За отчетный период в отдел химических исследований поступило 38 проб, проведено 97 исследований. 
За отчетный период выявлено 5 положительных результатов:
В 2 пробах отрубей установлена общая токсичность;
в 3 пробах сена массовая доля протеина в сухом веществе – ниже нормы.
Эффективное использование протеина в рационах для коров
Те, кто содержат с/х животных, прекрасно знают о зависимости общего здоровья животных от сена хорошего качества. Качественное сено способствует руминации у таких жвачных животных, как коровы и козы, улучшает естественное кормовое поведение, предотвращает заболевания обмена веществ и сказывается положительно на качество и количество молока. У таких жвачных животных, как коровы и козы, потребление высококачественного сена имеет решающее значение. Качественное сено стимулирует слюноотделение, улучшает руминацию и пищеварение и обеспечивает животных всеми необходимыми питательными веществами. Кроме того, качественное сено повышает потребление корма, в то время как низкокачественный сенаж содержит молочную кислоту, снижающую аппетит у животных. К важнейшим составляющим сена относятся сырые белки, сырая клетчатка и сахар.
С кормом животное получает сырой протеин (СП). Это не только белок (или истинный протеин), но и небелковый азот, который представлен как более простыми органическими соединениями (например, пептиды, свободные аминокислоты, амиды, амины), так и неорганическими, в частности солями аммония. Часть истинного протеина доступна для рубцовой микрофлоры. Под действием протеолитических ферментов, вырабатываемых микроорганизмами, белки корма расщепляются до пептидов, аминокислот, а затем до аммиака. Все эти соединения наряду с поступившим с кормом небелковым азотом бактериальная микрофлора рубца использует для построения собственных клеток и роста.
В случае поступления в рубец избыточного количества расщепляемого протеина или при недостатке энергии микрофлора не успевает использовать значительное количество высвобождаемого аммиака. Избыток аммиака негативно влияет как на рубец, так и на организм в целом. С ростом концентрации аммиака повышается и pH в рубце, что негативно сказывается на жизнедеятельности микрофлоры. Избыток аммиака также может ухудшить усвоение магния, а поскольку основная его часть усваивается именно в рубце, это может повлечь за собой ухудшение усвояемости кальция, что напрямую связано с усвоением магния. Аммиак через стенку рубца всасывается в кровь. Так как аммиак токсичен для организма и его накопление может вызвать серьезное отравление, возникает необходимость в его обезвреживании. Скармливание избыточного количества расщепляемого в рубце протеина может привести как минимум к трем негативным последствиям: нарушению работы рубца, снижению усвояемости магния и, опосредованно, кальция, а также к увеличению затрат энергии. Уже это отрицательно сказывается на здоровье и продуктивности коров, особенно в начале лактации.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1317 проб материала, проведено 1325 исследований, выделено 3 положительных случая.

Гетерофиоз. Знали о таком заболевании?
Возбудителем является паразит - трематода Heterophyes heterophyes.
Греческий: heteros = другой; phyes = форма, образ.
Этот червь-трематода встречается в нескольких регионах Восточной Африки, Египта и Южной Европы. 30 миллионов людей инфицированы, помимо собак, кошек и некоторых других млекопитающих, питающихся рыбой.
Морфология. Этот гермафродитный червь с колючей поверхностью достигает размера 2×0,4 мм и паразитирует внутри тонкого кишечника, а также в слепых кишках. Характерным является вентрально расположенный бульбус, который окружает два половых отверстия, расположенных ниже брюшной присоски. Желтовато-коричневые яйца имеют крышечки, размеры 25–30 мм 15–17 мм и выделяются с фекалиями людей или животных.
Заражение происходит через употребление пищи зараженной метацеркариями. Паразит находится в сыром мясе рыбы (например, члены семейства Mugilidae).
Жизненный цикл аналогичен Клонорхису Clonorchis sinensis; однако используется второй промежуточный хозяин, в основном рыба из соленой воды. Заражение окончательных хозяев происходит из-за приема сырого мяса зараженной рыбы. В некоторых регионах Египта и Южной Европы заражено до 25% кошек и собак.
Симптомы заболевания. Заражение может привести к тяжелой диарее в течение короткого времени после инфицирования. В случаях проникновения червей в стенку кишечника они могут быть перемещены через кровоток в легкие, сердце, мозг и т. д., где они часто вызывают большие повреждения, которые могут привести к смерти людей или животных.
Инкубационный период от одной до трех недель.
Диагноз ставят на основании микроскопии яиц, после использования методов концентрирования (флотации).
Профилактика. Нужно избегать употребления в пищу сырого или недоваренного мяса рыбы или кормления домашних животных этим типом пищи.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 925 исследований. Обнаружены бактерии рода Bacillus в смывах на качество дезинфекции.

