах. В них качество продукта проверяется ежечасно, менеджеры и заведующий магазином проверяют каждую партию прибывшего товара.
отчетный период с 21.08.2020 г. по 27.08.2020 г.
За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллез крупного рогатого скота – 1070 проб;
- паратуберкулез крупного рогатого скота – 178 проб;
- хламидиоз крупного рогатого скота – 180 проб, положительных – 19 проб;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 42 пробы;
- бруцеллез свиней – 21 проба;
- хламидиоз свиней – 21 проба;
- бруцеллез северных оленей – 1 проба;
- бруцеллез лошадей – 35 проб;
- сап лошадей – 39 проб;
- случная болезнь лошадей – 5 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 5 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 176 проб, положительных – 61 проба;
- лептоспироз свиней – 94 пробы, положительных – 9 проб;
- лептоспироз лошадей – 77 проб, положительных – 44 пробы;
- лептоспироз крупного рогатого скота (моча) – 1 проба, возбудителей лептоспироза не обнаружено;
- лептоспироз свиней (моча) – 3 пробы, возбудителей лептоспироза не обнаружено;
- лептоспироз лошадей (моча) – 3 пробы, возбудителей лептоспироза не обнаружено;
- лейкоз крупного рогатого скота –319 проб, положительных – 28 проб.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 31 проба:
* корма – 17 проб;
* пищевая продукция – 6 проб;
* биоматериал (яйцо)– 1 проба;
* вода – 5 проб;
* дез. раствор (дезинфицирующее средство) – 1 проба.
Также для радиологических исследований поступила 1 проба.
За отчетный период выявлен 1 положительный результат.
1. В 1 пробе мясокостной муки установлена массовая доля сырой золы выше нормы – 1
Мясокостная мука для животных
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 258 проб материала, проведено 383 исследований, выявлено 32 положительных случаев.
В поступившей в отдел бактериологии и паразитологии для исследования расплод были обнаружены клещи варроа (Varraoajacobsoni).
Varroa (лат.) - род паразитических клещей, использующих в качестве хозяев медоносных пчёл и их расплод, вызывая варроатоз. Род назван в честь Марка ТеренцияВаррона, римского учёного и практического пчеловода. Один из двух родов (вместе с Euvarroa) в составе семейства Varroidae. Эта болезнь представляет собой одну из наиболее актуальных проблем пчеловодства и наносит ему колоссальный ущерб.
В летний период клещ распространяется от больных пчел к здоровым через: блуждающих пчел; пчел-воровок; при кочевках пасек; семьи, стоящие на перелете пчел; с роями; при купле-продаже пчел и маток; при подселении семей зараженным расплодом; при контакте пчел на цветках растений; при всех работах по перестановке сот из одной семьи в другую; с других насекомых (шмелей, ос); при открытом хранении вырезанного трутневого расплода.Варроатоз распространяется со скоростью 6-11 км в течение 3 месяцев, что зависит от степени насыщенности региона пчелами. В первую очередь, поражению подвержены отрутневшие семьи. Распространение и рост количества вредителя существенно выше в районах с жарким климатом.
Для борьбы с клещом следует выполнять целый комплекс мероприятий, который включает в себя общеорганизационные, специальные пчеловодческие и ветеринарные меры. Необходимо соблюдать условия содержания, кормления, разведения пчел, а также применять зоотехнические приемы борьбы с варроа и систематически проводить противоакарицидные обработки. Борьба с вредителем должна продолжаться ежегодно и комплексно. Очень важно снизить количество клещей после последней откачки меда. Так пчелы, которые выводятся и будут зимовать, смогут жить при минимальном уровне заражения. Вместе с тем, уменьшается и степень стресса при закармливании пчел. Следующая обработка будет максимально эффективна после окончания выведения расплода (в зимнее время). Весной же для уменьшения количества вредителей применяется метод вырезания трутневого расплода.Чтобы снизить вред, наносимый клещом варроа, следует проводить различные профилактические мероприятия:
1. Приобретенные семьи и пойманные рои требуется хотя бы единожды обработать (например, рой – перицином, а остальное – муравьиной кислотой);
2. На основании числа паразитов на поддоне принимается решение о необходимости проведения дальнейшей обработки;
3. Следует проводить регулярные обследования поддона и трутневого расплода на наличие паразитов;
4. Обработку против варроатоза крайне важно согласовывать с соседними пчеловодческими фермами для получения хорошего результата и во избежание повторного заражения.Методы борьбы применять регулярно, не пропускать периоды, наиболее подходящие для их осуществления, а также обязательна периодическая чистка, дезинфекция и своевременно перетапливать соты. Соблюдение обычных правил гигиены позволит уберечься от смешанных заболеваний.



