Инфекционная анемия лошадей (ИНАН) - вирусная болезнь лошадей и других непарнокопытных животных, характеризующаяся поражением кроветворных органов, рецидивирующей лихорадкой, геморрагическими явлениями на фоне пожизненного вирусоносительства.
ИНАН характеризуется сверхострым, подострым, хроническим и бессимптомным течением.
Восприимчивые животные, больные ИНАН, остаются вирусоносителями пожизненно.
Возбудителем ИНАН является РНК-содержащий вирус семейства Retroviridae подсемейства Orthoretrovirinae рода Lentivirus.
Возбудитель устойчив к физико-химическим воздействиям. В моче, навозе возбудитель сохраняется до 75 суток, в кормах - до 270 суток.
Инкубационный период болезни составляет от 7 до 90 суток.
Передача возбудителя осуществляется трансмиссивным, ятрогенным, внутриутробным, половым, контактным и алиментарным путями.
В целях предотвращения возникновения и распространения ИНАН юридические лица, физические лица, являющиеся собственниками (владельцами) восприимчивых животных, обязаны:
- предоставлять по требованиям специалистов органов и организаций, входящих в систему Государственной ветеринарной службы Российской Федерации восприимчивых животных для осмотра;
- извещать в течение 24 часов специалистов госветслужбы о случаях заболевания или гибели восприимчивых животных, а также об изменениях в их поведении, указывающих на возможное заболевание;
- принимать меры по изоляции подозреваемых в заболевании восприимчивых животных, а также обеспечить изоляцию трупов восприимчивых животных;
- выполнять требования специалистов госветслужбы о проведении в личном подсобном хозяйстве, крестьянском-фермерском хозяйстве, хозяйстве индивидуального предпринимателя, организациях, в которых содержатся восприимчивые животные, противоэпизоотических мероприятий;
- соблюдать условия, запреты, ограничения в связи со статусом региона, на территории которого расположено хозяйство.
Комплектование хозяйств должно осуществляться здоровыми восприимчивыми животными из хозяйств, в которых отсутствовали случаи заболевания ИНАН в течение 90 календарных дней до дня вывоза-отправки из хозяйства. Поступившие в хозяйство восприимчивые животные должны содержаться обособленно от других восприимчивых животных в течение 30 календарных дней со дня ввоза с целью выявления клинических признаков, характерных для ИНАН.
От восприимчивых животных 6 месяцев и старше, используемых для племенных и рабоче-пользовательских целей, осуществляется отбор проб крови для лабораторных исследований не более чем за 30 календарных дней до дня вывоза-отправки из хозяйства. от спортивных лошадей - не более чем за 90 календарных дней до дня вывоза-отправки из хозяйства. Проводиться отбор проб крови для серологических исследований от восприимчивых животных старше 6-месячного возраста – 1 раз в год. В ГБУ «Оренбургская областная облветлаборатория» проводят реакцию диффузной преципитации (РДП) по Инструкции по применению набора инфекционной анемии лошадей.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 30 проб, проведено 154 исследований.

Определение жира в молоке и молочных продуктах

Содержание жира – один из основных показателей качества молока и молочных продуктов. Необходимо проводить анализ данного параметра, чтобы определить пищевую ценность продукта и исключить фальсификацию.
В отделе химических исследований для контроля жира в молоке и молочных продуктах используют кислотный метод.
Сущность метода. Еще одно название данного метода – метод Гербера. Его особенность заключается в том, что жир выделяется в градуированную часть жиромера под действием концентрированной серной кислоты и изоамилового спирта с последующим центрифугированием.
Ход анализа. В два чистых и сухих жиромера (бутирометра) добавляют пипеткой по 10 см³ серной кислоты, а затем по стенке вливают 10,77 см³ молока. После этого добавляют 1 см³ изоамилового спирта из автоматической пипетки. Необходимо следить, чтобы горло жиромера оставалось сухим. 
Уровень смеси должен быть установлен на 1-2 мм ниже горловины, поэтому допускается добавление дистиллированной воды. Жиромер закрывают пробкой и встряхивают до полного перемешивания содержимого. Затем жиромер помещают на 5 минут в водяную баню при температуре 65 ℃ (±2 ℃). После водяной бани жиромеры устанавливают в центрифугу симметрично друг напротив друга и оставляют центрифугировать на 5 минут. Затем снова помещают в водяную баню при такой же температуре на 5 минут. После этого жиромеры достают из водяной бани и производят отсчет жира по шкале. При отсчете жиромер держат вертикально, граница жира должна находиться на уровне глаз. Движением пробки устанавливают нижнюю границу столбика жира на нулевом или целом делении шкалы жиромера. От него отсчитывают число делений до нижней точки мениска столбика жира с точностью до наименьшего деления шкалы жиромера.
Граница раздела жира и кислоты должна быть резкой, а столбик жира прозрачным. При наличии «кольца» (пробки) буроватого или темно-желтого цвета, различных примесей в столбике жира или размытой нижней границы измерение проводят повторно.

