Отчетный период с 17.04.2026г. по 23.04.2026г.
За отчетный период в серологический отдел поступило 4616 проб сыворотки крови животных, проведено 10506 исследований. Выявлено: 150 серо-позитивных проб по лейкозу, 1 положительно-реагирующая проба по лептоспирозу у крупного рогатого скота, 19 положительно-реагирующих проб по лептоспирозу мелкого рогатого скота, 13 положительно-реагирующих проб по лептоспирозу у лошадей.
Сап – это контагиозное зоонозное, преимущественно хронически протекающее инфекционное заболевание, вызываемое бактерией Burkholderia mallei и протекающее по типу септикопиемии с образованием специфических гранулем и абсцессов (сапных узелков) и проявляющееся язвенным ринитом и лимфаденитом, гнойно-некротическими поражениями кожи.
В основном сап поражает лошадей, мулов, верблюдов и ослов. Заболевание может передаваться животным семейства кошачьих, бурым и серым медведям, а также человеку.
Впервые сап описал Аристотель в древней Греции в 4 веке до н.э. Долгое время сущность болезни оставалась неясной, из-за чего ее смешивали с мытом и эпизоотическим лимфангоитом.
В 1882 г. Ф. Леффлер и А. Шютц (Германия) открыли возбудителя болезни. В 1891 г.отечественные ветеринарные врачи Х.И. Гельман и О.И. Кальнинг изготовили из сапных культур диагностический препарат маллеин. Предлагали подкожный метод маллеинизации. И уже в 1907 г. К. М. Хороманским предложен глазной метод маллеинизации. Также в 1907г. А. Шютц и Шуберт предложили использовать для диагностики сапа РСК (реакция связывания комплемента).
До разработки методов специфической диагностики болезнь была широко распространена среди конского состава многих европейских и азиатских государств. До революции и в 1917-1924 гг. сап был широко распространен в России.
В 1924 г. доктор ветеринарной медицины С.Н. Вышелесский внедрил новый научно-обоснованный метод борьбы с сапом лошадей (клинический осмотр, ольфтальмомаллеинизация, РСК). Благодаря разработке противосапных мероприятий в первые годы Советской власти началась активная борьба по ликвидации сапа. В 1931 г. были созданы пункты концентрации лошадей-маллеинщиков. В результате этих мер сап был ликвидирован в СССР к 1940 г.
В последние годы болезнь регистрировалась в Монголии, Пакистане, Китае, Индии, Индонезии, Юго-Восточной Азии и других регионах. Поэтому в настоящее время опасность заноса инфекции в Россию из неблагополучных стран полностью не устранена.
Экономический ущерб. Сап в случае его появления наносит коневодству страны, а также отдельным коневодческим хозяйствам большой экономический ущерб. Отсутствие способов лечения больных лошадей и опасность данной инфекции для людей вынуждают уничтожать всех заболевших животных. К примеру, в России за период с 1908 по 1912 гг. было убито 100760 лошадей, больных сапом. Дополнительно большие расходы вызывают карантинные мероприятия.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 28 проб, проведено 149 исследований.
В одной пробе молока сырого коровьего кислотность - 1 выше нормы.
Кислотность – один из важнейших показателей качества молока, характеризующий свежесть молока, его пригодность к дальнейшей переработке и пастеризации, а также его сорт.
На кислотность влияет несколько факторов:
1) особенности животных (возраст, порода, наличие мастита, условия выпаса скота, рацион питания);
2) лактационный период (кислотность повышается после отела и понижается перед концом лактации);
3) соблюдение санитарно-гигиенических норм (кислотность повышается, если в молоке содержатся микроорганизмы).
Чем ниже показатель кислотности, тем более свежим является молоко. Молоко с высоким показателем кислотности при нагревании сворачивается быстрее, поэтому подлежит переработке на кисломолочные продукты. Такое молоко целесообразно перерабатывать в сыры, так как оно быстрее свертывается сычужным ферментом.
Активная кислотность характеризует количество ионов водорода и выражается в pH. Однако, согласно требованиям ГОСТ, для молока необходимо определять титруемую кислотность, которая выражается в градусах Тернера. Ее определяют путем титрования 100 мл молока раствором щелочи в присутствии индикатора фенолфталеина.
В отделе химических исследований кислотность определяется согласно ГОСТ 54669-2011 Молоко и продукты переработки молока. Методы определения кислотности, п. 7. Метод базируется на титровании молока раствором щелочи (гидроксидом натрия или калия) в присутствии индикатора фенолфталеина.
Необходимо отмерить 10 мл молока и добавить 20 мл дистиллированной воды и 3 капли 1%-ого раствора фенолфталеина. Вода необходима для того, чтобы отчетливее увидеть розовый оттенок при титровании. Получившуюся смесь перемешивают и титруют раствором 0,1н едкого натра до появления слабо-розового окрашивания, не исчезающего в течение 1 мин. Результат анализа получают путем расчета количества ушедшей на титрование щелочи, умноженного на 10.
Если молоко выдоено только что, оно имеет показатель кислотности 16-18 ºТ. Кислотность повышается уже через два часа, если молоко не подвергалось охлаждению. По мере развития микроорганизмов, происходит процесс сбраживания, соответственно, кислотность также повышается.