Контроль качества дезинфекции объектов,
подлежащих ветеринарному надзору.

Контроль качества проводят в три этапа.
1. Контроль подготовки объектов к дезинфекции (проверяют степень очистки поверхностей, их увлажненность, защиту электрооборудования и приборов, герметизацию помещений) осуществляет ветеринарный специалист, ответственный за проведение дезинфекции.
2. Контроль за соблюдением установленных режимов дезинфекции (выбор препарата и метода дезинфекции, концентрация, температура раствора, равномерность увлажнения поверхностей дезраствором, соблюдение параметров производительности используемых машин и аппаратов, качество распыла раствора) осуществляет ветеринарный специалист, ответственный за выполнение дезинфекции.
3. Бактериологический контроль качества дезинфекции осуществляют специалисты ветеринарных лабораторий периодически или в сроки, установленные с учетом эпизоотической обстановки, технологии производства, целей дезинфекции и других конкретных особенностей.
3.1. При бактериологическом контроле качества дезинфекции определяют наличие на поверхностях обеззараживаемых объектов жизнеспособных клеток санитарно-показательных микроорганизмов - бактерий группы кишечной палочки (Eschezichia, Citrobacter, Enterobacter), стафилококков (aureus, epidermatis, Saprophiticus), микобактерий или спорообразующих аэробов рода Bacillus.
3.2. Качество заключительной дезинфекции при сибирской язве, эмфизематозном карбункуле, брадзоте, злокачественном отеке, других споровых инфекциях и экзотических инфекциях - по наличию или отсутствию спорообразующих микроорганизмов рода Bacillus.
Для индикации спорообразующих аэробов перед центрифугированием смывы прогревают на водяной бане при 65 °С в течение 30 мин, затем центрифугируют. Из центрифугата каждой пробы делают посевы в одну пробирку с МПБ и на 2 чашки с МПА и дифференциально-диагностическую среду. Посевы инкубируют в термостате при 37 °С в течение 24 - 48 ч.
При наличии роста на МПА подсчитывают количество колоний, а также изучают их морфологию, проводят идентификацию.
При наличии роста на дифференциально-диагностической среде в крышку чашки Петри вносят 1 - 2 мл 25 %-ного водного раствора аммиака, чашку (крышкой вниз) выдерживают при 20 ± 2 °С в течение 1 мин, после чего визуально или под малым увеличением микроскопа проводят учет теста.
Под действием паров аммиака происходит порозовение колоний микроорганизмов, обладающих фосфатазной активностью.
Вас. anthracis фосфатазной активностью не обладает и его колонии остаются бесцветными.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 80 проб материала, проведено 99 исследований, выделено 2 положительных случая.

