Отчетный период с 13.03.2026г. по 19.03.2026г.
За отчетный период в серологический отдел поступило 3889 проб сыворотки крови животных, проведено 7335 исследований. Выявлено: 40 положительно реагирующих проб по лептоспирозу крупного рогатого скота, 2 положительно реагирующих проб по лептоспирозу мелкого рогатого скота; 176 серопозитивных проб по лейкозу крупного рогатого скота.
Сибирская язва - особо опасная зоонозная инфекционная болезнь млекопитающих животных, протекающая в молниеносной, острой, подострой и хронической формах.
Молниеносное течение болезни характеризуется внезапным падежом восприимчивого животного без проявления клинических признаков.
Клиническими признаками острого и подострого течения болезни являются повышение температуры тела до 41 - 42°С, сопровождающееся мышечной дрожью, учащением пульса и дыхания, беспокойством, угнетенным состоянием, отказом от корма, образованием на теле горячих припухлостей, отеками в области подгрудка, шеи, живота, а также коликами. Летальный исход при остром течении болезни наступает на 2 - 3 сутки.
Подострое течение болезни характеризуется вышеуказанными клиническими признаками, длится 5 - 8 суток со дня проявления клинических признаков.
Клиническим признаком хронического течения болезни является исхудание больного восприимчивого животного. Хроническое течение болезни длится до 90 суток.
В состоянии агонии у восприимчивого животного отмечается выделение из естественных отверстий кровянистой пенистой жидкости.
Возбудителем сибирской язвы является бактерия Bacillus anthracis, семейства Bacillaceae рода Bacillus (спорообразующая палочка, аэроб, факультативный анаэроб). Возбудитель в организме больного восприимчивого животного существует в вегетативной (капсульной) форме, во внешней среде - в споровой форме.
Возбудитель в вегетативной форме сохраняет жизнеспособность при температуре минус 10°С до 24 суток, в замороженном мясе при температуре минус 15°С - до 15 суток, в соленом мясе - до 45 суток, в невскрытых трупах животных - до 7 суток. Возбудитель погибает при температуре 55°С через 60 минут, при температуре 60°С - через 15 минут.
Возбудитель в споровой форме сохраняет жизнеспособность в почве до 50 и более лет, погибает под действием сухого жара при температуре 120 - 140°С через 2-4 часа, при температуре 150°С - через 60 минут, в автоклаве при температуре 110°С - через 10 минут, в 5-процентном растворе формальдегида - через 45 минут, в 10-процентном растворе соляной кислоты - через 30 минут, в 10-процентном растворе хлорамина - через 14 часов, в осветленном растворе хлорной извести, содержащем 5% активного хлора - через 60 минут.
В серологическом отделе диагностику сибирской язвы проводят по Наставлению по исследованию кожевенного и мехового сырья на сибирскую язву реакцией преципитации от 25.05.1971г., разделы II и III. Суть реакции преципитации заключается в осаждении растворимого антигена при действии антител в присутствии электролита. Видимый эффект реакции - помутнение (образование мутного кольца - преципитата).
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 26 пробы, проведено 121 исследование. 
Определение массовой доли охратоксина А методом высокоэффективной
жидкостной хроматографии
Охратоксин A способен повреждать нервную систему, подавлять иммунитет, вызывать мутации ДНК и приводить к возникновению опухолей. Этот микотоксин негативно влияет на мужскую репродуктивную систему. Также известно, что охратоксин А может проникать через плаценту, что означает, что он может воздействовать на эмбрионы.В отделе химических исследований массовую долю охратоксина А определяют методом ВЭЖХ по ГОСТ 32587-2013 Зерно и продукты его переработки, комбикорма. Определение охратоксина А методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (метод А). Метод основан на экстракции охратоксина A из анализируемой пробы продукта подкисленным хлороформом, скрининге проб, которые могут содержать охратоксин A, очистке их экстрактов методом колоночной хроматографии на силикагеле и определении массовой доли охратоксина A с применением ВЭЖХ с флуориметрическим детектированием.
За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 2104 пробы материала, проведено 2125 исследований, выявлено 15 положительных случаев.
Бактериологическое исследование колибактериоза
Первый день - посевы из паренхиматозных органов, костного и головного мозга, брыжеечных лимфатических узлов, соскобов со слизистой тонкого кишечника павших и убитых животных делают на подсушенную среду Эндо или Левина, а также на плотную среду с сорбитом (сорбитолом) для обнаружения эшерихий сероваров 0157:Н7 и 0157:Н-. Посевы проводят путем проведения разрезанной поверхности кусочка органа (из предварительно профламбированного участка) по поверхности питательной среды или отпечатков разрезанной поверхности органа. Кровь, костный мозг, желчь наносят на поверхность среды пастеровской пипеткой и равномерно растирают их стеклянным шпателем.
При исследовании трупов птиц посевы делают из крови сердца, легких, печени, костного или головного мозга на среду Эндо или Левина. От погибших поросят-отъемышей с признаками отечной болезни или диареи проводят посевы суспензии из соскобов со слизистой оболочки пораженного участка тонкого кишечника, регионарных брыжеечных лимфатических узлов и паренхиматозных органов.
Каждую пробу фекалий (не более 0,5 г) от больных диареей или соскобов со слизистой кишечника погибших животных,
взятую стерильным скальпелем, помещают в отдельную пробирку, содержащую 10 см3 стерильного 0,85%-ного раствора хлорида натрия; тщательно размешивают стеклянной палочкой и выдерживают 10-15 минут при комнатной температуре для осаждения крупных частиц. Надосадочную жидкость засевают бактериологической петлей частыми, широкими штрихами на поверхность плотной селективной среды в чашках с целью получения роста изолированных колоний бактерий.