Повышение кислотности приводит к тому, что белки становятся менее устойчивыми к нагреванию, поэтому молоко с кислотностью 21 ºТ является несортовым, а при кислотности 22 ºТ уже находится на грани свежего и кислого и не подлежит сдаче на молочные заводы.
За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 624 пробы материала, проведено 655 исследований, выявлено 4 положительных случая.
ГОСТ 26503-85. Животные сельскохозяйственные.
Методы лабораторной диагностики клостридиозов. Метод отбора проб.
Для диагностических исследований при подозрении на инфекционные болезни клостридиальной этиологии направляют в лабораторию свежие трупы ягнят, поросят, птиц и пушных зверей в целом виде. От трупов телят и взрослых животных отбирают кусочки паренхиматозных органов (печень, селезенка, почки), кровь из сердца, неоткрытую трубчатую кость.
При подозрении на инфекционную энтеротоксемию животных и анаэробную дизентерию ягнят дополнительно берут отрезок тонкого отдела кишечника с содержимым, концы которого перевязывают шпагатом. При подозрении на ботулизм отбирают пробы кормов, содержимого желудка и кровь от больных животных. При подозрении на столбняк - раневой экссудат и кусочки ткани из глубины раны. При подозрении на эмфизематозный карбункул - кусочки пораженных мышц и отечный экссудат. При подозрении на некротический гепатит - кусочки печени с некротическими участками. При подозрении на брадзот - измененные участки сычуга и инфильтрат подкожной клетчатки. При подозрении на злокачественный отек - тканевой экссудат, кусочки пораженных мышц, и тканей, а при поражении половых органов - истечение из влагалища и кусочки органов.
Содержимое желудка и кишечника направляют в лабораторию после консервирования хлороформом (одна капля на 10 см3 патологического материала). Допускается пересылать неконсервированный патологический материал, а также консервированный в стерильном 30 - 40 % - ном растворе глицерина.
Отобранные пробы должны быть доставлены в лабораторию не позднее чем через 4 часа с момента гибели животного, а консервированные - в течение 1-2 суток.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 775 исследований.
Мастит животных – воспаление молочной железы, возникающее в ответ на действие болезнетворных факторов. Характеризуется патологическими изменениями как в тканях, так и в секрете молочной железы. Маститы наблюдаются у всех сельскохозяйственных животных, в любое время года. Мастит – одна из основных болезней, обусловливающая выбраковку коров. Кроме того, молоко коров, больных маститом, претерпевает значительные физико-химические изменения, вследствие чего становится непригодным для использования или малоценным продуктом питания.
Маститы могут возникать под влиянием разных факторов, действие которых проявляется в сочетании с многочисленными предрасполагающим к заболеванию условиями. В соответствии с этиологией все маститы можно разделить на две основные группы: инфекционные, возникающие в результате воздействия микроорганизмов на молочную железу, и неинфекционные, появляющиеся при физической и химической травме вымени, неправильном доении.
К предрасполагающим условиям развития маститов относятся нарушения зоотехнических норм (содержание, кормление, гигиена доения), общие заболевания животных, гормональные нарушения, наследственная предрасположенность, неисправная доильная аппаратура, непригодность отдельных животных к машинному доению. Маститы чаще встречаются у самок в возрасте старше 5 лет в период раздоя и запуска.
Важное значение в возникновении и развитии маститов имеют микроорганизмы. В подавляющем большинстве случаев бактерии или служат непосредственными возбудителями маститов, или осложняют их течение. Наиболее часто при маститах выделяют агалактийный и дисгалактийный стрептококки, золотистый стафилококк, кишечную и синегнойную палочки.
К неинфекционным причинам маститов относят травмы тканей вымени, трещины кожи и сосков, ранения и другие воздействия физических и химических факторов: раздражение тканей вымени кислотами и щелочами, острораздражающими мазями при втирании, ожоги, обморожения.
Причиной маститов может быть также неправильный запуск коров. Если доение прекращают при довольно большом удое, то в вымени появляются изменения, характерные для воспалительного процесса: уплотнения, краснота, болезненность, свернувшееся молоко.
К маститам предрасполагает также высокая молочная продуктивность животных, т. к. у высокомолочных коров более интенсивный обмен веществ, кроме того, их ткани вымени больше подвержены влиянию неблагоприятных факторов внешней среды и более чувствительны к раздражениям при доении. С возрастом предрасположенность к маститам увеличивается.
Отчетный период с 10.04.2026г. по 16.04.2026г.
Возбудитель обладает устойчивостью к факторам внешней среды и дезинфицирующим средствам. Основными факторами вирулентности являются эндотоксины.Клинические признаки болезни: периодическая диарея, переходящая в постоянную, отеки век, межчелюстного пространства, области подгрудка и нижней части живота, обезвоживание, прогрессирующее истощение, атрофия мышц в области крупа и задних конечностей, дугообразное изгибание позвоночника, паралич сфинктера прямой кишки. Возможно бессимптомное течение болезни.
Диагноз на паратуберкулез устанавливают на основании результатов клинического осмотра животных, аллергического, серологического, бактериоскопического, патологоанатомического или гистологического методов исследования с учетом эпизоотологических данных.
В серологическом отделе для диагностики паратуберкулеза животных проводят реакцию связывания комплемента (РСК). Сущность данной реакции заключается в выявлении комплементсвязывающих антител в сыворотке крови животных, инфицированных микобактериями паратуберкулеза.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 42 пробы, проведено 217 исследований.