Изоспороз собак и кошек – паразитарное заболевание, вызываемое несколькими видами простейших рода Isospora. Заболевание сопровождается диареей, полиурией, обезвоживанием, истощением и интоксикацией организма животного. При сильной степени заражения бывает гибель животных. У собак возбудителями инвазии являются – Isospora bigemina и I. Canis, у кошек –Isospora bigemina, I. Felis, Собаки и кошки при изоспорозе являются окончательными (дефинитивными) хозяевами.  Плотоядные заражаются изоспорами преимущественно при употреблении инвазированных ооцистами кормов и воды. Новорожденные щенки заражаются от матери, облизывая соски и шерсть вокруг них. Заражение возможно через промежуточных хозяев – мышей, крыс, водоплавающих птиц. Способствует заражению антисанитарные, плохие условия содержания, наличие глистной инвазии, плохое кормление животных.
Симптомы и течение болезни. У собак и кошек клиническое проявление болезни возникает через 5-7 дней после заражения. Заболевание сопровождается частой дефекацией с выделением жидких каловых масс с большим количеством слизи и крови. Каловые массы нередко имеют красный или оранжевый цвет. При осмотре видимых слизистых оболочек регистрируют их бледность, часто они бывают желтушны. Аппетит очень изменчив, но чаще снижен. При тяжелом течении изоспороза собаки и кошки полностью отказываются от приема корма. Общее состояние угнетенное. Животные малоподвижны, предпочитают больше лежать. Усиливается полиурия. При этом моча становится темной с резким гнилостным запахом. Развивается истощение, исхудание. Стенка живота при пальпации напряжена и болезненна. Кожа теряет эластичность. Шерстный покров теряет блеск, становится взъерошенным. При неправильном лечении и скудном рационе кормления болезнь протекает тяжелее и заканчивается гибелью животного. Температура тела, как правило, повышается на 0,5-2 градуса выше нормы.
Диагноз на изоспороз ставят комплексно с учетом анамнеза, характерных клинических признаков. Прижизненно диагноз подтверждается обнаружением ооцист в фекальных массах по методу Фюллеборна или Дарлинга. Посмертно – по результатам вскрытия и лабораторного исследования соскобов со слизистой оболочки тонкой кишки на обнаружение ооцист.
Лечение заболевания должно быть комплексным и начинаться с диетотерапии.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 359 исследований.
От качества и безопасности корма зависит здоровье животных. Употребление животными кормов, обсемененных микроорганизмами, провоцирует различные заболевания желудочно-кишечного тракта, поражает иммунную систему и может привести к летальному исходу.
При нарушении технологического процесса приготовления и условий хранения в кормах могут развиваться различные микроорганизмы, такие как кишечная палочка (Escherichia coli), сальмонелла (Salmonella), анаэробные микроорганизмы клостридии (Clostridium), энтерококки (Enterococcus), бактерии рода Proteus и др. Поэтому важно регулярно осуществлять микробиологический контроль кормов.
При микробиологическом исследовании различных видов кормов, определяют следующие показатели:
- корма растительного происхождения исследуются на отсутствие сальмонелл, энтеропатогенных типов кишечной палочки, анаэробов, ботулотоксина (токсин);
- корма животного происхождения исследуются не только на вышеперечисленные показатели, но и на определение общего количествамикробных клеток в 1 г корма, а также на наличие энтерококков и бактерий рода Proteus.

При обнаружении сальмонелл, энтеропатогенных типов кишечной палочки и протея корм запрещается использовать животным без дополнительной обработки. Вторичную стерилизацию проводят в соответствии с технологическими режимами производства этих кормов или же этот корм подвергается проварке при температуре не ниже 100 градусов в течение 1 часа и дальнейшей обработке, согласно установленному технологическому режиму приготовления кормов к скармливанию.При выявлении в кормах анаэробных микроорганизмов и их токсинов такие корма запрещается использовать животным без дополнительной термической обработки, которую проводят при температуре 120-130 градусов в течение 2 часов. После стерилизации корма подвергают бактериологическому исследованию с постановкой биологической пробы на наличие анаэробов и их токсинов и при получении отрицательных результатов они могут быть использованы на кормовые цели. При положительных повторных результатах исследования эти корма уничтожают.Корма животного происхождения, производство которых связано с тепловой обработкой, имеющие бактериальную обсемененность свыше 500 тыс. микробных клеток в 1г., при отсутствии патогенных микроорганизмов, подлежат повторной стерилизации согласно технологическим инструкциям или могут быть направлены для производства гранулированных кормов с термической обработкой, а также проварке.
Оценка санитарного состояния кормов включает в себя органолептический, микробиологический. Органолептическое исследование включает в себя определение цвета и запаха.
Во избежание обсемененности кормов различными микроорганизмами необходимо соблюдать ветеринарно-санитарные правила производства, обработки, хранения корма, в том числе при транспортировке.
Реализация и использование некачественных кормов для сельскохозяйственных животных влечет серьезные риски распространения инфекционных заболеваний и производство некачественной продукции животноводства.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 17 проб, проведено 35 исследований.