Перед посевом материала на среду Эндо или Левина ее поверхность орошают 1-2 см3 96° спирта-ректификата для задержки роста роящейся формы протея. Невпитавшийся спирт отсасывают пастеровской пипеткой при наклонном положении чашки, после чего среду подсушивают в термостате в течение 10-15 мин, а затем используют для посева. Засеянные чашки помещают в термостат (37°С) на 18-24 часа.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 707 исследований.
Ящур - острое вирусное заболевание из группы зоонозов, характеризующееся интоксикацией и везикулёзно-эрозивным (пузырьково-язвенным) поражением слизистых оболочек ротовой и носовой полости, а также кожи межпальцевых складок и околоногтевого ложа.
Возбудителем ящура является РНК-содержащий вирус семейства Picomaviridae рода Aphtovirus, который отличается значительной антигенной вариабельностью. Существует семь типов вируса: О, А, С, Sat-1, Sat -2, Sat -3, Азия-1 и их варианты (топотипы и генетические линии). Восприимчивые животные, переболевшие ящуром, вызванным вирусом одного типа, могут заболевать ящуром, вызванным вирусом другого типа.
Ящур широко распространён среди животных (крупный рогатый скот, свиньи, козы, овцы, олени). Могут болеть лошади, верблюды, собаки, кошки и грызуны. Ящуром болеет и человек. Основной путь инфицирования людей — через сырое молоко больных животных и продукты его переработки, реже через мясо. У лиц, непосредственно контактирующих с больными животными, возможна прямая передача при доении, уходе, лечении, убое, воздушно-капельный путь заражения при дыхании, кашле животных, а также через предметы, загрязнённые их выделениями.
В лаборатории исследования материала проводятся с использованием следующих методов: полимеразной цепной реакции и иммуноферментного анализа.
Для выявления РНК вируса ящура методом ПЦР направляется материал:
- Мазки и смывы из глотки берут сухими ватными зондами. Зонд с материалом помещают для транспортировки в пробирки со стерильным физиологическим раствором.
- Выделения из носа и рта собирают в стерильную тару, в количестве не менее 0,3-0,5 мл.
- Отбор пищеводно-заглоточной жидкости проводят при помощи пищеводно-глоточного зонда (у свиней мазок из зева). Отобранная жидкость должна содержать некоторое количество клеточного материала, видимого невооруженным глазом, но не должна содержать пищевых масс.
- Тканевый материал (внутренние органы, мышцы, афты, соскобы с кожи, пищевые продукты, молоко) помещают в стерильные контейнеры.
- Кровь забирается в пробирку с антикоагулянтом (ЭДТА), закрытую пробирку с кровью несколько раз переворачивают. Для получения сыворотки забирают кровь в пробирку без антикоагулянта.
- Смывы с поверхностей (внутрилабораторных, с поверхностей тары, кормушек, мест содержания животных и др.) отбирают в стерильную тару с 0,5 мл физиологического раствора.
При отборе материала для ПЦР-исследования важно учитывать тропность возбудителя к определённому виду эпителия или среде.
Полученные образцы можно транспортировать и хранить в следующих режимах:
- при температуре от 2 до 8°С – в течение суток;
- при температуре не выше минус 18°С – в течение 2 недель;
- при температуре не выше минус 68°С – длительно.
Допускается однократное замораживание-оттаивание материала.
Методом ИФА выявляются антитела к неструктурным белкам вируса ящура (основной метод серологического мониторинга отсутствия вирусной инфекции в вакцинированных и невакцинированных стадах, ретроспективной диагностики заболевания) и выявляются антитела к структурным белкам (серотипоспецифическим, определяющим антитела, индуцированные при вакцинации или инфекции).
Отчетный период с 06.03.2026г. по 12.03.2026г.
За отчетный период в серологический отдел поступило 1452 пробы сыворотки крови животных, проведено 4458 исследований. Выявлено: 16 положительно реагирующих проб по лептоспирозу крупного рогатого скота, 20 положительно реагирующих проб по лептоспирозу лошадей и 31 положительно реагирующая проба по лептоспирозу свиней; 73 серопозитивные пробы по лейкозу крупного рогатого скота.
За отчетный период в отдел химических исследований поступила 31 проба, проведено 210 исследований.
В пробе лука репчатого свежего массовая доля нитратов - 1 выше нормы
Содержание нитратов в плодах и овощах
Нитратами называют соли азотной кислоты – природные вещества, образующиеся при метаболизме в растениях, в том числе овощах. Более того, эти естественные соединения есть в почве, откуда тоже идут через корневую систему в стебли, листья, плоды. Еще нитраты проникают в сельхозкультуры из внесенных в землю и растворившихся там удобрений.
Растения накапливают азотистые соли на начальном этапе развития, запасаясь питательными веществами. Если производители овощей, ягод, фруктов, зелени используют удобрения в чрезмерном количестве, содержание нитратов в растительной продукции может стать опасным для людей.
Овощи, плоды которых находятся над поверхностью почвы, и фрукты в среднем содержат азотистых солей меньше, чем корнеплоды. Причем опасные компоненты сконцентрированы в основном в кожуре и под ней, в мякоти их количество невелико.
Содержание нитратов зависит и от степени зрелости овощей и фруктов: чем спелее, тем солей азота больше.
Пиковое количество нитратов в корнях, стеблях, черешках, крупных прожилках листьев и корнеплодах. По способности аккумулировать азотистые соли ученые классифицируют плоды по трем группам:
- низкое содержание нитратов – от 10 до 80 мг на килограмм продукта – может быть в брюссельской капусте, репчатом луке, горохе, томатах, фасоли, картофеле, фруктах, щавеле, ягодах;
- среднее – от 300 до 600 мг – в белокочанной и цветной капусте, моркови, огурцах, репе, кабачках, редьке, тыкве, хрене;
- высокое – до 5000 мг нитратов на килограмм – накапливается дынями, арбузами, зеленым луком, листовой капустой, редисом, шпинатом, салатом, свеклой, укропом.