В пробах лука репчатого свежего и огурцов свежих массовая доля нитратов - 2 выше нормы.
Хлорорганические пестициды (ХОС) в пищевых продуктах
Хлорорганические пестициды – производные циклопарафинов, бензола, многоядерных циклические углеводородов и других веществ, содержащие хлор. Характеризуются высокой химической устойчивостью, медленно разрушаются во внешней среде, оставаясь там годами, разносятся на большие расстояния потоками воды и воздуха. Жирорастворимые хлорорганические пестициды передаются по пищевым цепочкам, причем в каждом последующем звене их концентрация возрастает примерно в десять раз.
Оказывают токсическое действие практически на все виды живых существ. В первую очередь, накапливаются в богатых жирами тканях. Поражают печень, почки, эндокринную, сердечно-сосудистую, центральную нервную системы, нарушают процессы тканевого дыхания, снижают иммунитет.
В отделе химических исследований остаточные количества хлорорганических пестицидов определяются методами газожидкостной и тонкослойной хроматографии.
Газожидкостная хроматография (ГЖХ) – это метода анализа, основанный на разделении компонентов смеси при прохождении их через колонку с неподвижной жидкостью и подвижной газовой фазой. Образец вводят в газовый поток, где компоненты движутся с различными скоростями в зависимости от их летучести и взаимодействия с неподвижной фазой. Метод позволяет разделить и количественно определить вещества в сложной смеси, даже если они сходны по химическим свойствам, и требует очень малых количеств веществ для анализа.
Таким образом, ГЖХ является одним из наиболее перспективных методов анализа, обеспечивая высокую точность и эффективность.
Тонкослойная хроматография (ТСХ) – это метод анализа, основанный на различии в скорости перемещения компонентов смеси в тонком слое сорбента при движении в потоке подвижной фазы. Разделяемые вещества адсорбируются на поверхности сорбента, что приводит к образованию зон адсорбции. Метод включает в себя подготовку образца, хроматографических пластин и хроматографической камеры, а также анализ и идентификацию компонентов.
За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1205 проб материала, проведено 1249 исследований, выявлено 3 положительных случая.
Оценка результатов бактериологического исследования колибактериоза.
Бактериологический диагноз на колибактериоз считается установленным в каждом из следующих случаев:
- выделения чистых культур эшерихий не менее чем из двух таких органов и тканей, как селезёнка, кровь сердца, костный мозг, головной мозг свежего трупа или убитого клинически больного животного, без определения их патогенности для белых мышей или цыплят и установления серогрупповой принадлежности;
- выделения из исследуемого материала культур эшерихий, содержащих какой-либо из следующих адгезивных антигенов: К88, К99, 987Р, F41, F18, A20;
- выделения из патологического материала культур эшерихий, относящихся к патогенным серогруппам или обладающих патогенностью для белых мышей или цыплят;
- выделения культур эшерихий от поросят-отъёмышей, погибших с признаками отёчной болезни, из содержимого тонкого отдела кишечника и брыжеечных лимфатических узлов, обладающих гемолитическими свойствами.
Результаты бактериологического исследования формулируют: "Из присланного материала (указать какого) выделен возбудитель колибактериоза" (указать тип адгезивного антигена или серогруппу в случае их установления) или "Из присланного патологического материала (указать какого) возбудитель колибактериоза не выделен".
Общий срок бактериологического исследования патологического материала - до 7 суток.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1199 исследований.
Органолептические исследования мяса в вакуумной упаковке — это оценка качества продукта с помощью органов чувств человека (зрение, обоняние, осязание). Такой метод позволяет определить свежесть, безопасность и потребительские свойства мяса, упакованного под вакуумом.
Основные показатели для органолептической оценки:
1. Внешний вид и цвет. Осмотр поверхности продукта, особое внимание уделяется цвету жира.
2. Консистенция. Определение на свежем разрезе продукта. При лёгком надавливании пальца образуется лунка, с последующим наблюдением за её выравниванием.
3. Запах (аромат). Сначала оценивается запах поверхностного слоя продукта, затем — в глубине мышечной ткани.
4. Состояние жира. Проверяется цвет, запах и консистенция жира (растирание кусочка жира между пальцами).
Показатели качества определяются сначала на целом (неразрезанном), а затем — на разрезанном продукте.
Условия проведения. Для органолептической оценки требуется специальное помещение с приточно-вытяжной вентиляцией.
Дегустаторы. Оценку проводят специалисты — дегустаторы, имеющие опыт работы с мясной продукцией. Они работают индивидуально и в составе дегустационной комиссии.
Методы оценки. Могут использоваться балльные системы (например, 5- или 9-балльные шкалы), описательный метод или ранговый метод (образцы располагают в ряд в порядке возрастания или убывания интенсивности какого-либо свойства).
Вакуумная упаковка способствует сохранению органолептических характеристик мяса дольше, предотвращая его высыхание и потерю аромата. Преимущества вакуумной упаковки:
1. Предотвращение окисления жиров. Создаётся безвоздушная среда, где процессы окисления останавливаются.
2. Сохранение естественного цвета. Процесс вакуумирования помогает сохранить привлекательный цвет мяса, что важно для его товарного вида.