Важность каротина в рационе животных

Заготовка силоса, сена ещё не настолько совершена, чтобы коровы зимой получали с кормом достаточное количество β-каротина. Витамин А (или концентраты, содержащие витамин А) в минеральных кормах не может компенсировать отсутствие β-каротина. Витамин А особым образом отвечает за нормальное функционирование яичников, тогда как β-каротин отвечает за созревание фолликул и образование прогестерона в жёлтом теле.
В связи с дефицитом в организме β-каротина, у коров наблюдаются репродуктивные нарушения, такие как ослабление признаков охоты, сокращение периода охоты, замедление развития жёлтого тела, фолликулярные кисты, гнойные воспаления влагалища и матки, ухудшение оплодотворяемости. У коров тормозится процесс овуляции, а также сбиваются симптомы охоты, поэтому осеменение коров зачастую не приводит к оплодотворению.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 504 проб материала, проведено 513 исследований, положительных случаев не выявлено.

Лабораторная диагностика листериоза.

Лабораторная диагностика листериоза основывается, преимущественно, на бактериологических и серологических методах исследования.
Бактериологическое исследование состоит в микроскопии окрашенных по Граму мазков-отпечатков из пораженных органов и головного мозга, выделении культуры возбудителя посевом суспензии из внутренних органов и головного мозга на питательные среды и заражении лабораторных животных, идентификации выделенной культуры и дифференциации её от других микробов, изучении вирулентности культуры путём заражения лабораторных животных.
Listeria monocytogenes - это маленькая палочковидная бактерия длиной 0,5 - 2 мкм и шириной 0,5 мкм. В зависимости от условий культивирования она способна принимать кокковидную или овоидвую форму, в культурах, выращенных при комнатной температуре, преобладали палочковидные формы, а в культурах, выращенных при температуре 37°С – кокковидные и овоиднне формы. В старых культурах также преобладали кокковидные формы листерий.
Это положительно окрашивающийся по Граму возбудитель, неспорообразующий, неустойчивый к кислотам. Большинство исследователей отмечали отсутствие видимой капсулы у листерий. Показательной особенностью листерий является четко выраженная подвижность клетки. Специфика проявления подвижности у листерий (дифференциальный признак от рожистых бактерий) связана с наличием жгутиков. При температуре 22°С листерии имели 1-8 жгутиков, при температуре 37°С основная масса клеток лишена их и лишь 1-15% имели 1-2 жгутика. Соответственно, все культуры изученных штаммов обладали активной подвижностью при температуре 22°С, при температуре 37°С она отсутствовала или была слабовыраженной.
Листерии растут на обычных питательных средах с довольно широким диапазоном рН (5,6-9,0). Наиболее благоприятными следует признать среды с рН 7,2-7,4, содержащие глицерин, глюкозу, сыворотку крови, а также печёночные среды. Лучшей питательной средой является мясопептонный печеночный агар и бульон с добавлением 0,5% глюкозы и 2% глицерина. На МПА в первые сутки роста наблюдаются мелкие, слизистые, круглые, прозрачные при проходящем или молочно-белые в падающем свете, выпуклые колонии.
На МПБ листерии вначале вызывают равномерное помутнение среды; при встряхивании пробирки заметны муаровые волны, более грубые, чем при росте рожистых бактерий. На 5-7 день бульон просветляется и на дне образуется слизистый осадок, который при встряхивании поднимается в виде косички. Пленки и пристеночного кольца не образуется.
При посеве уколом на МПЖ листерии дают медленный рост в виде узловатой нити или полоски с небольшими отростками. Разжижение желатины не наступает. Свежевыделенные культуры листерии продуцируют растворимый, фильтрующийся b-гемолизин, способный разрушать эритроциты человека, лошади, крупного рогатого скота, овец, кроликов.
Для дифференциации возбудителя листериоза от бактерий рожи свиней и определения вирулентности выделенных культур рекомендована конъюнктивальная проба, которая заключается в нанесении испытуемой культуры на конъюнктиву глаза морской свинки или кролика. Специфичным для листерий является развитие (через 2-3 дня) гнойного конъюнктивита, который переходит в кератит; нередко происходят генерализация инфекций и животное погибает. На ценность и высокую специфичность конъюнктивальной пробы указывают многие исследователи.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1091 исследование.