Оказавшись в организме, нитраты всасываются через стенки тонкого кишечника и попадают в кровь, а в период лактации у женщин — в грудное молоко. Компоненты реагируют с гемоглобином, окисляя его и образуя метгемоглобин с повышенным количеством железа. В результате у человека могут развиться серьезные заболевания.
В отделе химических исследований массовую долю нитратов определяют по МУ 5048-89 Методические указания по определению нитратов и нитритов в продукции растениеводства, п. 2. Сущность метода состоит в извлечении нитратов из анализируемого материала раствором алюмокалиевых квасцов с последующим измерением их концентрации в полученной вытяжке с помощью ионоселективного электрода.
За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 352 пробы материала, проведено 410 исследований, выявлено 5 положительных случаев.
Материал для исследования бактериологической диагностики колибактериоза.
Для посмертной бактериологической диагностики колибактериоза в лабораторию направляют 2-3 свежих трупа или убитых с диагностической целью больных животных (желательно не подвергавшихся лечению антибактериальными препаратами). В случае невозможности доставки целого трупа в лабораторию направляют от телят, ягнят и поросят долю печени с жёлчным пузырём; сердце, перевязанное лигатурой вблизи разреза сосудов и аорты; селезёнку, поражённый участок тонкого отдела кишечника, перевязанный с двух концов лигатурой, с 2-3 пакетами регионарных лимфатических узлов, голову, трубчатую кость. Кишечник вместе с регионарными лимфатическими узлами упаковывают отдельно в полиэтиленовый пакет.
Для прижизненной бактериологической диагностики колибактериоза в лабораторию направляют фекалии больных диареей животных (не менее чем от 5 животных с одной фермы), не подвергавшихся лечению антибактериальными препаратами. Пробы фекалий массой 1-2 г от каждого больного животного берут во время дефекации или из прямой кишки в стерильные пробирки с помощью прокипячённого резинового катетера, обвёртывают их ватой и вместе с сопроводительной запиской упаковывают в пенал, коробку или полиэтиленовый пакет. При невозможности быстрой доставки проб фекалий в лабораторию (через 3-4 часа после взятия) их консервируют глицериновым раствором в соотношении 1:2.
Для диагностики колибактериоза птиц в лабораторию направляют из неблагополучных птичников по 3-5 свежих трупов и 3-4 цыплёнка с клиническими признаками болезни. Больную птицу убивают в лаборатории и подвергают бактериологическому исследованию.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 666 исследований.
Орнитоз, пситтако́з (от лат. psittacus — «попугай») – это инфекционное заболевание с преимущественно аэрозольным механизмом передачи, характеризующаяся в типичных случаях лихорадкой, интоксикацией и поражением органов дыхания. Возбудитель орнитоза – бактерии Chlamydia psittaci. Бактерия устойчива к высыханию, поэтому может сохраняться в окружающей среде (пыли, загрязнённых перьях) долгое время.
Источником и резервуаром C. psittaci являются различные виды синантропных, декоративных, домашних и диких птиц. Наибольшее эпидемиологическое значение имеют домашние птицы - особенно утки и индюшки, комнатные птицы-попугаи, волнистые попугайчики, канарейки, синантропные - городские голуби.
Симптомы орнитоза у птиц: ринит, диарея, воспаления глаз, заторможенность, вялость, слипание перьев, взъерошенность оперения, отказ от еды. Чаще наблюдается бессимптомное течение болезни, с выделением микроорганизмов во внешнюю среду. При непосредственном контакте дикие птицы заражают домашних уток, индеек, кур, что может приводить к возникновению вторичных очагов орнитоза в птицеводческих хозяйствах. Заражение происходит при контакте с инфицированной птицей, пометом, выделениями дыхательных путей, пылью, пухом. Механизм передачи возбудителя преимущественно аэрозольный, фекально-оральный. Высокий риск заражения человека. Особенно лиц, постоянно контактирующих с птицами: работники птицефабрик, мясокомбинатов, фермеры и др.
Лаборатория проводит диагностические исследования для выявления генетического материала возбудителя орнитоза в биологическом материале от животных методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с гибридизационно-флуоресцентной детекцией в режиме «реального времени». Материал для исследования: мазки с конъюнктивы, мазки из клоаки, мазки со слизистой оболочки глотки, тканевой материал (фрагменты органов), помет птиц.
Отчетный период с 20.02.2026г. по 26.02.2026г.
За отчетный период в серологический отдел поступило 1171 проба сыворотки крови животных и 1 проба мочи от лошади; проведено 2925 исследований сыворотки крови и 1 исследование мочи на лептоспироз. Выявлено: 50 положительно реагирующих проб по лептоспирозу крупного рогатого скота и 1 серопозитивная проба по лейкозу крупного рогатого скота.
Листериоз (Listeriosis) — инфекционная болезнь животных и человека.
Листерия, она же Listeria monocytogenes, — бактерия, которая имеет форму короткой палочки со жгутиками. Листерия не строго анаэробная: ей не требуется для жизни кислород, но при этом она также способна существовать в его присутствии. Хорошая среда для обитания листерий — почва, силосные ямы и кучи, водоёмы со стоячей водой.