3. Продление срока хранения. Охлаждённое мясо в вакуумной упаковке может оставаться свежим и безопасным для употребления до 2 недель в условиях промышленного холодильника. Сохраняется упругость мышечной ткани, отсутствуют признаки ослизнения.
Нормативные документы, регулирующие органолептическую оценку мяса:
ГОСТ 9959-2015 «Мясо и мясные продукты. Общие условия проведения органолептической оценки». ГОСТ 7269-2015 «Мясо. Методы отбора образцов и органолептические методы определения свежести». При проведении органолептических испытаний необходимо соблюдать требования безопасности и следовать установленным стандартам.
Отчетный период с 27.03.2026г. по 02.04.2026г.
За отчетный период в серологический отдел поступило 8619 проб сыворотки крови животных, проведено 24933 исследования. Выявлено: 472 серо-позитивных пробы по лейкозу, 70 положительно реагирующих проб по лептоспирозу у крупного рогатого скота, 14 положительно реагирующих проб по лептоспирозу мелкого рогатого скота, 38 положительно-реагирующих проб по лептоспирозу у лошадей.
Афлатоксин В1
В условиях современного рынка с его высокой конкуренцией и относительно невысокими ценами на животный белок крайне важно максимально эффективно использовать все производственные ресурсы, в том числе кормовую базу. Некачественные кормовые компоненты могут не только снизить продуктивность животных, но и вовсе привести к их смерти. Один из часто встречающихся дефектов кормов – наличие в них микотоксинов.
Существует до 300 видов микотоксинов, но среди них наиболее распространены и опасны такие, как афлатоксины, фумонизин, дезоксиниваленол (ДОН), охратоксин А, Т-2 токсин и зеараленон.
Афлатоксины – это токсичные метаболиты гриба Aspergillus flavus, вызывающего гниение початков. Образованию этих ядов способствуют жаркие, влажные и засушливые условия в период налива зерна. Афлатоксины генотоксичны и проявляют канцерогенные, тератогенные и иммуносупрессивные свойства. Эти яды воздействуют практически на все системы организма. Афлатоксины вызывают нарушения проницаемости плазматических мембран клетки и митохондрий, ингибируют репликацию ДНК, транскрипцию и синтез белка, влияют на электронный транспорт, а также регуляцию синтеза липидов. Они опасны как для человека, так и для свиней, коров, овец, кроликов, птицы и рыбы.
Отравления афлатоксинами называют афлатоксикозами. Острое отравление ими зачастую приводит к быстрой гибели животных из-за некроза печени. Однако намного чаще встречается хроническое отравление афлатоксинами. Обычно его результатом становятся онкологические заболевания печени.
Для хронических афлатоксикозов характерны такие симптомы, как потеря веса и аппетита, диарея, анемия, внутреннее кровоизлияние, неврологические нарушения, поражения внутренних органов, в особенности печени. Кожные покровы могут быть бледными. У животных и птицы ослабевает устойчивость к бактериям и вирусам, что приводит к возникновению заболеваний. У кур снижается яйценоскость, у коров – надои. Кроме того, молоко, полученное от коров, потреблявших зараженные афлатоксинами корма, содержит афлатоксин M1 – метаболит афлатоксина B1, образующийся в организме животного.
В отделе химических исследований массовую долю афлатоксина В1 определяют методами ВЭЖХ и ИФА.
За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 857 проб материала, проведено 863 исследования, выявлено 2 положительных случая.
Бактериологическое исследование колибактериоза.
Третий день исследования. Полученные на пластинчатом и скошенном МПА, а также кровяном МПА культуры (обладающие гемолитическими свойствами) в количестве двух-трех от каждого животного и выделенные из разных органов и тканей или фекалий подвергают изучению по биохимическим тестам с целью родовой и видовой идентификации. Для этого их засевают на среды Гисса с глюкозой, лактозой и индикатором Андреде, среду с мочевиной, агар Симонса, среду с сернокислым железом (тест на сероводород), бульон Хоттингера или МПБ (тест на индол), а также в 2 пробирки со скошенным МПА для определения серогрупповой принадлежности или изучения патогенных свойств культур в биопробе (в случае необходимости).
Для идентификации культур по ферментативным свойствам можно использовать комбинированные среды (Олькеницкого, Клиглера или др.), полужидкие среды с сахарами и индикатором ВР, бумажные диски СИБ или системы мультимикротестов.
Засеянные пробирки инкубируют при 37°С в течение 48 часов, ежедневно учитывая изменения в средах.
Четвертый день. Проводят предварительный учет результатов изучения ферментативных свойств культур. Бактерии рода Escherichia ферментируют с образованием кислоты и газа глюкозу, лактозу (за исключением отдельных штаммов), не растут на агаре Симонса и не утилизируют цитратно-аммонийные соли, не расщепляют мочевину, образуют индол и не образуют сероводород.
Изоляты, отнесенные к виду Escherichia coli, исследуют в РА на стекле с агглютинирующими антиадгезивными колисыворотками: вначале с комплексной, а в случае положительной реакции - с моновалентными сыворотками. При этом культуры, выросшие на пластинчатом МПА, изучают с сыворотками К88, 987Р и А20; культуры на среде Минка - с сыворотками К99, F41, F18. РА проводят в соответствии с действующим наставлением по применению указанных сывороток.