Блютанг - вирусная болезнь овец, коз, крупного рогатого скота, верблюдов, буйволов, оленей и других животных, относящихся к семействам полорогих, вилорогих, кабарговых, оленевых, верблюдовых.  Возбудителем блютанга является РНК-содержащий вирус семейства Reoviridae, рода Orbivirus, в отношении которого выявлено 27 серотипов возбудителя.
Инкубационный период болезни составляет от 5 до 30 календарных дней. Источниками возбудителя являются больные восприимчивые животные.
У восприимчивых животных, за исключением овец, болезнь протекает бессимптомно, при этом выявляемость генома вируса у крупного рогатого скота сохраняется до 120 календарных дней после инфицирования, у других восприимчивых животных - до 60 календарных дней после инфицирования. У овец блютанг протекает остро, подостро или бессимптомно.
Острое и подострое течение блютанга у овец характеризуется лихорадкой, геморрагическим диатезом, воспалительно-некротическими поражениями слизистых оболочек рта, дыхательных путей и желудочно-кишечного тракта, эпителия венчика и основы кожи копыт, отеками межчелюстного пространства, синюшностью языка и его выпадением из ротовой полости, точечными кровоизлияниями на конъюнктиве и слизистой оболочке носовой полости с обильными носовыми истечениями, подсыхающими в виде корок, мышечной дегенерацией, истощением и выпадением шерсти. Отмечаются аборты или рождение слабого, нежизнеспособного потомства. При бессимптомном течении болезни у овец отмечаются снижение продуктивности и дерматиты.
Передача вируса.  Серотипы 25, 26 и 27 возбудителя передаются прямым путем от больного восприимчивого животного к восприимчивому животному без участия кровососущих насекомых. Передача возбудителя других серотипов осуществляется механическим (при укусах переносчиков возбудителя), ятрогенным, внутриутробным и половым (в том числе при искусственном осеменении) путями. Факторами передачи возбудителя являются хирургические инструменты и иглы, сперма, яйцеклетки, эмбрионы восприимчивых животных, контаминированные возбудителем, а также мокрецы рода Culicoides и (или) другие кровососущие насекомые, являющиеся переносчиками возбудителя.
Проведение исследований. От восприимчивых животных должны отбираться пробы крови в объеме 10 мл без антикоагулянта или с фактором свертывания крови для серологических исследований и пробы крови в объеме 10 мл с антикоагулянтом. Пробы биологического материала допускается хранить не более 10 календарных дней со дня отбора при температуре от 0 до 4°С, не допуская замораживания.
От трупов восприимчивых животных, абортированных плодов должны отбираться фрагменты (размером 3x3x3 см) селезенки, тканей плода, лимфатических узлов (нижнечелюстные, предлопаточные, мезентериальные - целиком). В случае доставки в лабораторию в течение 12 часов с момента отбора пробы патологического материала допускается хранить при температуре от 0 до 4°С. В иных случаях пробы патологического материала должны быть доставлены в лабораторию в замороженном виде.
Диагноз на блютанг считается установленным, если получен один из следующих результатов: выделен и идентифицирован возбудитель; выявлен антиген возбудителя или его генетический материал.
Лабораторные исследования в целях установления диагноза на блютанг должны проводиться с использованием следующих методов лабораторных исследований: обратно-транскриптазная полимеразная цепная реакция в режиме реального времени; вирусовыделение в культуре клеток, на куриных эмбрионах или на не иммунных к блютангу овцах. 
Для установления серотипа возбудителя должен применяться один из следующих методов: конкурентный иммуноферментный твердофазный анализ с использованием моноклональных антител, специфичных к различным серотипам возбудителя; реакция вируснейтрализации в культуре клеток; нуклеотидное секвенирование.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 12 проб, проведено 43 исследования.
Содержание свинца и кадмия в молоке и молочных продуктах

