Влияние хлоридов на свойства воды

Хлориды - соединения хлора с другими элементами. Хлориды обладают высокой растворимостью и поэтому присутствуют во всех природных водах в основном в виде кальциевых, натриевых и магниевых солей. Их попаданию в воду способствует вымывание поваренной соли и прочих хлористых соединений из пластов пород вулканического происхождения. Огромное число хлоридов содержится в морях и океанах. Посредством атмосферного круговорота воды, осадков и с подземными течениями соли попадают во все остальные водоёмы. Однако немало хлоридов поступает в воду с промышленными и хозяйственно-бытовыми стоками. Повышенная концентрация хлоридов даёт воде солёный вкус и делает её непригодной для питья, хозяйственных нужд и использования в технических целях.

 

 

При попадании в организм человека воды, содержащей избыточное количество хлоридов:

– раздражаются слизистые оболочки, глаза, кожные покровы, дыхательные пути;

– проявляется негативное воздействие на секреторную деятельность желудка;

– ухудшается пищеварение;

– нарушается водно-солевой баланс;

– возникает вероятность развития заболеваний системы кровообращения;

– появляется склонность к возникновению новообразований мочеполовых органов, органов пищеварения, желудка, пищевода;

– избыточное поступление в организм хлористого натрия увеличивает частоту сердечно сосудистых заболеваний;

– появляется склонность к гипертензивным состояниям, повышенной реактивности сосудов;

– возникает вероятность желче- и мочекаменных заболеваний.

 

Хлориды в воде наносят вред домашним и сельскохозяйственным животным, влияют на рост и развитие растений.

Агрессивное воздействие солей разрушает бытовые и промышленные приборы, в разы увеличивая интенсивность коррозии. Такая вода имеет повышенную жесткость, соли оседает на нагревательных приборах, образуя накипь, снижая теплопроводность устройств и утвари, и приводят к поломкам оборудования.

На промышленные и бытовые коммуникации влияние хлоридов в воде оказывается в виде:

– коррозии и появлении темных пятен на поверхностях труб и нержавеющих стальных раковинах и агрегатах;

– из-за образующегося осадка снижается теплоотдача батарей и увеличивается расход энергии на подогрев воды;

– точечной коррозии труб и котлов отопления, приводя к разрушению стенок;

– уменьшения межремонтных периодов, вызванных аварийными ситуациями.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1221 проба материала, проведено 1601 исследование, получено 40 положительных случаев.
Аэромоноз – это бактериальная инфекция, которая также известна под названием геморрагическая септицемия или «краснуха».Она быстро передаётся от одной особи к другой и прогрессирует с большой скоростью, поэтому важно вовремя определить болезнь и начать лечение, чтобы не допустить летального исхода и снизить количество возможных осложнений.Возбудителем заболевания является бактерия аэромонаспунктата. Наиболее подвержены данному недугу такие рыбы, как барбусы, данио, карпы, плотва и.т.д. Диагноз: ставится на основании эпизоотологических, клинических и патологоанатомических данных и результатов бактериологического исследования (выделения вирулентной культуры возбудителя, биопроба на здоровых карпах).
Причинами аэромоноза являются:
1. В открытом водоёме краснуха возникает в результате большого количества рыб. Из-за того, что пруд не содержится в надлежащей чистоте или же «бактерии», не успевают перерабатывать продукты жизнедеятельности его обитателей, вода становится грязной;
2. В аквариумах в большинстве случаев заражение происходит из-за больных рыб. При этом другие особи даже могут не контактировать с больным животным – достаточно находиться с ним в одной воде. Ведь источником бактерии служат выделения этих рыб или же их останки (например, чешуя);
3. Если в аквариуме не наблюдается больных рыб, то заражение может произойти из-за корма, грунта или почвы в том случае, если они привезены с естественного водоёма.
Аэромоноз – крайне опасное заболевание, которое очень трудно поддаётся лечению. Поэтому зачастую спасти можно только внешне здоровых рыб, у которых начались едва уловимые изменения в поведении. В том случае, если у животного наблюдаются симптомы (а особенно, появление красных пятен и ерошение чешуи), то от такой рыбы лучше избавиться, поскольку лечение будет неэффективно. Лечение рекомендуется совершать в общем аквариуме. Такие меры помогут вылечить больное животное и провести профилактику для здоровых рыб. Терапию проводят медикаментозно.
Для профилактики аэромоноза не существует особых правил. Все рекомендации, которых следует придерживаться, основаны на соблюдении санитарно – гигиенических норм в месте обитания рыб:

