Отчетный период с 10.04.2026г. по 16.04.2026г.
Возбудитель обладает устойчивостью к факторам внешней среды и дезинфицирующим средствам. Основными факторами вирулентности являются эндотоксины.Клинические признаки болезни: периодическая диарея, переходящая в постоянную, отеки век, межчелюстного пространства, области подгрудка и нижней части живота, обезвоживание, прогрессирующее истощение, атрофия мышц в области крупа и задних конечностей, дугообразное изгибание позвоночника, паралич сфинктера прямой кишки. Возможно бессимптомное течение болезни.
Диагноз на паратуберкулез устанавливают на основании результатов клинического осмотра животных, аллергического, серологического, бактериоскопического, патологоанатомического или гистологического методов исследования с учетом эпизоотологических данных.
В серологическом отделе для диагностики паратуберкулеза животных проводят реакцию связывания комплемента (РСК). Сущность данной реакции заключается в выявлении комплементсвязывающих антител в сыворотке крови животных, инфицированных микобактериями паратуберкулеза.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 42 пробы, проведено 217 исследований.
В пробах лука репчатого свежего и огурцов свежих массовая доля нитратов - 2 выше нормы.
Хлорорганические пестициды (ХОС) в пищевых продуктах
Хлорорганические пестициды – производные циклопарафинов, бензола, многоядерных циклические углеводородов и других веществ, содержащие хлор. Характеризуются высокой химической устойчивостью, медленно разрушаются во внешней среде, оставаясь там годами, разносятся на большие расстояния потоками воды и воздуха. Жирорастворимые хлорорганические пестициды передаются по пищевым цепочкам, причем в каждом последующем звене их концентрация возрастает примерно в десять раз.
Оказывают токсическое действие практически на все виды живых существ. В первую очередь, накапливаются в богатых жирами тканях. Поражают печень, почки, эндокринную, сердечно-сосудистую, центральную нервную системы, нарушают процессы тканевого дыхания, снижают иммунитет.
В отделе химических исследований остаточные количества хлорорганических пестицидов определяются методами газожидкостной и тонкослойной хроматографии.
Газожидкостная хроматография (ГЖХ) – это метода анализа, основанный на разделении компонентов смеси при прохождении их через колонку с неподвижной жидкостью и подвижной газовой фазой. Образец вводят в газовый поток, где компоненты движутся с различными скоростями в зависимости от их летучести и взаимодействия с неподвижной фазой. Метод позволяет разделить и количественно определить вещества в сложной смеси, даже если они сходны по химическим свойствам, и требует очень малых количеств веществ для анализа.
Таким образом, ГЖХ является одним из наиболее перспективных методов анализа, обеспечивая высокую точность и эффективность.
Тонкослойная хроматография (ТСХ) – это метод анализа, основанный на различии в скорости перемещения компонентов смеси в тонком слое сорбента при движении в потоке подвижной фазы. Разделяемые вещества адсорбируются на поверхности сорбента, что приводит к образованию зон адсорбции. Метод включает в себя подготовку образца, хроматографических пластин и хроматографической камеры, а также анализ и идентификацию компонентов.
За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1205 проб материала, проведено 1249 исследований, выявлено 3 положительных случая.
Оценка результатов бактериологического исследования колибактериоза.
Бактериологический диагноз на колибактериоз считается установленным в каждом из следующих случаев:
- выделения чистых культур эшерихий не менее чем из двух таких органов и тканей, как селезёнка, кровь сердца, костный мозг, головной мозг свежего трупа или убитого клинически больного животного, без определения их патогенности для белых мышей или цыплят и установления серогрупповой принадлежности;
- выделения из исследуемого материала культур эшерихий, содержащих какой-либо из следующих адгезивных антигенов: К88, К99, 987Р, F41, F18, A20;
- выделения из патологического материала культур эшерихий, относящихся к патогенным серогруппам или обладающих патогенностью для белых мышей или цыплят;
- выделения культур эшерихий от поросят-отъёмышей, погибших с признаками отёчной болезни, из содержимого тонкого отдела кишечника и брыжеечных лимфатических узлов, обладающих гемолитическими свойствами.
Результаты бактериологического исследования формулируют: "Из присланного материала (указать какого) выделен возбудитель колибактериоза" (указать тип адгезивного антигена или серогруппу в случае их установления) или "Из присланного патологического материала (указать какого) возбудитель колибактериоза не выделен".
Общий срок бактериологического исследования патологического материала - до 7 суток.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1199 исследований.
Органолептические исследования мяса в вакуумной упаковке — это оценка качества продукта с помощью органов чувств человека (зрение, обоняние, осязание). Такой метод позволяет определить свежесть, безопасность и потребительские свойства мяса, упакованного под вакуумом.
Основные показатели для органолептической оценки:
1. Внешний вид и цвет. Осмотр поверхности продукта, особое внимание уделяется цвету жира.
2. Консистенция. Определение на свежем разрезе продукта. При лёгком надавливании пальца образуется лунка, с последующим наблюдением за её выравниванием.
3. Запах (аромат). Сначала оценивается запах поверхностного слоя продукта, затем — в глубине мышечной ткани.
4. Состояние жира. Проверяется цвет, запах и консистенция жира (растирание кусочка жира между пальцами).
Показатели качества определяются сначала на целом (неразрезанном), а затем — на разрезанном продукте.