К листериозу восприимчивы овцы, козы, крупный рогатый скот, свиньи, лошади, кролики, куры, гуси, утки, индейки. Болеют животные всех возрастов, особо чувствительны молодняк и беременные животные. Отмечены случаи заболевания листериозом кошек, собак и обезьян. Источник возбудителя инфекции — больные и переболевшие животные. Основной резервуар возбудителя в природе — свободноживущие грызуны, являющиеся причиной заражения листериозом сельскохозяйственных животных, чаще всего через воду, корма, загрязнённые выделениями грызунов. Отмечена большая роль некачественного силоса в появлении и распространении листериоза, в особенности у овец. В циркуляции возбудителя листериоза между дикими животными (особенно грызунами), по-видимому, определённую роль играют клещи. В естественных условиях заражение листериозом, очевидно, происходит через слизистую оболочку носовой и ротовой полостей, конъюнктиву, пищеварительный тракт, повреждённую кожу. Листериоз проявляется спорадически, реже — в виде эпизоотии, у овец носит сезонный характер, проявляется в зимне-весенний период, что связано с активизацией механизма передачи возбудителя (миграция грызунов - листерионосителей к животноводческим помещениям и складам кормов) со снижением неспецифической резистентности организма. Для листериоза характерна также стационарность.
Инкубационный период 7—30 суток. Течение острое, подострое и хроническое. Листериоз проявляется в несколько формах: нервной, септической, смешанной, бессимптомной, а также с преимущественным поражением половых органов и вымени. У крупного рогатого скота чаще поражается нервная система. Болезнь начинается угнетением, вялостью, снижением аппетита. Через 3—7 суток у животных отмечают некоординируемые движения, судороги, приступы буйства, парезы нижней челюсти и отдельных групп мышц, потерю зрения, конъюнктивит. Температура тела повышается или остаётся в пределах нормы. Длительность болезни до 10 суток. Поражение половой системы проявляется абортами, задержанием последа, метритами. Иногда возникает мастит. У телят листериоз чаще всего протекает в виде септицемии. У овец и коз также поражается нервная система. Вначале отмечают необычное поведение животного, снижение аппетита, сонливость, конъюнктивит и ринит. Температура тела повышается до 40,5—41°C или остаётся в пределах нормы. Через 1—2 суток появляются признаки поражения нервной системы: круговые движения, потеря равновесия, судороги, искривление шеи, расширение зрачков, потеря зрения. У ягнят чаще наблюдают септицемическую форму (поносы, лихорадка). У беременных овец и коз возникают аборты и маститы. У взрослых свиней отмечают исхудание, анемию, кашель, нарушение координации движений, абсцессы в различных органах и тканях, аборты и рождение мёртвых поросят. У поросят чаще наблюдают поражение нервной системы: расстройство координации движений, манежные движения, мышечную дрожь, судороги, возбуждение.
В ГБУ «Оренбургская облветлаборатория» проводит исследования по Методическим рекомендациям по лабораторной диагностике листериоза животных и людей п. 8.2
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 17 проб, проведено 230 исследований.
Бенз(а)пирен в пищевых продуктах
Бенз(а)пирен относится к классу полициклических ароматических углеводородов – ПАУ. Это группа органических соединений, в химической структуре которых присутствуют бензольные кольца – группы от трех колец и больше.
Бенз(а)пирен – один из самых мощных и при этом широко распространенный канцероген. Будучи химически и термически устойчивым, обладая свойствами биоаккумуляции, он, попав и накапливаясь в организме, действует постоянно и мощно. Помимо канцерогенного, бенз(а)пирен оказывает мутагенное, эмбриотоксическое, гематотоксическое действие.
Основными источниками бенз(а)пирена, потребляемого человеком, являются: окружающий воздух, табачный дым, отопление (сжигание древесины, угля или других биомасс), автомобильный транспорт, асфальт, каменноугольные смолы.
Вещество образуется также при жарении и копчении продуктов. Это, прежде всего, копчености: колбаса, рыба, шпроты. И даже шашлыки могут содержать бенз(а)пирен. В продуктах питания, в которых допустимо наличие бенз(а)пирена из-за технологических особенностей (копченые мясные, мясосодержащие и птичьи продукты; копченые сыры и сырные продукты, сырные пасты, соусы; зерно продовольственное; шпик копченый), содержание бенз(а)пирена согласно требованиям Технического регламента Таможенного союза ТР ТС 021/2011 «О безопасности пищевой продукции» не должно быть более 0,001 мг/кг. В копченой рыбной продукции допускается не более 0,005 мг/кг бенз(а)пирена.
В других продуктах питания, в том числе продуктах питания для детей наличие бенз(а)пирена не допускается.
Попадание бенз(а)пирена в организм человека его даже в малых дозах опасно для здоровья. Под действием канцерогена клетки начинают аномально делиться, вызывая раковые опухоли. Другие проявления негативного воздействия на организм человека:
- развитие атеросклероза сосудов;
- поражение печени;
- инсульты и инфаркты.
В отделе химических исследований массовую долю бенз(а)пирена определяют методом ВЭЖХ.
Метод измерений состоит из следующих этапов анализа:
- щелочной гидролиз пробы;
- экстракция бенз(а)пирена гексаном;
- очистка экстракта методом колоночной хроматографии;
- концентрирование и количественное определение бенз(а)пирена методом ВЭЖХ с использованием жидкостного хроматографа «Люмахром» с флуориметрическим детектором.
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 309 проб материала, проведено 322 исследования, выявлено 6 положительных случаев.
Посмертная диагностика при сальмонеллезе животных и птиц.
Первый день исследования. Посевы на питательные среды делают из крови сердца, печени, желчного пузыря, селезенки, почки, измененных лимфатических узлов и костного мозга. При подозрении на хроническое течение болезни делают дополнительные посевы из легких (телят), слепой кишки (свиней), измененных желтков яичника (кур). Патологический материал засевают на МПБ, чашки Петри с МПА и одной из дифференциальных сред (Эндо, Плоскирева, Левина, висмут-сульфитный агар). При подозрении на хроническое течение сальмонеллеза посевы обязательно проводят и на одну из сред накопления (селенитовая, Мюллера, Кауфмана, Киллиана).