1. Частая смена воды и тщательная обработка предметов интерьера;
2. Контроль за происхождением почвы, грунта и пищи;
3. Внимательное наблюдение за поведением рыб;
4. Хорошая аэрация.

Важно понимать, что большая часть заболеваний у рыб возникает в результате плохих условий их нахождения и недостаточного контроля со стороны хозяина. Поэтому, чтобы сохранить обитателей водоемов здоровыми, а сами места обитания рыб красивыми, нужно тщательно за ним ухаживать и не пропускать первые подозрительные сигналы.

За отчетный период 05.06.2020-11.06.2020г. в отделе ВСЭ и диагностики проведено  исследований:492 исследования. В ходе исследований было выявлено 13 положительных случаев. В  6 пробах сыворотки крови выявлены антитела к цирковирусу свиней 2 типа.
Цирковирусная инфекция свиней (цирковироз свиней, синдром послеотъемногомультисистемного истощения, СПМИ) – инфекционная болезнь свиней, главным образом поросят-отъёмышей, вызываемая цирковирусом и характеризующаяся отставанием в росте и развитии, поражением кожи, развитием респираторного синдрома.
Возбудитель. Возбудитель – ДНК-содержащий вирус рода Circovirus из семейства Circoviridae (данное семейство состоит из одного рода Circovirus). Цирковирус  свиней, вызывающий у поросят СПМИ, обозначают как ЦВС типа 2, а цирковироз свиней, выделенный в 1974г. как нецитопатогенныйконтаминант перевиваемой культуры клеток почек поросят, как ЦВС типа 1. Геном вируса представлен односпиральной кольцевой молекулой ДНК. Вирус культивируется в культуре тканей свиней, а также клетках Vero, не вызывая ЦПД. Возбудитель цирковироза продуцирует образование вируснейтрализующих антител, обладает иммунодепрессивным действием. Он поражает иммунокомпетентные органы и клетки организма, размножаясь в них. Цирковирусыустойчивы к растворителям липидов (эфиру, хлороформу, этанолу и др.); к действию высоких температур – стабильны при 60С в течение 30минут; к различным детергентам и дезинфектантам.
Эпизоотологические данные. Болезнь распространена в странах с развитым свиноводством (Германии, Канаде, США, Ирландии, Франции, Испании). В настоящее время антитела к ЦВС-2 обнаружены у свиней практически во всех хозяйствах, а число серопозитивных животных может достигать 100%. Чаще заболевают поросята 6-14-недельного возраста, реже месячного и 4-6-месячного возраста. Источник возбудителя инфекции – больные или латентно инфицированные свиньи различных возрастных групп, выделяющие вирус с фекалиями, мочой, слюной, спермой, истечениями из носа и глаз. Основной путь передачи инфекции – респираторный, но не исключена вертикальная передача вируса от свиноматки плодам. Активизирует инфекционный процесс иммунизация поросят (особенно живыми вакцинами), а также ассоциированная инфекция. Цирковирусная инфекция  не поражает животных, находящихся в отдельных боксах. Заболеваемость ЦВС составляет 5-20%, в отдельных случаях 50-70%. Летальность- 70-80%.
Патогенез. Попадая в организм животного, вирус размножается, в основном, в клетках лимфоидной ткани (тимусе, селезенке, л/узлах), а также слизистой оболочке носа, легких; тонком кишечнике, печени, почках, поджелудочной железе и ассоциируется с макрофагами/моноцитами, гистиоцитами, тимусными  макрофагами. Это приводит  к иммунодепрессии, присоединению вторичной инфекции и гибели поросят.