Культуры эшерихий на скошенном МПА, полученные после пересева серовато-белых колоний на среде с сорбитом (не ферментирующие этот многоатомный спирт), исследуют с агглютинирующей колисывороткой О157 в РА на стекле. Реакцию ставят с живыми культурами. При положительной реакции для исключения самоагглютинации клеток бактерий культуру исследуют с 0,85%-ным раствором хлорида натрия. В контроле с физиологическим раствором агглютинация бактерий должна отсутствовать.
Культуры эшерихий, не агглютинирующиеся с моновалентными антиадгезивными колисыворотками и колисывороткой серогруппы О157, подвергают исследованию на патогенность в биопробе на белых мышах (или цыплятах) или серологическому типированию по О-антигену с набором поливалентных и серогрупповых О-колисывороток.
Для биопробы используют две культуры на скошенном МПА, выделенные из разных органов и тканей или фекалий одного животного. Каждую культуру смывают 0,85%-ным стерильным раствором хлорида натрия, готовят суспензии в концентрации 1 млрд микробных клеток/см3 по оптическому или бактерийному стандарту, затем смешивают их в равном объёме и вводят смесь бактерий внутрибрюшинно по 0,5 см3 трём белым мышам массой 14-16 г или трём цыплятам 2,5-3-недельного возраста (при исследовании материала от птиц). При определении патогенности культур, выделенных от птиц, для биопробы используют культуры, выделенные от двух-трёх цыплят каждого птичника. Наблюдение за зараженными мышами и цыплятами проводят в течение трёх суток.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1348 исследований.
Listeria monocytogenes — это грамположительная, не образующая спор, подвижная, факультативно анаэробная палочковидная бактерия.
При рассмотрении под световым микроскопом эта бактерия демонстрирует характерную вращательную подвижность, активно передвигается с помощью жгутиков при комнатной температуре (20−25 °C), но неподвижный при температуре выше 30 °C. Растёт в диапазоне температур от 0 до 45 °C, включая условия холодильного хранения, поэтому часто листерии называют микроорганизмом «холодильника», но оптимальная температура 37 °C. Растет в широком диапазоне pH от 4,6 до 9,5 (бактерии способны адаптироваться к среде с низким уровнем pH), а также выдерживать солёность до 20%.
Наибольшее значение в распространении листериоза играет способность возбудителя длительно сохраняться в различных пищевых продуктах, в том числе упакованных в барьерные пленки, ограничивающие доступ кислорода (под вакуумом, в модифицированной газовой атмосфере).
Термоустойчивость листерий понижается с увеличением содержания соединительной ткани в мясе. Жир пищевых продуктов оказывает защитное действие на термоустойчивость листерий. В охлажденном мясе количество жизнеспособных листерий снижается, но полного отмирания возбудителя не происходит. В замороженном мясе, при минус 10 – 28°С, жизнеспособные листерии обнаруживаются до 10 – 14 месяцев и более. В мясе и шкурах, консервированных хлористым натрием, возбудитель листериоза сохраняется 60 суток и более. Благодаря этим условиям роста, устойчивости бактерии могут выживать и размножаться в неблагоприятных условиях окружающей среды, которые часто встречаются на предприятиях по производству продуктов питания. L. monocytogenes является важным патогеном, передающимся через пищу и вызывающим заболевание под названием листериоз, которое может проявляться в виде спорадических инфекций или вспышек заболевания со значительным уровнем смертности — 20–30%.
Бактерии широко распространены в окружающей среде: встречаются в почве, воде, растениях и пищевых продуктах (сырое или плохо термически обработанное мясо и рыба упакованная мясная нарезка, рыбная нарезка горячего или холодного копчения, колбасы, птица, сосиски, морепродукты); молочные продукты (некипячёное молоко, сыры из сырого молока, масло), немытые овощи и фрукты, контактирующие с заражённой почвой или животными.
Основным принципом обеспечения безопасности продуктов питания является соблюдение санитарно-эпидемиологических требований по условиям производства, упаковки, хранения, транспортировки пищевых продуктов с целью предупреждения их контаминации листерией при производстве и реализации.
Отчетный период с 03.04.2026г. по 09.04.2026г.
ИНАН характеризуется сверхострым, подострым, хроническим и бессимптомным течением.Восприимчивые животные, больные ИНАН, остаются вирусоносителями пожизненно.
Возбудителем ИНАН является РНК-содержащий вирус семейства Retroviridae подсемейства Orthoretrovirinae рода Lentivirus.
Возбудитель устойчив к физико-химическим воздействиям. В моче, навозе возбудитель сохраняется до 75 суток, в кормах - до 270 суток.
Инкубационный период болезни составляет от 7 до 90 суток.
Передача возбудителя осуществляется трансмиссивным, ятрогенным, внутриутробным, половым, контактным и алиментарным путями.
В целях предотвращения возникновения и распространения ИНАН юридические лица, физические лица, являющиеся собственниками (владельцами) восприимчивых животных, обязаны:
- предоставлять по требованиям специалистов органов и организаций, входящих в систему Государственной ветеринарной службы Российской Федерации восприимчивых животных для осмотра;
- извещать в течение 24 часов специалистов госветслужбы о случаях заболевания или гибели восприимчивых животных, а также об изменениях в их поведении, указывающих на возможное заболевание;
- принимать меры по изоляции подозреваемых в заболевании восприимчивых животных, а также обеспечить изоляцию трупов восприимчивых животных;
- выполнять требования специалистов госветслужбы о проведении в личном подсобном хозяйстве, крестьянском-фермерском хозяйстве, хозяйстве индивидуального предпринимателя, организациях, в которых содержатся восприимчивые животные, противоэпизоотических мероприятий;
- соблюдать условия, запреты, ограничения в связи со статусом региона, на территории которого расположено хозяйство.