Засеянные пробирки и чашки помещают в термостат при температуре 37°С на 18 - 20 часов.
Наряду с высевом на питательные среды проводят микроскопическое исследование методами световой и люминесцентной микроскопии.
Для световой микроскопии мазки готовят из трупного материала и органов абортированных плодов и окрашивают по Граму.
Второй день исследования. Через 18 - 24 часа просматривают посевы на плотных средах в чашках Петри и отбирают подозрительные колонии, а также делают высевы из жидких питательных сред на плотные дифференциальные среды.
При обнаружении роста типичных или подозрительных колоний их исследование начинают с изучения морфологии в мазке, окрашенном по Граму. Все отобранные культуры пересевают на цветной ряд, состоящий из полужидких или жидких с поплавками сред Гисса с глюкозой, лактозой, сахарозой, маннитом, а также на МПБ или 1%-ную пептонную воду для определения образования индола и сероводорода. Подвижность сальмонелл определяют при посеве культуры уколом в полужидкий агар (0,2% агар-агара) или при посеве в полужидкие среды Гисса. Неподвижные микробы растут только по ходу укола, подвижные дают диффузный рост и помутнение всей среды.
Одновременно необходимо проводить реакцию агглютинации с монорецепторными сальмонеллезными сыворотками.
Третий день исследования. Проводят идентификацию выделенных культур по биохимическим свойствам на цветном ряду, изучение антигенной структуры в реакции агглютинации на стекле с монорецепторными сальмонеллезными сыворотками, просмотр чашек Петри с посевами из жидких питательных сред.
Если выделенная культура обладает типичными морфологическими, культуральными и биохимическими свойствами и дает четкие результаты в реакции агглютинации с определенными монорецепторными сыворотками, дают ответ о выделении сальмонелл установленного серологического типа.
Если в первичных посевах на твердых питательных средах роста характерных колоний не получено, то при просмотре чашек с посевами из жидких питательных сред проводят отбор подозрительных колоний и исследуют в указанном выше порядке.
Если характерных и подозрительных колоний нет ни в чашках с прямыми посевами, ни в чашках с высевом из жидких питательных сред, дают ответ об отрицательном результате исследования.
Четвертый день исследования. Проводят учет ферментативной активности культур, пересеянных накануне на цветной ряд, и серологическое исследование их.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 394 исследования.
Бактерии рода Proteus-грамотрицательные палочковидные, аэробные, в основном, подвижные микроорганизмы. Термин «Протей» означает изменчивость формы роста на плотных питательных средах. Подвижные формы имеют характерные рост "роения" (пленкой, напоминающей туман, образующийся при дыхании на стекле). Поэтому жгутиковые (роящиеся, подвижные) варианты были обозначены как H-формы. Не роящиеся, неподвижные варианты, растущие изолированными колониями и лишенные поверхностной пленки, были обозначены как O-формы.
Широко распространены в природе как сапрофиты, они обнаруживаются в разлагающихся остатках животных, сточных водах, навозе, в кишечнике млекопитающих, а также в фекалиях человека и животных. Они являются условно-патогенными микроорганизмами. Показывают фекальное и органическое загрязнение.
Бактерии рода Proteus в пищевой продукции являются индикатором гнилостной порчи. Они длительно сохраняются и размножаются в продуктах.
Основные пути передачи: употребление мяса, рыбы, молока, колбасы, которые хранились с нарушением сроков и условий хранения. Реже инфицирование происходит при употреблении заражённой воды, при купании, через грязные руки.
Обнаружение бактерий рода Proteus в готовой продукции говорит о нарушениях режима тепловой обработки; санитарной обработки инвентаря, посуды и оборудования; несоблюдении условий хранения и сроков реализации.
В соответствии с Техническим Регламентом Таможенного союза «О безопасности пищевой продукции» доброкачественные продукты (мясо всех видов, изделия из мяса, изделия из яиц, кулинарные изделия без тепловой обработки из рыбы и морепродуктов, икорные продукты, многокомпонентные блюда из рыбы, нерыбные объекты (двухстворчатые моллюски живые), хлебобулочные изделия с начинкой и другая продукция (салаты, соусы, студни, супы, гарниры, омлеты, готовые кулинарные изделия из мяса и др.)) не должны содержать бактерий рода Proteus. Поэтому проводится санитарный контроль на предприятиях по роду деятельности, связанные с пищевыми продуктами.
Кроме микробиологического исследования сырья и готовой пищевой продукции необходимо исследовать смывы с объектов окружающей среды (со спецодежды и рук работников, с оборудования, инвентаря, посуды, столовых приборов).
Источником инфицирования блюд очень часто являются загрязненные остатками пищи посуда, инвентарь и оборудование, работники. Обсеменение может происходить при использовании одних и тех же разделочных досок, ножей, мясорубок для сырых и вареных продуктов.
Протейная палочка погибает при тепловой обработке, обнаружение ее в готовой продукции говорит о нарушениях режима тепловой обработки или плохой санитарной обработке инвентаря, посуды и оборудования, а также несоблюдении условий хранения и сроков реализации.
Отчетный период с 27.02.2026г. по 05.03.2026г.
За отчетный период в серологический отдел поступило 2119 проб сыворотки крови животных, проведено 9320 исследований. Выявлено: 36 положительно реагирующих проб по лептоспирозу крупного рогатого скота и 4 положительно реагирующие пробы по лептоспирозу лошадей; 20 серопозитивных проб по лейкозу крупного рогатого скота.