Клинические признаки. Инкубационный период составляет 3-4 недели. Основные клинические признаки – отставание в росте и истощение. Также наблюдают угнетение, одышку, диарею, цианоз ушей, анемичность и желтушность кожи, дерматит, иногда отмечают атаксию, парез конечностей, врожденный тремор, внезапную гибель поросят. В некоторых случаях болезнь протекает латентно.
Патологоанатомические изменения. Трупы истощены, кожа белого или желтого цвета. Л/узлы увеличены в 3-5 раз, на разрезе белые и сочные. Легкие плотные, с участками красного цвета, мясистой консистенции. Почки увеличены, серого цвета, с кровоизлияниями в корковом слое, есть признаки нефрита. Печень с признаками гепатита, имеет пестрый или мозаичный вид. Селезенка несколько увеличена, мясистой консистенции. В желудке и кишечнике бывают язвы. При гистологическом исследовании отмечают увеличение количества макрофагов и уменьшение лимфоцитов в лимфоидных органах, а также интерстициальную пневмонию. В макрофагах воспалительных очагов обнаруживают округлой формы базофильные тельца-включения, представляюшие собой скопления ЦВС-2.
Диагноз. Предварительный диагноз ставят комплексно, окончательный устанавливают на основании выделения вируса в первичных культурах клеток свиной почки. Для уточнения диагноза на ЦВС проводят идентификацию вируса, выявляют специфические антитела в РН, непрямойиммунофлюоресценции, ИФА.  Для обнаружения ЦВС-2 используют тест-систему ЦВС  для определения цирковируса свиней. Необходимо СПМИ дифференцировать от репродуктивно-респираторного синдрома, гемофилезной плевропневмонии, пневмоний, вызванных микоплазмами, хламидиями, сальмонеллами, стрептококками, болезни Ауески, лептоспироза.
Лечение. За рубежом разрабатывается сыворотка крови взрослых свиней, содержащая антитела к ЦВС-2 для лечения и профилактики СПМИ. По предварительным данным, её введение 3-4 месячным поросятам снижает риск заражения цирковирусом в несколько раз, а применение сыворотки в начальной стадии заболевания способствует выздоровлению до 50% иммунизированных животных.
Иммунитет изучен недостаточно, у свиней - реконвалесцентов образуются вируснейтрализующие антитела.
Профилактика и меры борьбы. Основные меры профилактики заболевания  направлены на недопущение заноса возбудителя инфекции из неблагополучных хозяйств, обеспечение нормального физиологического статуса и высокой резистентности животных, осуществлении строгого контроля за наличием микотоксинов в кормах. В случае установления в хозяйстве цирковирусной инфекции рекомендуется замена трехфазной системы выращивания свиней на двухфазную. При этом поросят после отъема оставляют в станках до следующего опороса, а в 3-4- месячном возрасте переводят в помещение для откорма. В небольших хозяйствах следует проводить туровые опоросы, разрыв между турами должен быть не менее 3 месяцев. Не рекомендуется вакцинировать поросят 8-13-недельного возраста какими-либо вакцинами (особенно живыми). При массовой заболеваемости поросят и их гибели необходимо применять сыворотку реконвалесцентов (свиней откорма). Можно использовать тканевую инактивированную вакцину, изготовленную из «местного» материала. Однако, учитывая высокую устойчивость вируса  цирковироза к инактивации, необходимо строго контролировать технологический процесс во избежание перезаражения поголовья свиней некачественным препаратом.