Комплектование хозяйств должно осуществляться здоровыми восприимчивыми животными из хозяйств, в которых отсутствовали случаи заболевания ИНАН в течение 90 календарных дней до дня вывоза-отправки из хозяйства. Поступившие в хозяйство восприимчивые животные должны содержаться обособленно от других восприимчивых животных в течение 30 календарных дней со дня ввоза с целью выявления клинических признаков, характерных для ИНАН.
От восприимчивых животных 6 месяцев и старше, используемых для племенных и рабоче-пользовательских целей, осуществляется отбор проб крови для лабораторных исследований не более чем за 30 календарных дней до дня вывоза-отправки из хозяйства. от спортивных лошадей - не более чем за 90 календарных дней до дня вывоза-отправки из хозяйства. Проводиться отбор проб крови для серологических исследований от восприимчивых животных старше 6-месячного возраста – 1 раз в год. В ГБУ «Оренбургская областная облветлаборатория» проводят реакцию диффузной преципитации (РДП) по Инструкции по применению набора инфекционной анемии лошадей.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 30 проб, проведено 154 исследований.
Определение жира в молоке и молочных продуктах
Содержание жира – один из основных показателей качества молока и молочных продуктов. Необходимо проводить анализ данного параметра, чтобы определить пищевую ценность продукта и исключить фальсификацию.
В отделе химических исследований для контроля жира в молоке и молочных продуктах используют кислотный метод.
Сущность метода. Еще одно название данного метода – метод Гербера. Его особенность заключается в том, что жир выделяется в градуированную часть жиромера под действием концентрированной серной кислоты и изоамилового спирта с последующим центрифугированием.
Ход анализа. В два чистых и сухих жиромера (бутирометра) добавляют пипеткой по 10 см3 серной кислоты, а затем по стенке вливают 10,77 см3 молока. После этого добавляют 1 см3 изоамилового спирта из автоматической пипетки. Необходимо следить, чтобы горло жиромера оставалось сухим. 
Уровень смеси должен быть установлен на 1-2 мм ниже горловины, поэтому допускается добавление дистиллированной воды. Жиромер закрывают пробкой и встряхивают до полного перемешивания содержимого. Затем жиромер помещают на 5 минут в водяную баню при температуре 65 ℃ (±2 ℃). После водяной бани жиромеры устанавливают в центрифугу симметрично друг напротив друга и оставляют центрифугировать на 5 минут. Затем снова помещают в водяную баню при такой же температуре на 5 минут. После этого жиромеры достают из водяной бани и производят отсчет жира по шкале. При отсчете жиромер держат вертикально, граница жира должна находиться на уровне глаз. Движением пробки устанавливают нижнюю границу столбика жира на нулевом или целом делении шкалы жиромера. От него отсчитывают число делений до нижней точки мениска столбика жира с точностью до наименьшего деления шкалы жиромера.
Граница раздела жира и кислоты должна быть резкой, а столбик жира прозрачным. При наличии «кольца» (пробки) буроватого или темно-желтого цвета, различных примесей в столбике жира или размытой нижней границы измерение проводят повторно.
За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1510 проб материала, проведено 1557 исследований, выявлено 8 положительных случаев.
Бактериологическое исследование колибактериоза.
Пятый день: проводят окончательный учёт результатов изучения ферментативных свойств культур, предварительный учёт результатов биопробы и определение серогрупповой принадлежности культур эшерихий с поливалентными и моновалентными О-колисыворотками в реакции агглютинации (РА) на стекле (в случае необходимости).
Для РА используют 2-3 культуры эшерихий на скошенном МПА, которые не агглютинировали с колисывороткой О157. С этих культур готовят суспензии в 0,85%-ном растворе хлорида натрия, переливают ещё в чистые сухие пробирки, устанавливают концентрацию бактерий 2-3 млрд микробных клеток/см 3, а затем часть суспензии (1,5-2 см 3) переливают ещё в одну чистую сухую пробирку. Пробирки с суспензиями одних и тех же культур бактерий маркируют одноименными номерами, после чего их подвергают термической обработке: прогреванию в водяной бане (100°С) в течение 1 часа (большую часть суспензии) и автоклавированию (меньшую часть суспензии) при 1 атм (121°С) в течение 2 часов с целью разрушения поверхностного термостабильного А-антигена, содержащегося у некоторых штаммов эшерихий серогрупп О8, О9, О101. РА с колисыворотками этих серогрупп ставят с прогретыми при 100°С и автоклавированными антигенами.
Шестой день: проводят предварительный учёт результатов биопробы, постановку пробирочной РА с антигенами эшерихий, давшими положительную реакцию в РА на стекле.
Седьмой день: окончательный учёт результатов определения патогенных свойств культур эшерихий в биопробе на мышах или цыплятах и серогрупповой типизации культур в пробирочной РА. Культуры, отнесённые к одной из патогенных серогрупп или вызывающие гибель двух и более мышей или цыплят, считают патогенными и признают возбудителями колибактериоза.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 505 исследований.