Пути поступления свинца и кадмия одинаковые. Содержание кадмия и свинца в молоке существенно отличается у коров, пасущихся на загрязненных и незагрязненных почвах. В пастбищных травах, произрастающих в 2–2,5 км от источника загрязнения, наблюдается наименьшее содержание свинца и кадмия в летние месяцы, тогда как ранней весной и поздней осенью их количество значительно повышается. То есть наибольшую опасность для животных представляет весенняя отрастающая трава. Также высокие концентрации свинца в воздухе могут вызвать прямое загрязнение молочной продукции. Определяя количество свинца в воздухе до и после сушки молока, исследователи обнаружили, что 50 % свинца, содержащегося в воздухе, перешло в сухое молоко. Еще одним источником поступления свинца в молоко и молочные продукты являются технологическое оборудование и тара. Количество металла увеличивается с повышением температуры хранения и временем обработки молока.
Свинец является токсичным элементом; свыше 90 % свинца в организме человека фиксируется в костях. Свинец способен проникать сквозь плазму в систему кровообращения эмбриона, а в дозах, превышающих ПДК, вызывает хроническое отравление с разнообразными проявлениями: поражает центральную и периферическую нервную систему, костный мозг, кровь и сосуды, генетический аппарат клетки.

В отделе химических исследований свинец и кадмий в молоке и продуктах его переработки определяют по ГОСТ 30178-96 Сырье и продукты пищевые. Атомно-абсорбционный метод определения токсичных элементов.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 238 проб материала, проведено 247 исследований, 8 положительных случаев не выделено.