Условия проведения. Для органолептической оценки требуется специальное помещение с приточно-вытяжной вентиляцией.
Дегустаторы. Оценку проводят специалисты — дегустаторы, имеющие опыт работы с мясной продукцией. Они работают индивидуально и в составе дегустационной комиссии.
Методы оценки. Могут использоваться балльные системы (например, 5- или 9-балльные шкалы), описательный метод или ранговый метод (образцы располагают в ряд в порядке возрастания или убывания интенсивности какого-либо свойства).
Вакуумная упаковка способствует сохранению органолептических характеристик мяса дольше, предотвращая его высыхание и потерю аромата. Преимущества вакуумной упаковки:
1. Предотвращение окисления жиров. Создаётся безвоздушная среда, где процессы окисления останавливаются.
2. Сохранение естественного цвета. Процесс вакуумирования помогает сохранить привлекательный цвет мяса, что важно для его товарного вида.
3. Продление срока хранения. Охлаждённое мясо в вакуумной упаковке может оставаться свежим и безопасным для употребления до 2 недель в условиях промышленного холодильника. Сохраняется упругость мышечной ткани, отсутствуют признаки ослизнения.
Нормативные документы, регулирующие органолептическую оценку мяса:
ГОСТ 9959-2015 «Мясо и мясные продукты. Общие условия проведения органолептической оценки». ГОСТ 7269-2015 «Мясо. Методы отбора образцов и органолептические методы определения свежести». При проведении органолептических испытаний необходимо соблюдать требования безопасности и следовать установленным стандартам.
Отчетный период с 03.04.2026г. по 09.04.2026г.
ИНАН характеризуется сверхострым, подострым, хроническим и бессимптомным течением.Восприимчивые животные, больные ИНАН, остаются вирусоносителями пожизненно.
Возбудителем ИНАН является РНК-содержащий вирус семейства Retroviridae подсемейства Orthoretrovirinae рода Lentivirus.
Возбудитель устойчив к физико-химическим воздействиям. В моче, навозе возбудитель сохраняется до 75 суток, в кормах - до 270 суток.
Инкубационный период болезни составляет от 7 до 90 суток.
Передача возбудителя осуществляется трансмиссивным, ятрогенным, внутриутробным, половым, контактным и алиментарным путями.
В целях предотвращения возникновения и распространения ИНАН юридические лица, физические лица, являющиеся собственниками (владельцами) восприимчивых животных, обязаны:
- предоставлять по требованиям специалистов органов и организаций, входящих в систему Государственной ветеринарной службы Российской Федерации восприимчивых животных для осмотра;
- извещать в течение 24 часов специалистов госветслужбы о случаях заболевания или гибели восприимчивых животных, а также об изменениях в их поведении, указывающих на возможное заболевание;
- принимать меры по изоляции подозреваемых в заболевании восприимчивых животных, а также обеспечить изоляцию трупов восприимчивых животных;
- выполнять требования специалистов госветслужбы о проведении в личном подсобном хозяйстве, крестьянском-фермерском хозяйстве, хозяйстве индивидуального предпринимателя, организациях, в которых содержатся восприимчивые животные, противоэпизоотических мероприятий;
- соблюдать условия, запреты, ограничения в связи со статусом региона, на территории которого расположено хозяйство.
Комплектование хозяйств должно осуществляться здоровыми восприимчивыми животными из хозяйств, в которых отсутствовали случаи заболевания ИНАН в течение 90 календарных дней до дня вывоза-отправки из хозяйства. Поступившие в хозяйство восприимчивые животные должны содержаться обособленно от других восприимчивых животных в течение 30 календарных дней со дня ввоза с целью выявления клинических признаков, характерных для ИНАН.
От восприимчивых животных 6 месяцев и старше, используемых для племенных и рабоче-пользовательских целей, осуществляется отбор проб крови для лабораторных исследований не более чем за 30 календарных дней до дня вывоза-отправки из хозяйства. от спортивных лошадей - не более чем за 90 календарных дней до дня вывоза-отправки из хозяйства. Проводиться отбор проб крови для серологических исследований от восприимчивых животных старше 6-месячного возраста – 1 раз в год. В ГБУ «Оренбургская областная облветлаборатория» проводят реакцию диффузной преципитации (РДП) по Инструкции по применению набора инфекционной анемии лошадей.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 30 проб, проведено 154 исследований.
Определение жира в молоке и молочных продуктах
Содержание жира – один из основных показателей качества молока и молочных продуктов. Необходимо проводить анализ данного параметра, чтобы определить пищевую ценность продукта и исключить фальсификацию.
В отделе химических исследований для контроля жира в молоке и молочных продуктах используют кислотный метод.
Сущность метода. Еще одно название данного метода – метод Гербера. Его особенность заключается в том, что жир выделяется в градуированную часть жиромера под действием концентрированной серной кислоты и изоамилового спирта с последующим центрифугированием.
Ход анализа. В два чистых и сухих жиромера (бутирометра) добавляют пипеткой по 10 см3 серной кислоты, а затем по стенке вливают 10,77 см3 молока. После этого добавляют 1 см3 изоамилового спирта из автоматической пипетки. Необходимо следить, чтобы горло жиромера оставалось сухим. 