Инфекционный эпидидимит баранов – острая и хронически протекающая инфекционная болезнь, проявляющаяся у баранов воспалением семенников и их придатков, а у овцематок –абортами, рождением нежизнеспособного приплода и бесплодием. Возбудителем эпидидимита баранов является Brucella ovis. Устойчивость бактерии невысокая, ультрафиолетовые лучи убивают ее за 5-10 суток, прямой солнечный свет – от нескольких минут до 4-х часов. Но в то же время около 5-7 дней она спокойно может прожить в молоке, а в шерсти у овец сохраняется 15-20 дней. Эпидидимит баранов опасен для овец в возрасте 2-7 лет, поражает как баранов, так и овцематок. Протекает преимущественно в хронической форме и проявляется у баранов-производителей воспалительными процессами в семенниках и придатках семенников (орхиты, эпидидимиты), у овцематок - абортами, обычно сопровождающимися метритами, рождением мертвого или нежизнеспособного приплода. Источником инфекции являются больные животные. Передача возбудителя происходит, главным образом, половым путем, возможны алиментарный, контактный пути и внутриутробное заражение. Заражение животных происходит при совместном содержании больных и здоровых овец (на племенных предприятиях и станциях искусственного осеменения, кошарах, выгульных площадках). Диагноз на инфекционный эпидидимит баранов ставят на основании эпизоотологических данных, клинических симптомов болезни, результатов патологоанатомического вскрытия, результатов бактериологического и серологического исследования. В ГБУ «Оренбургская облветлаборатория» проводит исследования по Наставлению по диагностике инфекционной болезни овец, вызываемой бруцеллой овис п. 4.3
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 57 проб, проведено 400 исследований.
Определение массовой доли общего фосфора в мясной продукции
Фосфор – элемент с порядковым номером 15. Фосфор – основной компонент всех растительных и животных клеток и, следовательно, присутствует во всех пищевых продуктах. В целом продукты, богатые белком, также богаты и фосфором. Мясо, птица, рыба, яйца, молоко и зерновые продукты являются хорошими источниками фосфора.
Этот элемент входит в состав белков, фосфолипидов, нуклеиновых кислот. Кроме пластической роли, соединения фосфора принимают участие в обмене энергии.
Фосфаты - смеси различных солей фосфорной кислоты, предназначенные для регулирования функционально - технологических свойств мясных эмульсий и действуют как синергисты поваренной соли. Фосфаты, вызывая изменение рН среды, повышая ионную силу растворов и, связывая Са в системе актомиозинового сокращения, обеспечивает интенсивное набухание мышечных белков, увеличивают уровень водосвязывающей и эмульгирующей способности, повышают вязкость фарша, тормозят окислительные процессы в жире.
В отделе химических исследований массовую долю фосфора определяют спектрофотометрическим методом по ГОСТ 32009-2013 Мясо и мясные продукты.
Метод основан на высушивании навески, озолении остатка с последующим охлаждением и гидролизом золы азотной кислотой, фильтровании, разбавлении фильтрата смесью монованадата аммония и гептамолибдата аммония с образованием соединения желтого цвета и фотометрическом измерении оптической плотности при длине волны 430 нм.
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 576 проб материала, проведено 649 исследований, выявлено 3 положительных случая.
Прижизненная диагностика сальмонеллеза (исследование фекалий).
Первый день исследования (посев материала на питательные среды). Фекалии засевают в чашки Петри с плотными дифференциальными средами (Эндо, Плоскирева, Левина, висмут-сульфитный агар).
Необходимым условием для получения изолированных колоний является отсутствие конденсата на поверхности питательной среды, что достигается разливом среды, охлажденной до температуры 50°С, и ее подсушиванием. Готовить среду лучше накануне.
Одновременно проводят посев фекалий в среды обогащения (селенитовая, Кауфмана или Мюллера), при этом соблюдают соотношение посевного материала к среде 1:5.
Засеянные чашки и пробирки помещают в термостат при температуре 37°С на 18 - 20 часов.
Учитывая возможность неудачи первичного посева (отсутствие роста или сплошной рост), материал хранят в холодильнике, пока не будут просмотрены чашки с посевами.
Второй день исследования. Через 18 - 24 ч просматривают посевы на чашках Петри и отбирают подозрительные колонии, а также делают высев из сред обогащения на чашки Петри с плотными дифференциальными средами.
При обнаружении на чашках роста типичных колоний изучают 2 - 3 колонии, а при наличии подозрительных колоний изучают 3 - 5 колоний с каждой чашки. Изучаемые колонии снимают и пересевают в пробирки на трехуглеводную среду с мочевиной (рецепт среды см. в приложении) или короткий цветной ряд (среды Гисса с глюкозой, лактозой, сахарозой, маннитом) и МПА. На трехуглеводную среду с мочевиной посев делают сначала штрихом по скошенной поверхности, а затем уколом в глубину столбика.
Одновременно может быть проведена предварительная реакция агглютинации с сальмонеллезными агглютинирующими сыворотками.
Третий день исследования. Изучают выделенные культуры по биохимическим свойствам, просматривают чашки Петри с посевами из сред обогащения и отбирают подозрительные колонии, которые пересевают на трехуглеводную среду с мочевиной.
Если характерных и подозрительных колоний нет в чашках с прямыми посевами, а также в чашках с высевом из сред обогащения, дают ответ об отрицательном результате исследования.
Четвертый день исследования. Проводят учет ферментативной активности культур, пересеянных с трехуглеводной среды с мочевиной, и серологическое исследование их. Таким образом, на четвертый день заканчивают исследование культур, выделенных из первичного посева.
В тех случаях, когда сальмонелл из первичных посевов не выделено, проводят идентификацию культур, высеянных накануне на трехуглеводную среду с мочевиной, по ферментации лактозы, сахарозы, глюкозы и мочевины. При подозрении на наличие сальмонелл делают пересев на цветной ряд, а также в МПБ или 1%-ную пептонную воду для определения сероводорода и индола.