Трихомоноз крупного рогатого скота — инвазионное заболевание, возбудителем которого является — Trichomonas foetus.  Вызывает у животных аборты на ранней стадии беременности (в первые 3-4мес.), вагиниты, метриты, у быков баланопоститы и импотенцию. Трихомонада Trichomonas foetus имеет веретенообразную, грушевидную, овальную или шаровидную форму, локализуются в слизистых оболочках половых органов (влагалища, матки, препуция, полового члена), в придаточных половых железах.
Заражение происходит во время естественного спаривания и искусственного осеменения коров спермой больных быков.  Они размножаются простым делением, а также почкованием и множественным делением. В организме животных паразиты живут несколько лет. Под действием неблагоприятных условий внешней среды они покрываются плотной оболочкой и превращаются в цисты.  Болеет скот случного возраста, может также заразиться молодняк. Источник инвазии — больные животные и паразитоносители (преимущественно быки-производители). Последние являются главным фактором распространения инвазии, поскольку паразитоносительство без проявления клинических признаков у них может длиться много лет. В отдельных случаях трихомонады распространяются кастратами и быками-производителями, которые заразились от больных коров. Возбудитель передается механически через предметы ухода за животными (полотенца, щетки) и инструменты для искусственного осеменения. Источником инвазии могут стать выделения из половых органов больных животных, которыми загрязняются предметы окружающей среды. Особую роль в распространении болезни играет инвазированная сперма, в которой при глубоком замораживании возбудители сохраняются годами.
Попав в слизистые оболочки половых органов (как самок, так и самцов), паразиты быстро размножаются и уже через 1-3 суток служат причиной развития воспалительных процессов. Позже они распространяются на слизистую оболочку матки и плод (во время беременности). Физико-химические условия в пораженных половых органах изменяются, что приводит к его гибели. В дальнейшем плод в матке мацерируется и рассасывается или наступает аборт (чаще на 1 — 3-м месяце стельности). В половых органах коров усугубляются воспалительные процессы, увеличивается количество патогенных микроорганизмов, изменяется физико-химическая среда, которая отрицательно влияет на жизнедеятельность сперматозоидов и приводит к яловости.
У быков трихомонады вызывают воспаление слизистой оболочки препуция и мочевого канала, а в случае их проникновения в семенники и придаточные половые железы нарушается сперматогенез и развивается импотенция.  Диагноз трихомоноз устанавливают комплексно, учитывая эпизоотологические данные, клинические признаки, и обязательно подтверждают выявлением паразитов путем микроскопического исследования (методом раздавленной капли) выделений из влагалища, околоплодной жидкости, соскобов плаценты, содержимого полостей плода, смывов с препуция, секрета придаточных желез, спермы. Если при микроскопии трихомонад не обнаружили, то применяют метод культивирования на питательных средах.  Трихомоноз следует дифференцировать от бруцеллеза, кампилобактериоза.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 250 исследований.
Ящур является опасным вирусным инфекционным заболеванием, при котором поражаются слизистые покровы кожи. Болезнь передается человеку от больных животных. Заражение человека может произойти, главным образом, при употреблении сырого молока, молочных продуктов, мяса, реже - при непосредственном контакте с больными животными и при контакте с инфицированными предметами (подстилка, кормушка). Возможны случаи воздушно-капельного заражения.
Данное заболевание имеет широкое распространение. Вирус обладает высокой устойчивостью во внешней среде, долгое время сохраняет активность в условиях холода и высушенном состоянии.
В сырье и продуктах, полученных от больных животных, вирус остается жизнеспособным от нескольких суток до месяца и более. В условиях холода вирус сохраняется в сливках - до 4 дней, молоке - до 12 дней, масле - до 45 дней, субпродуктах - до 3 месяцев. Вирус ящура устойчив во внешней среде: на шерсти животных он сохраняется до четырех недель, на одежде - до 3,5 недели.
Источник возбудителя ящура - больные животные, в том числе находящиеся в инкубационном периоде заболевания, а также вирусоносители (более 400 дней). Такие животные выделяют вирус во внешнюю среду с молоком, слюной, мочой и калом. В результате этого происходит инфицирование помещений, выгульных дворов, различных предметов и инвентаря, пастбищ, водоисточников, кормов, транспортных средств, предприятий по заготовке и переработке животноводческой продукции и других объектов. Заражение животных происходит преимущественно через слизистые оболочки ротовой полости при поедании кормов и питья, облизывании различных инфицированных предметов. Большое значение в распространении вируса ящура имеет человек, так как он чаще всего соприкасается с животными и может перемещаться на большие расстояния. Механически переносится вирус ящура с транспортом, птицей и другими видами невосприимчивых животных (в том числе и дикими), а также насекомыми и клеща.
Наиболее характерные признаки ящура выражены у взрослого крупного рогатого скота: повышение температуры тела животного до 41 °С и выше, покраснение слизистой оболочки ротовой полости и конъюнктивы, обильное слюноотделение. Животные очень осторожно пережевывают корм, глотание болезненно. У них возникает жажда, появляется хромота. Через 3 дня заболевания температура тела снижается и появляется сыпь. Животные хромают, стоят, выгнув спину, подобрав ноги под живот. Вымя отекает, становится болезненным, развиваются вторичные маститы, обусловленные обсеменением стрептококками, стафилококками. На конечностях появляются панариции и флегмоны, возможны глубокие поражения суставов и сухожилий.
Наиболее восприимчивы к ящуру крупный рогатый скот и свиньи; овцы, козы и дикие копытные животные - менее чувствительны. Молодые животные более восприимчивы и болезнь может протекать тяжелее, чем у взрослых.
В лаборатории проводятся исследования сыворотки крови по выявлению антител к неструктурным белкам вируса ящура методом ИФА.