Уровень смеси должен быть установлен на 1-2 мм ниже горловины, поэтому допускается добавление дистиллированной воды. Жиромер закрывают пробкой и встряхивают до полного перемешивания содержимого. Затем жиромер помещают на 5 минут в водяную баню при температуре 65 ℃ (±2 ℃). После водяной бани жиромеры устанавливают в центрифугу симметрично друг напротив друга и оставляют центрифугировать на 5 минут. Затем снова помещают в водяную баню при такой же температуре на 5 минут. После этого жиромеры достают из водяной бани и производят отсчет жира по шкале. При отсчете жиромер держат вертикально, граница жира должна находиться на уровне глаз. Движением пробки устанавливают нижнюю границу столбика жира на нулевом или целом делении шкалы жиромера. От него отсчитывают число делений до нижней точки мениска столбика жира с точностью до наименьшего деления шкалы жиромера.
Граница раздела жира и кислоты должна быть резкой, а столбик жира прозрачным. При наличии «кольца» (пробки) буроватого или темно-желтого цвета, различных примесей в столбике жира или размытой нижней границы измерение проводят повторно.
За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1510 проб материала, проведено 1557 исследований, выявлено 8 положительных случаев.
Бактериологическое исследование колибактериоза.
Пятый день: проводят окончательный учёт результатов изучения ферментативных свойств культур, предварительный учёт результатов биопробы и определение серогрупповой принадлежности культур эшерихий с поливалентными и моновалентными О-колисыворотками в реакции агглютинации (РА) на стекле (в случае необходимости).
Для РА используют 2-3 культуры эшерихий на скошенном МПА, которые не агглютинировали с колисывороткой О157. С этих культур готовят суспензии в 0,85%-ном растворе хлорида натрия, переливают ещё в чистые сухие пробирки, устанавливают концентрацию бактерий 2-3 млрд микробных клеток/см 3, а затем часть суспензии (1,5-2 см 3) переливают ещё в одну чистую сухую пробирку. Пробирки с суспензиями одних и тех же культур бактерий маркируют одноименными номерами, после чего их подвергают термической обработке: прогреванию в водяной бане (100°С) в течение 1 часа (большую часть суспензии) и автоклавированию (меньшую часть суспензии) при 1 атм (121°С) в течение 2 часов с целью разрушения поверхностного термостабильного А-антигена, содержащегося у некоторых штаммов эшерихий серогрупп О8, О9, О101. РА с колисыворотками этих серогрупп ставят с прогретыми при 100°С и автоклавированными антигенами.
Шестой день: проводят предварительный учёт результатов биопробы, постановку пробирочной РА с антигенами эшерихий, давшими положительную реакцию в РА на стекле.
Седьмой день: окончательный учёт результатов определения патогенных свойств культур эшерихий в биопробе на мышах или цыплятах и серогрупповой типизации культур в пробирочной РА. Культуры, отнесённые к одной из патогенных серогрупп или вызывающие гибель двух и более мышей или цыплят, считают патогенными и признают возбудителями колибактериоза.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 505 исследований.
Репродуктивно-респираторный синдром свиней (РРСС) - контагиозная вирусная болезнь свиней, характеризующаяся массовыми абортами свиноматок в конце срока супоросности, рождением нежизнеспособных поросят и поражением дыхательной системы. Возбудителем является РНК-содержащий вирус рода Arterivirus семейства Arteriviridae. Существует два основных генотипа вируса, различающихся по антигенам: 1тип (европейский) и 2 тип (североамериканский).
Характерные клинические признаками: угнетенное состояние, отказ от корма, повышение температуры тела, конъюнктивит, отек век, потеря зрения, поражение органов дыхания, цианоз ушей, хвоста, молочных желез, вульвы, поздние аборты, преждевременные опоросы или задержка опороса, рождение нежизнеспособного молодняка, молодняка с признаками уродства, гибель поросят на 2-7 сутки жизни, гибель поросят-отъемышей с признаками пневмонии и диареи. У хряков ухудшается качество спермы.
При возникновении подозрения на РРСС отбираются пробы биологического и (или) патологического материала: смывы из носа, носоглотки, плазма, сыворотка крови, ткани и органы павших животных (миндалины, селезенка, легкие и др.), сперма, плацента и плодовые оболочки от абортировавших животных или аборт плоды целиком, продукты питания (фарш, колбаса и т.п.).
Для исследования методом ПЦР используют следующий материал:
• Плазма крови, сыворотка крови. Кровь забирается в пробирку с антикоагулянтом (ЭДТА), закрытую пробирку с кровью несколько раз, переворачивают. Для получения сыворотки забирают кровь в пробирку без антикоагулянта.
• Мазки со слизистой носа и носоглотки берут сухими ватными зондами. Зонд с материалом помещают для транспортировки в пробирки со стерильным физиологическим раствором (конец отламывают, что бы, пробирку можно было закрыть).
• Сперму в объеме не менее 2 мл, в стерильную посуду.
• Плацента и плодовые оболочки от абортировавших животных берут на исследование целиком
• Фрагменты тканей и органов павших животных (миндалины, селезенка, легкие, печень и др.) отбирают в стерильный контейнер.
• Продукты питания (фарш, мясные полуфабрикаты, сосиски, колбасу ит.п.) отбирают в стерильные контейнеры
Пробы отобранного материала охлаждаются, при транспортировке помещаются в термос со льдом или охладителем.