Репродуктивно-респираторный синдром свиней (РРСС) - контагиозная вирусная болезнь свиней, характеризующаяся массовыми абортами свиноматок в конце срока супоросности, рождением нежизнеспособных поросят и поражением дыхательной системы. Возбудителем является РНК-содержащий вирус рода Arterivirus семейства Arteriviridae. Существует два основных генотипа вируса, различающихся по антигенам: 1тип (европейский) и 2 тип (североамериканский).
Характерные клинические признаками: угнетенное состояние, отказ от корма, повышение температуры тела, конъюнктивит, отек век, потеря зрения, поражение органов дыхания, цианоз ушей, хвоста, молочных желез, вульвы, поздние аборты, преждевременные опоросы или задержка опороса, рождение нежизнеспособного молодняка, молодняка с признаками уродства, гибель поросят на 2-7 сутки жизни, гибель поросят-отъемышей с признаками пневмонии и диареи. У хряков ухудшается качество спермы.
При возникновении подозрения на РРСС отбираются пробы биологического и (или) патологического материала: смывы из носа, носоглотки, плазма, сыворотка крови, ткани и органы павших животных (миндалины, селезенка, легкие и др.), сперма, плацента и плодовые оболочки от абортировавших животных или аборт плоды целиком, продукты питания (фарш, колбаса и т.п.).
Для исследования методом ПЦР используют следующий материал:
• Плазма крови, сыворотка крови. Кровь забирается в пробирку с антикоагулянтом (ЭДТА), закрытую пробирку с кровью несколько раз, переворачивают. Для получения сыворотки забирают кровь в пробирку без антикоагулянта.
• Мазки со слизистой носа и носоглотки берут сухими ватными зондами. Зонд с материалом помещают для транспортировки в пробирки со стерильным физиологическим раствором (конец отламывают, что бы, пробирку можно было закрыть).
• Сперму в объеме не менее 2 мл, в стерильную посуду.
• Плацента и плодовые оболочки от абортировавших животных берут на исследование целиком
• Фрагменты тканей и органов павших животных (миндалины, селезенка, легкие, печень и др.) отбирают в стерильный контейнер.
• Продукты питания (фарш, мясные полуфабрикаты, сосиски, колбасу ит.п.) отбирают в стерильные контейнеры
Пробы отобранного материала охлаждаются, при транспортировке помещаются в термос со льдом или охладителем.
Для серологического исследования (ИФА) направляют в пробирках сыворотку без признаков гемолиза и бактериальной контаминации. Допускается однократное замораживание сыворотки крови.
ГБУ «Оренбургская облветлаборатория» проводит исследование материала методами полимеразной цепной реакции и иммуноферментного анализа.
Отчетный период с 20.03.2026г. по 26.03.2026г.
За отчетный период в серологический отдел поступило 10165 проб сыворотки крови животных, проведено 23796 исследований. Выявлено: 933 серопозитивные пробы по лейкозу крупного рогатого скота; 14 положительно реагирующих проб по лептоспирозу свиней, 141 положительно реагирующая проба по лептоспирозу крупного рогатого скота, 1 положительно реагирующая проба по лептоспирозу мелкого рогатого скота, 11 положительно реагирующих проб по лептоспирозу лошадей.
Бруцеллёз (brucellosis) — зоонозная инфекция, передающаяся от больных животных человеку, которая характеризуется множественным поражением органов и систем организма. Микробов, вызывающих эту болезнь, обнаружил в 1886 году английский учёный Дэвид Брюс. В его честь их назвали бруцеллами, а заболевание — бруцеллёзом. К инфекции восприимчивы все виды домашних животных, в том числе птицы.
Возбудитель — грамотрицательные бактерии Brucella. Они устойчивы к низким температурам, способны сохраняться в замороженном состоянии более года, но в кипятке моментально погибают.
Источник возбудителя — больные животные. Возбудитель выделяется из организма с абортированным плодом, околоплодными водами, истечениями из половых органов, с молоком, спермой, мочой и калом.
Факторы передачи: контаминированные объекты внешней среды, акушерские инструменты, продукция и сырьё животного происхождения, инвентарь и спецодежда.
Заражение происходит алиментарным и половым путём, через кожу и слизистые оболочки (даже неповреждённые), трансмиссивно (через укусы клещей и кровососущих насекомых).
В хронической стадии болезнь может протекать почти бессимптомно, но животное остаётся источником инфекции.
Важно: животное может быть носителем бактерий, даже если у него нет явных признаков болезни.
В серологическом отделе ГБУ «Оренбургская облветлаборатория» диагностику бруцеллеза проводят по ГОСТ 34105-2023 Лабораторная диагностика бруцеллеза. Серологические методы. п.7.3, п.7.4, п.7.5, п.7.6.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 50 проб, проведено 325 исследований.
В одной пробе силоса установлена общая токсичность.
Определение общей токсичности в кормах
Общая токсичность кормов - обязательный показатель безопасности, утвержденный в РФ для большинства видов кормов и кормовых добавок. Исследования на общую токсичность кормов, поступивших в ГБУ «Оренбургскую областную ветеринарную лабораторию, проводят методами биотестирования на стилонихиях (экспресс-метод), мышах (острый опыт) и кроликах (кожная проба) по ГОСТ 31674-2012 «Корма, комбикорма, комбикормовое сырье. Методы определения общей токсичности». В процессе проведения анализа был выявлен один положительный результат в силосе, который показал токсичность, как на простейших, так и при постановке биопробы на лабораторных животных.