Пятый день исследования. Проводят учет биохимических и серологических свойств культур, пересеянных накануне с трехуглеводной среды с мочевиной.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 646 исследований.
Грипп птиц - высококонтагиозная вирусная болезнь птиц, характеризующаяся поражением кровеносной и центральной нервной систем, органов дыхания, пищеварения, выделения и яйцеобразования. Возбудителем болезни является РНК-содержащий вирус, относящийся к семейству ортомиксовирусов, роду вируса гриппа А, а также его серотипы Н5, Н7 и Н9 в независимо от их патогенности.
Характерными клиническими признаками вируса гриппа птиц являются снижение продуктивности, угнетенное состояние, отказ от корма и воды, взъерошенность оперения, цианоз кожных покров, отек межчелюстного пространства, наличие подкожных кровоизлияний на конечностях, нарушение координации движений, синусит, ринит, конъюнктивит, диарея. Возможно бессимптомное течение болезни у вакцинированных против гриппа птиц, а также у диких водоплавающих птиц. Характерными патологоанатомическими изменениями являются кровоизлияния в подкожной клетчатке, слизистых и серозных оболочках, головном мозге, паренхиматозных органах, застойная гиперемия в органах и тканях.
Лабораторные исследования проб биологического, патологического материала проводятся с использованием методов исследования: выделение возбудителя с использованием вирусологического метода исследований на свободных от специфических патогенов, развивающихся эмбрионах кур или в чувствительной культуре клеток с его идентификацией в реакции торможения гемагглютинации, выявление генетического материала возбудителя методом полимеразной цепной реакции, выявление антигена возбудителя методами иммуноферментного анализа и в реакции диффузионной преципитации, выявление антител к возбудителю серологическими методами РТГА, ИФА, РДП.
Для выявления вируса гриппа птиц методом ПЦР в лаборатории направляют биологический материал (трахеальные (ротоглоточные), клоакальные смывы (мазки), сыворотка крови, сборные пробы помет). Патологический материал (от трупов птиц отбирается: головной мозг, селезенка, трахея, легкие, сердце, почки, участки кишечника вместе с содержимым, перевязанные лигатурами). Участки кишечника отбираются отдельно от других внутренних органов. Допускается направление трупов птиц целиком. Так же проводятся исследования пищевой продукции, кормов с целью выявления вируса гриппа птиц.
Отчетный период с 13.02.2026г. по 19.02.2026г.
За отчетный период в серологический отдел поступило 422 пробы сыворотки крови животных, проведено 731 исследование. Выявлено: 8 положительно реагирующих проб по лептоспирозу свиней и 2 положительно реагирующие пробы по лептоспирозу лошадей.
Лептоспироз (Leptospirosis, инфекционная желтуха, собачья лихорадка, болезнь Васильева–Вейля) — инфекционная, природно-очаговая болезнь многих видов животных и птиц, проявляющаяся лихорадкой, гемоглобинурией (гематурией), желтушным окрашиванием и некрозами слизистых оболочек и кожи, атонией желудочно-кишечного тракта, абортами, рождением нежизнеспособного потомства, снижением продуктивности животных.
Возбудитель был выявлен А. Вейлем в 1886 году и Н. П. Васильевым в 1888 году. Возбудители лептоспироза — лептоспиры, принадлежащие к семейству спирохет, которые занимают промежуточное положение между бактериями и простейшими. Лептоспира состоит из тонкой осевой нити, которую окружает цитоплазматическая спираль. Длина лептоспир колеблется от 5 до 20, толщина — от 0,1 до 0,2 микрон. Концы лептоспир крючкообразно загнуты и имеют пуговчатое утолщение. У отдельных лептоспир наблюдаются и безкрючковые формы. Размножаются лептоспиры путем поперечного деления материнской клетки на две или три части.
Лептоспиры отличаются большим разнообразием серотипов, разделенных на 19 серогрупп. У сельскохозяйственных животных выделено 7 серогрупп.
Лептоспироз сезонная болезнь. В умеренном климате пик заболеваемости приходится на лето и первую половину осени.
На территории РФ возбудителями лептоспироза сельскохозяйственных животных и собак являются лептоспиры серогрупп: Grippotyphosa, Pomona, Tarassovi, Sejroe, Hebdomadis, Icterohaemorrhagiae, Canicola; в природных очагах установлена циркуляция лептоспир серогрупп: Grippotyphosa, Pomona, Sejroe, Javanica, Icterohaemorrhagiae, Bataviae, Australis, Autumnalis.
К лептоспирозу восприимчивы все сельскохозяйственные животные (крупный и мелкий рогатый скот, лошади, овцы, свиньи), домашние (собаки, кошки), дикие плотоядные (лисицы, волки, шакалы), пушные звери (норки, песцы), грызуны (нутрии, мыши, полевки, крысы), хищные, домашние и дикие птицы.
Основной источник инфекции — мыши, крысы, ежи, землеройки. Грызуны являются пожизненными носителями и основными резервуарами инфекции. Вторичными носителями лептоспир являются КРС, МРС, свиньи, собаки/лисицы.
В ГБУ «Оренбургская облветлаборатория» проводит исследования по ГОСТ 25386-91 «Животные сельскохозяйственные. Методы лабораторной диагностики лептоспироза» п. 2.3.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 37 проб, проведено 215 исследований.
Определение числа падения в муке пшеничной
Этот показатель зависит от фермента альфа-амилазы: чем выше его активность, тем ниже число падения. Активность фермента означает, что происходит процесс прорастания зерна, на который затрачивается энергия. Поэтому показатель числа падения необходим для определения хлебопекарных качеств пшеницы.
- более 250 сек. – отличное качество;
- 200–250 сек. – допустимо;
- менее 180 сек. – сигнал о снижении качества.