Для серологического исследования (ИФА) направляют в пробирках сыворотку без признаков гемолиза и бактериальной контаминации. Допускается однократное замораживание сыворотки крови.
ГБУ «Оренбургская облветлаборатория» проводит исследование материала методами полимеразной цепной реакции и иммуноферментного анализа.
Отчетный период с 20.03.2026г. по 26.03.2026г.
За отчетный период в серологический отдел поступило 10165 проб сыворотки крови животных, проведено 23796 исследований. Выявлено: 933 серопозитивные пробы по лейкозу крупного рогатого скота; 14 положительно реагирующих проб по лептоспирозу свиней, 141 положительно реагирующая проба по лептоспирозу крупного рогатого скота, 1 положительно реагирующая проба по лептоспирозу мелкого рогатого скота, 11 положительно реагирующих проб по лептоспирозу лошадей.
Бруцеллёз (brucellosis) — зоонозная инфекция, передающаяся от больных животных человеку, которая характеризуется множественным поражением органов и систем организма. Микробов, вызывающих эту болезнь, обнаружил в 1886 году английский учёный Дэвид Брюс. В его честь их назвали бруцеллами, а заболевание — бруцеллёзом. К инфекции восприимчивы все виды домашних животных, в том числе птицы.
Возбудитель — грамотрицательные бактерии Brucella. Они устойчивы к низким температурам, способны сохраняться в замороженном состоянии более года, но в кипятке моментально погибают.
Источник возбудителя — больные животные. Возбудитель выделяется из организма с абортированным плодом, околоплодными водами, истечениями из половых органов, с молоком, спермой, мочой и калом.
Факторы передачи: контаминированные объекты внешней среды, акушерские инструменты, продукция и сырьё животного происхождения, инвентарь и спецодежда.
Заражение происходит алиментарным и половым путём, через кожу и слизистые оболочки (даже неповреждённые), трансмиссивно (через укусы клещей и кровососущих насекомых).
В хронической стадии болезнь может протекать почти бессимптомно, но животное остаётся источником инфекции.
Важно: животное может быть носителем бактерий, даже если у него нет явных признаков болезни.
В серологическом отделе ГБУ «Оренбургская облветлаборатория» диагностику бруцеллеза проводят по ГОСТ 34105-2023 Лабораторная диагностика бруцеллеза. Серологические методы. п.7.3, п.7.4, п.7.5, п.7.6.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 50 проб, проведено 325 исследований.
В одной пробе силоса установлена общая токсичность.
Определение общей токсичности в кормах
Общая токсичность кормов - обязательный показатель безопасности, утвержденный в РФ для большинства видов кормов и кормовых добавок. Исследования на общую токсичность кормов, поступивших в ГБУ «Оренбургскую областную ветеринарную лабораторию, проводят методами биотестирования на стилонихиях (экспресс-метод), мышах (острый опыт) и кроликах (кожная проба) по ГОСТ 31674-2012 «Корма, комбикорма, комбикормовое сырье. Методы определения общей токсичности». В процессе проведения анализа был выявлен один положительный результат в силосе, который показал токсичность, как на простейших, так и при постановке биопробы на лабораторных животных.
- Биотестирование кормов на стилонихиях (Stylonychia mytilus).
- Методы определения общей токсичности кормов биотестированием на кроликах и мышах.
За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1946 проб материала, проведено 1980 исследований, выявлено 9 положительных случаев.
Бактериологическое исследование колибактериоза.
Второй день: извлечённые из термостата чашки с культурами на агаре Эндо или Левина просматривают и отбирают 10 типичных для эшерихий колоний (5 - выросших после посева фекалий или соскобов со слизистой кишечника и 5 - из других органов и тканей, в том числе брыжеечных лимфатических узлов).Эти колонии: круглые, с гладкой, выпуклой поверхностью, ровными краями, диаметром 2-4 мм, красно-малинового цвета на агаре Эндо и тёмно-фиолетового цвета на агаре Левина с металлическим блеском или без него. Затем их нумеруют. Из отобранных колоний готовят мазки, окрашивают их по Граму и микроскопируют. При наличии в мазках мелких грамотрицательных палочек с закруглёнными концами, не образующих спор, расположенных одиночно и попарно, пересевают эти колонии на пластинчатый МПА и среду Минка в чашках, разделённых карандашом для стекла на 10 секторов (каждую колонию на две среды и соответствующий пронумерованный сектор). При этом в обязательном порядке пересевают лактозоположительные колонии, имеющие слизистую тягучую консистенцию, если такие колонии содержатся в культуре.
С чашек с культурами на среде с сорбитом, выделенных из разных органов и тканей животного, отбирают 3-4 колонии, характерные по структуре и цвету для эшерихий сероваров О157:Н7 и О157:Н- (средних размеров S-формы, серовато-белого цвета). Из этих колоний готовят мазки, окрашивают их по Граму и микроскопируют. В случае типичных для эшерихий клеток бактерий указанные колонии пересевают в пробирки со скошенным МПА.
При исследовании на отёчную болезнь поросят дополнительно пересевают с агара Эндо или Левина 5-6 колоний на кровяной агар в чашке, разделённой на соответствующее количество секторов, для изучения гемолитических свойств культур.