- Биотестирование кормов на стилонихиях (Stylonychia mytilus).
- Методы определения общей токсичности кормов биотестированием на кроликах и мышах.
За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1946 проб материала, проведено 1980 исследований, выявлено 9 положительных случаев.
Бактериологическое исследование колибактериоза.
Второй день: извлечённые из термостата чашки с культурами на агаре Эндо или Левина просматривают и отбирают 10 типичных для эшерихий колоний (5 - выросших после посева фекалий или соскобов со слизистой кишечника и 5 - из других органов и тканей, в том числе брыжеечных лимфатических узлов).Эти колонии: круглые, с гладкой, выпуклой поверхностью, ровными краями, диаметром 2-4 мм, красно-малинового цвета на агаре Эндо и тёмно-фиолетового цвета на агаре Левина с металлическим блеском или без него. Затем их нумеруют. Из отобранных колоний готовят мазки, окрашивают их по Граму и микроскопируют. При наличии в мазках мелких грамотрицательных палочек с закруглёнными концами, не образующих спор, расположенных одиночно и попарно, пересевают эти колонии на пластинчатый МПА и среду Минка в чашках, разделённых карандашом для стекла на 10 секторов (каждую колонию на две среды и соответствующий пронумерованный сектор). При этом в обязательном порядке пересевают лактозоположительные колонии, имеющие слизистую тягучую консистенцию, если такие колонии содержатся в культуре.
С чашек с культурами на среде с сорбитом, выделенных из разных органов и тканей животного, отбирают 3-4 колонии, характерные по структуре и цвету для эшерихий сероваров О157:Н7 и О157:Н- (средних размеров S-формы, серовато-белого цвета). Из этих колоний готовят мазки, окрашивают их по Граму и микроскопируют. В случае типичных для эшерихий клеток бактерий указанные колонии пересевают в пробирки со скошенным МПА.
При исследовании на отёчную болезнь поросят дополнительно пересевают с агара Эндо или Левина 5-6 колоний на кровяной агар в чашке, разделённой на соответствующее количество секторов, для изучения гемолитических свойств культур.
Лактозоположительные колонии на плотной селективной среде (Эндо или Левина), выросшие после посева материала от птиц, не пересевают на пластинчатый МПА и среду Минка. Для родовой и видовой идентификации культур и изучения их свойств отбирают 2-3 типичные для эшерихий колонии (с культур, выделенных из разных органов и тканей одной погибшей или убитой с диагностической целью птицы), из которых готовят мазки, окрашивают их по Граму и микроскопируют. При наличии в мазках морфологически характерных для эшерихий клеток бактерий пересевают эти колонии на скошенный МПА или среду Олькеницкого, или другую комбинированную среду.
Во всех случаях засеянные чашки и пробирки помещают в термостат (37°С) на 16-20 часов.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 493 исследования.
Классическая чума свиней (лат. Pestis suum) — вирусная болезнь свиней, характеризующаяся лихорадкой, поражением кровеносных сосудов и кроветворных органов, крупозно-дифтеритическим воспалением слизистой оболочки толстых кишок. Регистрируется во всех странах, наносит большой экономический ущерб хозяйствам: летальность 80—100 %. Заболевание возникает в любое время года.
Возбудитель - вирус рода Pestivirus семейства Flaviviridae. В организме больных свиней вирус находится в крови, во всех органах и тканях.
Вирус поражает домашних свиней и диких кабанов независимо от породы и возраста. Источник возбудителя инфекции — больные свиньи, выделяющие вирус во внешнюю среду с мочой, фекалиями, спермой, секретами.
Факторами передачи возбудителя являются продукция животного происхождения, трупы, сперма восприимчивых животных, корма, оборудование, подстилка, инвентарь и иные материально-технические средства, объекты внешней среды, контаминированные возбудителем. Естественное заражение свиней чаще происходит через пищеварительный тракт, органы дыхания, реже через повреждённую кожу. Передача возбудителя осуществляется контактным, алиментарным, трансплацентарным, ятрогенным путями и при искусственном осеменении.
При патологоанатомическом вскрытии обращают внимание на выраженный геморрагический диатез в различных органах, мраморность лимфоузлов, инфаркты селезенки, кровоизлияния в почках на фоне их анемии, катарально-геморрагический гастроэнтерит, лимфоцитарный энцефаломиелит. При хроническом течении характерными измениями являются очаговый дифтеритический налет (бутоны), коричневая экзема, фибринозный плеврит и перикардит, некроз миндалин. Хроническая болезнь часто протекает на фоне других инфекций.
Для лабораторных исследований методом ПЦР от каждого трупа восприимчивого животного должны отбираться фрагменты селезенки, почек, печени массой 5-10 г, заглоточные, подчелюстные, мезентериальные и брыжеечные лимфатические узлы, костный мозг из грудной кости. Также исследуется биологический материал: пробы крови в объеме по 5-7 мл с антикоагулянтом и без антикоагулянта (или с фактором свертывания крови для получения сыворотки), мазки со слизистой оболочки носоглотки и миндалин, фекалии, продукты свиного происхождения. С целью выявления антител к вирусу классической чумы свиней исследуется сыворотка крови методом ИФА.