За отчетный период  специалистами серологического отдела ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория» проведено исследований на:
- бруцеллёз крупного рогатого скота – 1511 проб;
- бруцеллёз мелкого рогатого скота – 856 проб;
- бруцеллёз свиней – 99 проб;
- хламидиоз свиней – 106 проб;
- хламидиоз крупного рогатого скота – 1 проба;
- листериоз мелкого рогатого скота – 20 проб;
- бруцеллёз лошадей – 59 проб;
- сап лошадей – 75 проб;
- случная болезнь лошадей – 25 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 25 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 199 проб, положительных – 11 проб;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 163 пробы, положительных нет;
- лептоспироз лошадей – 174 пробы, положительных – 29 проб;
- лептоспироз свиней – 151 проба, положительных нет;
- лептоспироз лошадей (моча) – 2 пробы, возбудителей лептоспироза не обнаружено;
- лейкоз крупного рогатого скота – 564 пробы, положительных – 79 проб.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 352 проб материала, проведено 650 исследований, получено 3 положительных случая.
В поступившей в отдел бактериологии и паразитологии для исследования расплод были обнаружены клещи варроа (Varraoajacobsoni).
Varroa (лат.) - род паразитических клещей, использующих в качестве хозяев медоносных пчёл и их расплод, вызывая варроатоз. Род назван в честь Марка Теренция Варрона, римского учёного и практического пчеловода. Один из двух родов (вместе с Euvarroa) в составе семейства Varroidae. Эта болезнь представляет собой одну из наиболее актуальных проблем пчеловодства и наносит ему колоссальный ущерб.
В летний период клещ распространяется от больных пчел к здоровым через: блуждающих пчел; пчел-воровок; при кочевках пасек; семьи, стоящие на перелете пчел; с роями; при купле-продаже пчел и маток; при подселении семей зараженным расплодом; при контакте пчел на цветках растений; при всех работах по перестановке сот из одной семьи в другую; с других насекомых (шмелей, ос); при открытом хранении вырезанного трутневого расплода.
Варроатоз распространяется со скоростью 6-11 км в течение 3 месяцев, что зависит от степени насыщенности региона пчелами. В первую очередь, поражению подвержены отрутневшие семьи. Распространение и рост количества вредителя существенно выше в районах с жарким климатом.
Для борьбы с клещом следует выполнять целый комплекс мероприятий, который включает в себя общеорганизационные, специальные пчеловодческие и ветеринарные меры. Необходимо соблюдать условия содержания, кормления, разведения пчел, а также применять зоотехнические приемы борьбы с варроа и систематически проводить противоакарицидные обработки. Борьба с вредителем должна продолжаться ежегодно и комплексно. Очень важно снизить количество клещей после последней откачки меда. Так пчелы, которые выводятся и будут зимовать, смогут жить при минимальном уровне заражения. Вместе с тем, уменьшается и степень стресса при закармливании пчел. Следующая обработка будет максимально эффективна после окончания выведения расплода (в зимнее время). Весной же для уменьшения количества вредителей применяется метод вырезания трутневого расплода.
Чтобы снизить вред, наносимый клещом варроа, следует проводить различные профилактические мероприятия:
1 Приобретенные семьи и пойманные рои требуется хотя бы единожды обработать (например, рой – перицином, а остальное – муравьиной кислотой);
2 На основании числа паразитов на поддоне принимается решение о необходимости проведения дальнейшей обработки;
3 Следует проводить регулярные обследования поддона и трутневого расплода на наличие паразитов;
4 Обработку против варроатоза крайне важно согласовывать с соседними пчеловодческими фермами для получения хорошего результата и во избежание повторного заражения.
Методы борьбы применять регулярно, не пропускать периоды, наиболее подходящие для их осуществления, а также обязательна периодическая чистка, дезинфекция и своевременно перетапливать соты. Соблюдение обычных правил гигиены позволит уберечься от смешанных заболеваний.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено  исследований: 662 исследования. В ходе исследований было выявлено 9 положительных случаев.    
Микробиологический анализ питьевой воды нужен для того, чтобы проверить, есть ли в воде опасные микроорганизмы. В воде могут находиться яйца паразитов, бактерии и вирусы, вызывающие различные инфекционные заболевания. Они попадают в воду либо естественным путем, из природных источников (из других источников воды, в том числе подземных, из почвы, от случайно оказавшихся в воде больных животных, их трупов или продуктов жизнедеятельности и т.д.), либо в результате деятельности человека (например, после неправильной утилизации бытовых отходов или испражнений).
Бактериологическое исследование воды поможет выявить болезнетворных микробов и правильно подобрать способ очистки, чтобы избавиться от них. Бактериологический анализ воды часто проводят в рамках инженерно-экологических изыскания для строительства.
Патогенные микроорганизмы наносят непосредственный вред человеку, так как являются возбудителями многих заболеваний. Бактериологический анализ в лабораторных условиях определит виды вирусов, бактерий или гельминтов и в каком процентном соотношении они присутствуют в воде. Он проводится в испытательных центрах, где можно оценить качество не только природной, но и при необходимости водопроводной воды. Вовремя обнаруженные превышения установленных норм можно нейтрализовать и предотвратить дальнейшее распространение патогенной среды с помощью современных методов обеззараживания.
Микробиологические анализы сточной воды и жидкости, подаваемой через системы водоснабжения или получаемой из колодцев, скважин, необходимы для выявления целого комплекса потенциально опасных веществ. К числу наиболее часто встречающихся примесей можно отнести:
- колиформные бактерии (обычные и термотолерантные);
- споры сульфитредуцирующей бактериальной флоры;
- общую микробную массу.