Лактозоположительные колонии на плотной селективной среде (Эндо или Левина), выросшие после посева материала от птиц, не пересевают на пластинчатый МПА и среду Минка. Для родовой и видовой идентификации культур и изучения их свойств отбирают 2-3 типичные для эшерихий колонии (с культур, выделенных из разных органов и тканей одной погибшей или убитой с диагностической целью птицы), из которых готовят мазки, окрашивают их по Граму и микроскопируют. При наличии в мазках морфологически характерных для эшерихий клеток бактерий пересевают эти колонии на скошенный МПА или среду Олькеницкого, или другую комбинированную среду.
Во всех случаях засеянные чашки и пробирки помещают в термостат (37°С) на 16-20 часов.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 493 исследования.
Классическая чума свиней (лат. Pestis suum) — вирусная болезнь свиней, характеризующаяся лихорадкой, поражением кровеносных сосудов и кроветворных органов, крупозно-дифтеритическим воспалением слизистой оболочки толстых кишок. Регистрируется во всех странах, наносит большой экономический ущерб хозяйствам: летальность 80—100 %. Заболевание возникает в любое время года.
Возбудитель - вирус рода Pestivirus семейства Flaviviridae. В организме больных свиней вирус находится в крови, во всех органах и тканях.
Вирус поражает домашних свиней и диких кабанов независимо от породы и возраста. Источник возбудителя инфекции — больные свиньи, выделяющие вирус во внешнюю среду с мочой, фекалиями, спермой, секретами.
Факторами передачи возбудителя являются продукция животного происхождения, трупы, сперма восприимчивых животных, корма, оборудование, подстилка, инвентарь и иные материально-технические средства, объекты внешней среды, контаминированные возбудителем. Естественное заражение свиней чаще происходит через пищеварительный тракт, органы дыхания, реже через повреждённую кожу. Передача возбудителя осуществляется контактным, алиментарным, трансплацентарным, ятрогенным путями и при искусственном осеменении.
При патологоанатомическом вскрытии обращают внимание на выраженный геморрагический диатез в различных органах, мраморность лимфоузлов, инфаркты селезенки, кровоизлияния в почках на фоне их анемии, катарально-геморрагический гастроэнтерит, лимфоцитарный энцефаломиелит. При хроническом течении характерными измениями являются очаговый дифтеритический налет (бутоны), коричневая экзема, фибринозный плеврит и перикардит, некроз миндалин. Хроническая болезнь часто протекает на фоне других инфекций.
Для лабораторных исследований методом ПЦР от каждого трупа восприимчивого животного должны отбираться фрагменты селезенки, почек, печени массой 5-10 г, заглоточные, подчелюстные, мезентериальные и брыжеечные лимфатические узлы, костный мозг из грудной кости. Также исследуется биологический материал: пробы крови в объеме по 5-7 мл с антикоагулянтом и без антикоагулянта (или с фактором свертывания крови для получения сыворотки), мазки со слизистой оболочки носоглотки и миндалин, фекалии, продукты свиного происхождения. С целью выявления антител к вирусу классической чумы свиней исследуется сыворотка крови методом ИФА.
Отчетный период с 27.03.2026г. по 02.04.2026г.
За отчетный период в серологический отдел поступило 8619 проб сыворотки крови животных, проведено 24933 исследования. Выявлено: 472 серо-позитивных пробы по лейкозу, 70 положительно реагирующих проб по лептоспирозу у крупного рогатого скота, 14 положительно реагирующих проб по лептоспирозу мелкого рогатого скота, 38 положительно-реагирующих проб по лептоспирозу у лошадей.
Афлатоксин В1
В условиях современного рынка с его высокой конкуренцией и относительно невысокими ценами на животный белок крайне важно максимально эффективно использовать все производственные ресурсы, в том числе кормовую базу. Некачественные кормовые компоненты могут не только снизить продуктивность животных, но и вовсе привести к их смерти. Один из часто встречающихся дефектов кормов – наличие в них микотоксинов.
Существует до 300 видов микотоксинов, но среди них наиболее распространены и опасны такие, как афлатоксины, фумонизин, дезоксиниваленол (ДОН), охратоксин А, Т-2 токсин и зеараленон.
Афлатоксины – это токсичные метаболиты гриба Aspergillus flavus, вызывающего гниение початков. Образованию этих ядов способствуют жаркие, влажные и засушливые условия в период налива зерна. Афлатоксины генотоксичны и проявляют канцерогенные, тератогенные и иммуносупрессивные свойства. Эти яды воздействуют практически на все системы организма. Афлатоксины вызывают нарушения проницаемости плазматических мембран клетки и митохондрий, ингибируют репликацию ДНК, транскрипцию и синтез белка, влияют на электронный транспорт, а также регуляцию синтеза липидов. Они опасны как для человека, так и для свиней, коров, овец, кроликов, птицы и рыбы.
Отравления афлатоксинами называют афлатоксикозами. Острое отравление ими зачастую приводит к быстрой гибели животных из-за некроза печени. Однако намного чаще встречается хроническое отравление афлатоксинами. Обычно его результатом становятся онкологические заболевания печени.