Значения ниже 150 сек. часто указывают на прорастание зерна – такие партии, как правило, бракуются.Число падения напрямую влияет на качество хлеба: чем ниже число падения от стандартных показателей, то хлеб из такой муки будет отходить от корки и иметь кисловатый вкус. Ярко выраженный запах солода и неустойчивая форма изделия – это тоже характеристики хлеба из некачественной муки с низким показателем числа падения.
В отделе химических исследований ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория» определение числа падения проводится по ГОСТ 27676-88 «Зерно и продукты его переработки. Метод определения числа падения». Принцип метода заключается в определении времени свободного падения шток-мешалки в клейстеризованной водно-мучной суспензии.
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 114 проб материала, проведено 134 исследования, положительных случаев не выявлено.
Материал для исследования на сальмонеллез.
Для посмертной диагностики сальмонеллезов в лабораторию направляют свежие трупы мелких животных и птиц; от трупов крупных животных - паренхиматозные органы или части их (печень с желчным пузырем и лимфатическими узлами, селезенку, почку), мезентериальные лимфатические узлы, трубчатую кость; при подозрении на хроническую форму от свиней, кроме того, направляют слепую кишку с содержимым, и от телят - измененные участки легких; в случае аборта - свежий плод.
Материал для исследования следует брать в возможно более ранние сроки после гибели животного (не позднее 12 часов). Не рекомендуется брать материал от животных, подвергавшихся лечению антибиотиками.
Трупы направляют в лабораторию в водонепроницаемой таре. Пробы органов доставляют в чистой, по возможности стерильной посуде (кишечник отдельно от других органов) в свежем виде; при невозможности быстрой доставки материал консервируют 30% -ным водным раствором глицерина.
Для прижизненной диагностики в лабораторию направляют фекалии, кровь, истечения из матки при абортах, а для серологического исследования по РА - сыворотку крови.
Период бактериемии при сальмонеллезах очень короткий, поэтому кровь для прижизненной диагностики необходимо брать в наиболее ранние сроки заболевания (на 1 - 4-й день). Кровь берут стерильным шприцем из яремной вены больного животного (теленка) в количестве 5 - 10 мл. Посев на среды целесообразно проводить сразу же после взятия крови.
Для обнаружения сальмонелл пробы фекалий отбирают после дефекации из последней порции. При наличии в фекалиях крови, слизи, гноя, пленок их необходимо включить в пробу. Можно брать фекалии непосредственно из прямой кишки с помощью стерильной стеклянной ректальной трубки (трубки Цимана) или деревянной палочки с ватным или марлевым тампоном на конце. Отобранные пробы помещают в стерильную посуду.
При невозможности посева в течение 3-4 часов фекалии помещают в пробирку с консервирующим раствором. В качестве консерванта применяют глицериновую смесь или буферный раствор фосфорнокислых солей (pH 8,0). В пробирку наливают 5 мл консерванта, количество же помещенных фекалий должно составлять 1/3 объема консерванта.
Исследование фекалий следует начинать в возможно более ранние сроки. Лишь в исключительных случаях допускается хранение материала не более суток в холодильнике при 2 - 6°С.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 381 исследование.
Антибиотики в молоке могут присутствовать в остаточных количествах, которые попадают из-за применения препаратов в ветеринарии:
-лечение животных антибиотиками;
-применение антибиотиков в кормах для животных;
-неправильная обработка вымени (используемое средство может попасть в молоко);
-нарушение в очистке доильного оборудования (используемое средство может попасть в молоко).
В молоке, которое поступает в продажу, может сохраняться до 90–100% антибиотиков, присутствовавших в нём на момент дойки. Это связано с тем, что антибактериальные вещества практически не разрушаются и не переходят в другие формы при стерилизации и пастеризации.
Остаточные количества антибиотиков в молоке могут нанести вред здоровью человека и производству молочных продуктов:
-аллергические реакции;
-кумулятивное накопление в органах и тканях;
-появление устойчивости штаммов микроорганизмов к антибиотикам;
-нарушение технологического процесса (антибиотики подавляют развитие бактерий, применяемых при производстве кисломолочных продуктов, и нарушают сычужное свёртывание молока при производстве творога и сыра).
В лаборатории для определения остатков антибиотиков в молоке используют экспресс-тест 4 Sensor, основанный на иммунологическом методе (реакции комплексообразования антибиотиков в молоке со специфическими белковыми рецепторами, меченными коллоидным золотом, в микролунках диагностического набора). Данным набором определяются β-лактамы (пенициллин и цефалоспорин), тетрациклин, левомицетин (хлорамфеникол), стрептомицин.
Тест подходит для работы с сырым, пастеризованном, стерилизованном и предварительно восстановленным сухим молоком, и сывороткой. Введён в ГОСТ 32219-2013 «Молоко и молочные продукты. Иммуноферментные методы определения наличия антибиотиков».
Микропробирки извлекают из пенала и помещают в термостат с температурой (40 ± 3) °С. В каждую микропробирку пипеткой с наконечником вносят 0.2 см3 анализируемого продукта, перемешивают и выдерживают в термостате в течение 5 мин. В этот период реактив из микролунки смешивается с пробой молока. Если присутствуют антибиотики, то образуется комплекс из рецептора и анализируемого антибиотика.
Далее в микропробирки помещают индикаторные полоски хроматографической бумаги и выдерживают в термостате при температуре (40 ± 3) °С в течение 5 мин. После погружения в молоко, жидкость начинает мигрировать по тест-полоске и проходит через измерительные линии.
По истечении времени индикаторные полоски хроматографической бумаги извлекают из микропробирок и считывают результат. Если проба не содержит антибиотиков, линии окрасятся в насыщенный красный цвет, если антибиотики присутствуют- тестовая линия слабее контрольной.