Своевременное проведение лабораторных исследований жидкостей, используемых для питья, гигиенических или иных целей, позволяет вовремя выявить источники бактериологической опасности, а также дает возможность обеспечить оптимальную скорость устранения подобных нарушений. Достоверная информация помогает сделать жизнь человека безопаснее.

 

Медоносные пчелы обеспечивают опыление 80–95 % цветков энтомофильных растений. На долю диких насекомых-опылителей приходится от 5 до 20 % этой работы. Благодаря пчелам урожайность гречихи, подсолнечника, люцерны, клевера, садовых, овощных, бахчевых и других культур повышается на 50–70 %. Деятельность пчел распространяется и на кормовые культуры, что является основанием говорить о связи пчеловодства с кормопроизводством и, следовательно, животноводством.

В мире спрос на медоносных пчел как опылителей огромен. Однако сейчас вызывает беспокойство их дальнейшая судьба из-за массовой гибели, которой дали определение «коллапс пчелиных семей». Многие пчеловоды впервые столкнулись с таким явлением, как полное отсутствие мертвых пчел в ульях и вокруг них. Таинственное их исчезновение отмечается, как правило, ближе к осени. Пчелиная семья неожиданно пропадает из улья, оставляя медовые запасы, матку и даже невыведенное потомство, которые обречены на гибель.

Имеющиеся сведения о причинах гибели пчел разрозненны и противоречивы: клещ варроа, нозематоз, пестициды, генетически модифицированные культуры и др.

 Учеными были высказаны предположения, что причиной массовой гибели пчел могло стать применение фермерами инсектицидов из группы неоникотиноидов: имидаклоприда, клотианидина, тиаметоксама (относятся к 1-му классу опасности для пчел). Предполагается, что у пчел, потребляющих пыльцу или пергу с остатками перечисленных препаратов, нарушается способность к обучению и запоминанию. В результате они теряют ориентацию в полете, не могут вернуться в улей и гибнут вдали от него. Ученые европейских стран, изучая воздействие пестицидов на здоровье пчел, считают, что одной из главных причин массовой гибели пчел и загрязнения среды их обитания является широкомасштабное применение химических препаратов в сельском хозяйстве. Если раньше эти препараты убивали насекомых «наповал», то теперь они накапливаются в почве и растениях, попадают в ульи в малых дозах вместе с нектаром и пыльцой, снижают естественный иммунитет пчел к заболеваниям, что приводит к их гибели.