Для хронических афлатоксикозов характерны такие симптомы, как потеря веса и аппетита, диарея, анемия, внутреннее кровоизлияние, неврологические нарушения, поражения внутренних органов, в особенности печени. Кожные покровы могут быть бледными. У животных и птицы ослабевает устойчивость к бактериям и вирусам, что приводит к возникновению заболеваний. У кур снижается яйценоскость, у коров – надои. Кроме того, молоко, полученное от коров, потреблявших зараженные афлатоксинами корма, содержит афлатоксин M1 – метаболит афлатоксина B1, образующийся в организме животного.
В отделе химических исследований массовую долю афлатоксина В1 определяют методами ВЭЖХ и ИФА.
За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 857 проб материала, проведено 863 исследования, выявлено 2 положительных случая.
Бактериологическое исследование колибактериоза.
Третий день исследования. Полученные на пластинчатом и скошенном МПА, а также кровяном МПА культуры (обладающие гемолитическими свойствами) в количестве двух-трех от каждого животного и выделенные из разных органов и тканей или фекалий подвергают изучению по биохимическим тестам с целью родовой и видовой идентификации. Для этого их засевают на среды Гисса с глюкозой, лактозой и индикатором Андреде, среду с мочевиной, агар Симонса, среду с сернокислым железом (тест на сероводород), бульон Хоттингера или МПБ (тест на индол), а также в 2 пробирки со скошенным МПА для определения серогрупповой принадлежности или изучения патогенных свойств культур в биопробе (в случае необходимости).
Для идентификации культур по ферментативным свойствам можно использовать комбинированные среды (Олькеницкого, Клиглера или др.), полужидкие среды с сахарами и индикатором ВР, бумажные диски СИБ или системы мультимикротестов.
Засеянные пробирки инкубируют при 37°С в течение 48 часов, ежедневно учитывая изменения в средах.
Четвертый день. Проводят предварительный учет результатов изучения ферментативных свойств культур. Бактерии рода Escherichia ферментируют с образованием кислоты и газа глюкозу, лактозу (за исключением отдельных штаммов), не растут на агаре Симонса и не утилизируют цитратно-аммонийные соли, не расщепляют мочевину, образуют индол и не образуют сероводород.
Изоляты, отнесенные к виду Escherichia coli, исследуют в РА на стекле с агглютинирующими антиадгезивными колисыворотками: вначале с комплексной, а в случае положительной реакции - с моновалентными сыворотками. При этом культуры, выросшие на пластинчатом МПА, изучают с сыворотками К88, 987Р и А20; культуры на среде Минка - с сыворотками К99, F41, F18. РА проводят в соответствии с действующим наставлением по применению указанных сывороток.
Культуры эшерихий на скошенном МПА, полученные после пересева серовато-белых колоний на среде с сорбитом (не ферментирующие этот многоатомный спирт), исследуют с агглютинирующей колисывороткой О157 в РА на стекле. Реакцию ставят с живыми культурами. При положительной реакции для исключения самоагглютинации клеток бактерий культуру исследуют с 0,85%-ным раствором хлорида натрия. В контроле с физиологическим раствором агглютинация бактерий должна отсутствовать.
Культуры эшерихий, не агглютинирующиеся с моновалентными антиадгезивными колисыворотками и колисывороткой серогруппы О157, подвергают исследованию на патогенность в биопробе на белых мышах (или цыплятах) или серологическому типированию по О-антигену с набором поливалентных и серогрупповых О-колисывороток.
Для биопробы используют две культуры на скошенном МПА, выделенные из разных органов и тканей или фекалий одного животного. Каждую культуру смывают 0,85%-ным стерильным раствором хлорида натрия, готовят суспензии в концентрации 1 млрд микробных клеток/см3 по оптическому или бактерийному стандарту, затем смешивают их в равном объёме и вводят смесь бактерий внутрибрюшинно по 0,5 см3 трём белым мышам массой 14-16 г или трём цыплятам 2,5-3-недельного возраста (при исследовании материала от птиц). При определении патогенности культур, выделенных от птиц, для биопробы используют культуры, выделенные от двух-трёх цыплят каждого птичника. Наблюдение за зараженными мышами и цыплятами проводят в течение трёх суток.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1348 исследований.
Listeria monocytogenes — это грамположительная, не образующая спор, подвижная, факультативно анаэробная палочковидная бактерия.
При рассмотрении под световым микроскопом эта бактерия демонстрирует характерную вращательную подвижность, активно передвигается с помощью жгутиков при комнатной температуре (20−25 °C), но неподвижный при температуре выше 30 °C. Растёт в диапазоне температур от 0 до 45 °C, включая условия холодильного хранения, поэтому часто листерии называют микроорганизмом «холодильника», но оптимальная температура 37 °C. Растет в широком диапазоне pH от 4,6 до 9,5 (бактерии способны адаптироваться к среде с низким уровнем pH), а также выдерживать солёность до 20%.
Наибольшее значение в распространении листериоза играет способность возбудителя длительно сохраняться в различных пищевых продуктах, в том числе упакованных в барьерные пленки, ограничивающие доступ кислорода (под вакуумом, в модифицированной газовой атмосфере).