За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1510 проб материала, проведено 1557 исследований, выявлено 8 положительных случаев.

Бактериологическое исследование колибактериоза.

Пятый день: проводят окончательный учёт результатов изучения ферментативных свойств культур, предварительный учёт результатов биопробы и определение серогрупповой принадлежности культур эшерихий с поливалентными и моновалентными О-колисыворотками в реакции агглютинации (РА) на стекле (в случае необходимости).
Для РА используют 2-3 культуры эшерихий на скошенном МПА, которые не агглютинировали с колисывороткой О157. С этих культур готовят суспензии в 0,85%-ном растворе хлорида натрия, переливают ещё в чистые сухие пробирки, устанавливают концентрацию бактерий 2-3 млрд микробных клеток/см ³, а затем часть суспензии (1,5-2 см ³) переливают ещё в одну чистую сухую пробирку. Пробирки с суспензиями одних и тех же культур бактерий маркируют одноименными номерами, после чего их подвергают термической обработке: прогреванию в водяной бане (100°С) в течение 1 часа (большую часть суспензии) и автоклавированию (меньшую часть суспензии) при 1 атм (121°С) в течение 2 часов с целью разрушения поверхностного термостабильного А-антигена, содержащегося у некоторых штаммов эшерихий серогрупп О8, О9, О101. РА с колисыворотками этих серогрупп ставят с прогретыми при 100°С и автоклавированными антигенами.
Шестой день: проводят предварительный учёт результатов биопробы, постановку пробирочной РА с антигенами эшерихий, давшими положительную реакцию в РА на стекле.
Седьмой день: окончательный учёт результатов определения патогенных свойств культур эшерихий в биопробе на мышах или цыплятах и серогрупповой типизации культур в пробирочной РА. Культуры, отнесённые к одной из патогенных серогрупп или вызывающие гибель двух и более мышей или цыплят, считают патогенными и признают возбудителями колибактериоза.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 505 исследований.

Репродуктивно-респираторный синдром свиней (РРСС) - контагиозная вирусная болезнь свиней, характеризующаяся массовыми абортами свиноматок в конце срока супоросности, рождением нежизнеспособных поросят и поражением дыхательной системы. Возбудителем является РНК-содержащий вирус рода Arterivirus семейства Arteriviridae. Существует два основных генотипа вируса, различающихся по антигенам: 1тип (европейский) и 2 тип (североамериканский).
Характерные клинические признаками: угнетенное состояние, отказ от корма, повышение температуры тела, конъюнктивит, отек век, потеря зрения, поражение органов дыхания, цианоз ушей, хвоста, молочных желез, вульвы, поздние аборты, преждевременные опоросы или задержка опороса, рождение нежизнеспособного молодняка, молодняка с признаками уродства, гибель поросят на 2-7 сутки жизни, гибель поросят-отъемышей с признаками пневмонии и диареи. У хряков ухудшается качество спермы.
При возникновении подозрения на РРСС отбираются пробы биологического и (или) патологического материала: смывы из носа, носоглотки, плазма, сыворотка крови, ткани и органы павших животных (миндалины, селезенка, легкие и др.), сперма, плацента и плодовые оболочки от абортировавших животных или аборт плоды целиком, продукты питания (фарш, колбаса и т.п.).
Для исследования методом ПЦР используют следующий материал:
• Плазма крови, сыворотка крови. Кровь забирается в пробирку с антикоагулянтом (ЭДТА), закрытую пробирку с кровью несколько раз, переворачивают. Для получения сыворотки забирают кровь в пробирку без антикоагулянта.
• Мазки со слизистой носа и носоглотки берут сухими ватными зондами. Зонд с материалом помещают для транспортировки в пробирки со стерильным физиологическим раствором (конец отламывают, что бы, пробирку можно было закрыть).
• Сперму в объеме не менее 2 мл, в стерильную посуду.
• Плацента и плодовые оболочки от абортировавших животных берут на исследование целиком
• Фрагменты тканей и органов павших животных (миндалины, селезенка, легкие, печень и др.) отбирают в стерильный контейнер.
• Продукты питания (фарш, мясные полуфабрикаты, сосиски, колбасу ит.п.) отбирают в стерильные контейнеры     
Пробы отобранного материала охлаждаются, при транспортировке помещаются в термос со льдом или охладителем.
Для серологического исследования  (ИФА) направляют в пробирках сыворотку без признаков гемолиза и бактериальной контаминации. Допускается однократное замораживание сыворотки крови.
ГБУ «Оренбургская облветлаборатория» проводит исследование   материала методами полимеразной цепной реакции и иммуноферментного анализа.