Из всех групп пестицидов для пчел особенно губительны инсектициды и акарициды, составляющие 23 % от количества пестицидов, применяемых на территории РФ. Из них 56,4 % относятся к 1-му классу опасности, при применении которых необходимо строгое соблюдение определенного экологического регламента: обработку растений допускается проводить только вечером после захода солнца при скорости ветра 1–2 м/с; обрабатываемый участок не должен находиться ближе 4–5 км от мест размещения пасек; продолжительность изоляции вылета пчел из улья, при всех предпринимаемых мерах сохранения их жизни, составляет от 4 до 6 суток. Ко 2-му классу опасности (среднеопасные) относятся 5,1 % инсектоакарицидов, к 3-му (малоопасные) – 27 %. Гербициды, занимая основное место среди других средств защиты растений, в основном (98,2 %) относятся к малоопасным для пчел препаратам. Однако гербицидами обрабатывают значительно бóльшую площадь и в течение длительного периода (с марта по сентябрь), совпадающего с активной жизнедеятельностью пчелиных семей. В результате массовых и не всегда правильно выполненных обработок сельскохозяйственных культур погибают рабочие особи, семьи, а иногда и целые пасеки.

В период сбора нектара и пыльцы пчелы становятся самым уязвимым звеном в биоценозе. Под действием пестицидов пчелиные семьи теряют силу, снижают продуктивность или гибнут. При отравлении высокотоксичными препаратами они могут погибнуть уже в поле, а затем в улье или на территории пасеки. Имеет место длительное бессимптомное течение токсикоза как летом, так и зимой в случае поедания пчелами меда и перги с сублетальными дозами пестицидов. В таких случаях отмечают различные нарушения пищеварения, нозематоз, гнилец и другие патологии.

За более чем 20-летний период была изучена степень опасности более 200 химических препаратов, установлены сроки их детоксикации на растениях после обработки и изоляции пчел для профилактики их гибели, а также разработаны основы пасечной и лабораторной диагностики химического токсикоза, предложен ряд химических и биологических методов определения остаточных количеств препаратов в пчелах, меде, перге.

Исходя из многолетнего опыта, считается, что класс опасности пестицидов для пчел, особенно инсектицидов, акарицидов и гербицидов, не может устанавливаться по данным лабораторных опытов. Достоверно действие препаратов можно определить только в полевых условиях с использованием пчелиных семей при многократной повторности, так как поведение пестицидов в биоценозе отличается от их действия на пчел в лабораторных условиях.

Также разработаны приемы оказания помощи пчелиным семьям, пострадавшим от отравления. В ходе восстановительной терапии при химическом токсикозе рекомендуется использовать аскорбиновую кислоту, марганцовокислый калий и йод в дозах, хорошо переносимых пчелами.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 758 проб материала, проведено 960 исследований, получено 22 положительных случая.
В поступившей в отдел бактериологии и паразитологии для исследования фекалии кроликов были обнаружены ооцистыэймерий(эймериоз).
Эймериоз (кокцидиоз) кроликов вызывается девятью видами эймерий, из которых наиболее патогенными являются Eimeriastiedae, Е. perforans, Е. media, Е. magna из семейства Eimeriidae. Они паразитируют преимущественно в разных отделах кишечника, а один вид (Е. stiedae) - в желчных протоках печени.
Эймериоз кроликов распространен почти повсеместно. Ооцисты у молодняка обнаруживают с 8-10-дневного возраста. Источником инвазии крольчат являются кормящие матери - носители кокцидий, больные или переболевшие крольчата и взрослые кролики. Резервуаром возбудителей могут быть загрязненные ооцистами помещения, клетки, выгульные дворики, корма, вода, предметы ухода. Ооцисты кокцидий нередко могут заноситься в крольчатники с обувью людей, с металлами, лопатами или другими предметами ухода, а также грызунами, птицами и насекомыми. Распространению кокцидиоза кроликов способствуют: скученное содержание в сырых помещениях с резкими колебаниями температуры, неправильное комплектование групп животных, недоброкачественные корма и резкая смена их. Вспышки кокцидиоза чаще бывают весной или осенью, а на ферме промышленного типа в любое время года.
Инкубационный период от 4 до 12 дней. Один из ранних признаков - резкое снижение веса крольчат. Затем у них появляется вялость, общее угнетение, отказ от корма. Больные лежат на вздутом брюшке при пальпации оно болезненно. Слизистые оболочки анемичные. Появляется понос, испражнения жидкие, со слизью, кровянистые. Частое выделение мочи - полиурия. Крольчата отстают в росте, волосяной покров теряет блеск. Нередко развиваются ринит и конъюнктивит.
Диагноз ставят на основании эпизоотологических, клинических й патологоанатомических данных. Обязательно исследуют также фекальные массы от больных животных, а от павших и узелки печени на наличие кокцидий.
При появлении первых клинических признаков кроликам назначают сульфаниламиды (сульфадимезин или норсульфазол), сульфадиметоксин, сульфапиридазин одновременно с мономицином в дозе 25 ООО ЕД на килограмм массы животного.
Для профилактики заболевания кроликов содержат в клетках с решетчатыми полами в сухих, хорошо вентилируемых помещениях или в открытых вольерах. Ежедневно проводят уборку навоза, его необходимо обрабатывать биотермическим способом. Большое значение в профилактике эймериоза кроликов имеет полноценное кормление. В период отъема молодняка от матерей назначают комплексную химиопрофилактику норсульфазолом или сульфапиридазином в сочетании с мономицином в лечебных дозах.
Резкая смена кормов ведет к расстройству функций пищеварительного канала. Поэтому переход с сухих кормов на сочные (зеленую) массу) в весенне-летний период осуществляют постепенно, в течение 10 дней. В период профилактического карантинирования обрабатывают завезенных кроликов эймериостатиками, контролируя эффективность копрологическими исследованиями. Больных изолируют и лечат.