Термоустойчивость листерий понижается с увеличением содержания соединительной ткани в мясе. Жир пищевых продуктов оказывает защитное действие на термоустойчивость листерий. В охлажденном мясе количество жизнеспособных листерий снижается, но полного отмирания возбудителя не происходит. В замороженном мясе, при минус 10 – 28°С, жизнеспособные листерии обнаруживаются до 10 – 14 месяцев и более. В мясе и шкурах, консервированных хлористым натрием, возбудитель листериоза сохраняется 60 суток и более. Благодаря этим условиям роста, устойчивости бактерии могут выживать и размножаться в неблагоприятных условиях окружающей среды, которые часто встречаются на предприятиях по производству продуктов питания. L. monocytogenes является важным патогеном, передающимся через пищу и вызывающим заболевание под названием листериоз, которое может проявляться в виде спорадических инфекций или вспышек заболевания со значительным уровнем смертности — 20–30%.
Бактерии широко распространены в окружающей среде: встречаются в почве, воде, растениях и пищевых продуктах (сырое или плохо термически обработанное мясо и рыба упакованная мясная нарезка, рыбная нарезка горячего или холодного копчения, колбасы, птица, сосиски, морепродукты); молочные продукты (некипячёное молоко, сыры из сырого молока, масло), немытые овощи и фрукты, контактирующие с заражённой почвой или животными.
Основным принципом обеспечения безопасности продуктов питания является соблюдение санитарно-эпидемиологических требований по условиям производства, упаковки, хранения, транспортировки пищевых продуктов с целью предупреждения их контаминации листерией при производстве и реализации.
Отчетный период с 13.03.2026г. по 19.03.2026г.
За отчетный период в серологический отдел поступило 3889 проб сыворотки крови животных, проведено 7335 исследований. Выявлено: 40 положительно реагирующих проб по лептоспирозу крупного рогатого скота, 2 положительно реагирующих проб по лептоспирозу мелкого рогатого скота; 176 серопозитивных проб по лейкозу крупного рогатого скота.
Сибирская язва - особо опасная зоонозная инфекционная болезнь млекопитающих животных, протекающая в молниеносной, острой, подострой и хронической формах.
Молниеносное течение болезни характеризуется внезапным падежом восприимчивого животного без проявления клинических признаков.
Клиническими признаками острого и подострого течения болезни являются повышение температуры тела до 41 - 42°С, сопровождающееся мышечной дрожью, учащением пульса и дыхания, беспокойством, угнетенным состоянием, отказом от корма, образованием на теле горячих припухлостей, отеками в области подгрудка, шеи, живота, а также коликами. Летальный исход при остром течении болезни наступает на 2 - 3 сутки.
Подострое течение болезни характеризуется вышеуказанными клиническими признаками, длится 5 - 8 суток со дня проявления клинических признаков.
Клиническим признаком хронического течения болезни является исхудание больного восприимчивого животного. Хроническое течение болезни длится до 90 суток.
В состоянии агонии у восприимчивого животного отмечается выделение из естественных отверстий кровянистой пенистой жидкости.
Возбудителем сибирской язвы является бактерия Bacillus anthracis, семейства Bacillaceae рода Bacillus (спорообразующая палочка, аэроб, факультативный анаэроб). Возбудитель в организме больного восприимчивого животного существует в вегетативной (капсульной) форме, во внешней среде - в споровой форме.
Возбудитель в вегетативной форме сохраняет жизнеспособность при температуре минус 10°С до 24 суток, в замороженном мясе при температуре минус 15°С - до 15 суток, в соленом мясе - до 45 суток, в невскрытых трупах животных - до 7 суток. Возбудитель погибает при температуре 55°С через 60 минут, при температуре 60°С - через 15 минут.
Возбудитель в споровой форме сохраняет жизнеспособность в почве до 50 и более лет, погибает под действием сухого жара при температуре 120 - 140°С через 2-4 часа, при температуре 150°С - через 60 минут, в автоклаве при температуре 110°С - через 10 минут, в 5-процентном растворе формальдегида - через 45 минут, в 10-процентном растворе соляной кислоты - через 30 минут, в 10-процентном растворе хлорамина - через 14 часов, в осветленном растворе хлорной извести, содержащем 5% активного хлора - через 60 минут.
В серологическом отделе диагностику сибирской язвы проводят по Наставлению по исследованию кожевенного и мехового сырья на сибирскую язву реакцией преципитации от 25.05.1971г., разделы II и III. Суть реакции преципитации заключается в осаждении растворимого антигена при действии антител в присутствии электролита. Видимый эффект реакции - помутнение (образование мутного кольца - преципитата).
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 26 пробы, проведено 121 исследование. 
Определение массовой доли охратоксина А методом высокоэффективной
жидкостной хроматографии
Охратоксин A способен повреждать нервную систему, подавлять иммунитет, вызывать мутации ДНК и приводить к возникновению опухолей. Этот микотоксин негативно влияет на мужскую репродуктивную систему. Также известно, что охратоксин А может проникать через плаценту, что означает, что он может воздействовать на эмбрионы.В отделе химических исследований массовую долю охратоксина А определяют методом ВЭЖХ по ГОСТ 32587-2013 Зерно и продукты его переработки, комбикорма. Определение охратоксина А методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (метод А). Метод основан на экстракции охратоксина A из анализируемой пробы продукта подкисленным хлороформом, скрининге проб, которые могут содержать охратоксин A, очистке их экстрактов методом колоночной хроматографии на силикагеле и определении массовой доли охратоксина A с применением ВЭЖХ с флуориметрическим детектированием.
За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 2104 пробы материала, проведено 2125 исследований, выявлено 15 положительных случаев.
Бактериологическое исследование колибактериоза
Первый день - посевы из паренхиматозных органов, костного и головного мозга, брыжеечных лимфатических узлов, соскобов со слизистой тонкого кишечника павших и убитых животных делают на подсушенную среду Эндо или Левина, а также на плотную среду с сорбитом (сорбитолом) для обнаружения эшерихий сероваров 0157:Н7 и 0157:Н-. Посевы проводят путем проведения разрезанной поверхности кусочка органа (из предварительно профламбированного участка) по поверхности питательной среды или отпечатков разрезанной поверхности органа. Кровь, костный мозг, желчь наносят на поверхность среды пастеровской пипеткой и равномерно растирают их стеклянным шпателем.
При исследовании трупов птиц посевы делают из крови сердца, легких, печени, костного или головного мозга на среду Эндо или Левина. От погибших поросят-отъемышей с признаками отечной болезни или диареи проводят посевы суспензии из соскобов со слизистой оболочки пораженного участка тонкого кишечника, регионарных брыжеечных лимфатических узлов и паренхиматозных органов.
Каждую пробу фекалий (не более 0,5 г) от больных диареей или соскобов со слизистой кишечника погибших животных,
взятую стерильным скальпелем, помещают в отдельную пробирку, содержащую 10 см3 стерильного 0,85%-ного раствора хлорида натрия; тщательно размешивают стеклянной палочкой и выдерживают 10-15 минут при комнатной температуре для осаждения крупных частиц. Надосадочную жидкость засевают бактериологической петлей частыми, широкими штрихами на поверхность плотной селективной среды в чашках с целью получения роста изолированных колоний бактерий.
Перед посевом материала на среду Эндо или Левина ее поверхность орошают 1-2 см3 96° спирта-ректификата для задержки роста роящейся формы протея. Невпитавшийся спирт отсасывают пастеровской пипеткой при наклонном положении чашки, после чего среду подсушивают в термостате в течение 10-15 мин, а затем используют для посева. Засеянные чашки помещают в термостат (37°С) на 18-24 часа.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 707 исследований.
Ящур - острое вирусное заболевание из группы зоонозов, характеризующееся интоксикацией и везикулёзно-эрозивным (пузырьково-язвенным) поражением слизистых оболочек ротовой и носовой полости, а также кожи межпальцевых складок и околоногтевого ложа.
Возбудителем ящура является РНК-содержащий вирус семейства Picomaviridae рода Aphtovirus, который отличается значительной антигенной вариабельностью. Существует семь типов вируса: О, А, С, Sat-1, Sat -2, Sat -3, Азия-1 и их варианты (топотипы и генетические линии). Восприимчивые животные, переболевшие ящуром, вызванным вирусом одного типа, могут заболевать ящуром, вызванным вирусом другого типа.
Ящур широко распространён среди животных (крупный рогатый скот, свиньи, козы, овцы, олени). Могут болеть лошади, верблюды, собаки, кошки и грызуны. Ящуром болеет и человек. Основной путь инфицирования людей — через сырое молоко больных животных и продукты его переработки, реже через мясо. У лиц, непосредственно контактирующих с больными животными, возможна прямая передача при доении, уходе, лечении, убое, воздушно-капельный путь заражения при дыхании, кашле животных, а также через предметы, загрязнённые их выделениями.
В лаборатории исследования материала проводятся с использованием следующих методов: полимеразной цепной реакции и иммуноферментного анализа.
Для выявления РНК вируса ящура методом ПЦР направляется материал:
- Мазки и смывы из глотки берут сухими ватными зондами. Зонд с материалом помещают для транспортировки в пробирки со стерильным физиологическим раствором.
- Выделения из носа и рта собирают в стерильную тару, в количестве не менее 0,3-0,5 мл.
- Отбор пищеводно-заглоточной жидкости проводят при помощи пищеводно-глоточного зонда (у свиней мазок из зева). Отобранная жидкость должна содержать некоторое количество клеточного материала, видимого невооруженным глазом, но не должна содержать пищевых масс.
- Тканевый материал (внутренние органы, мышцы, афты, соскобы с кожи, пищевые продукты, молоко) помещают в стерильные контейнеры.
- Кровь забирается в пробирку с антикоагулянтом (ЭДТА), закрытую пробирку с кровью несколько раз переворачивают. Для получения сыворотки забирают кровь в пробирку без антикоагулянта.
- Смывы с поверхностей (внутрилабораторных, с поверхностей тары, кормушек, мест содержания животных и др.) отбирают в стерильную тару с 0,5 мл физиологического раствора.
При отборе материала для ПЦР-исследования важно учитывать тропность возбудителя к определённому виду эпителия или среде.
Полученные образцы можно транспортировать и хранить в следующих режимах:
- при температуре от 2 до 8°С – в течение суток;
- при температуре не выше минус 18°С – в течение 2 недель;
- при температуре не выше минус 68°С – длительно.
Допускается однократное замораживание-оттаивание материала.
Методом ИФА выявляются антитела к неструктурным белкам вируса ящура (основной метод серологического мониторинга отсутствия вирусной инфекции в вакцинированных и невакцинированных стадах, ретроспективной диагностики заболевания) и выявляются антитела к структурным белкам (серотипоспецифическим, определяющим антитела, индуцированные при вакцинации или инфекции).