За отчетный период 29.05.2020-04.06.2020г. в отделе ВСЭ и диагностики проведено исследований: 705 исследований. В ходе исследований было выявлено 39 положительных случаев.
Микробиологический анализ питьевой воды нужен для того, чтобы проверить, есть ли в воде опасные микроорганизмы. В воде могут находиться яйца паразитов, бактерии и вирусы, вызывающие различные инфекционные заболевания. Они попадают в воду либо естественным путем, из природных источников (из других источников воды, в том числе подземных, из почвы, от случайно оказавшихся в воде больных животных, их трупов или продуктов жизнедеятельности и т.д.), либо в результате деятельности человека (например, после неправильной утилизации бытовых отходов или испражнений).
Бактериологическое исследование воды поможет выявить болезнетворных микробов и правильно подобрать способ очистки, чтобы избавиться от них. Бактериологический анализ воды часто проводят в рамках инженерно-экологических изыскания для строительства.
Патогенные микроорганизмы наносят непосредственный вред человеку, так как являются возбудителями многих заболеваний. Бактериологический анализ в лабораторных условиях определит виды вирусов, бактерий или гельминтов и в каком процентном соотношении они присутствуют в воде. Он проводится в испытательных центрах, где можно оценить качество не только природной, но и при необходимости водопроводной воды. Вовремя обнаруженные превышения установленных норм можно нейтрализовать и предотвратить дальнейшее распространение патогенной среды с помощью современных методов обеззараживания.
Микробиологические анализы сточной воды и жидкости, подаваемой через системы водоснабжения или получаемой из колодцев, скважин, необходимы для выявления целого комплекса потенциально опасных веществ. К числу наиболее часто встречающихся примесей можно отнести:

 

• колиформные бактерии (обычные и термотолерантные);
• споры сульфитредуцирующей бактериальной флоры;
• общую микробную массу.

 

Своевременное проведение лабораторных исследований жидкостей, используемых для питья, гигиенических или иных целей, позволяет вовремя выявить источники бактериологической опасности, а также дает возможность обеспечить оптимальную скорость устранения подобных нарушений. Достоверная информация помогает сделать жизнь человека безопаснее.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 967 проб материала, проведено 1157 исследования, получено 14 положительных случая.

В поступившей в отдел бактериологии и паразитологии для исследования живой рыбе были обнаружены плероцеркоидыленточных паразитов из родов Ligula.
Лигулез – это распространенное заболевание рыб, обитающих в пресноводных водоемах, развивающееся в результате заражения плероцеркоидами (личиночная стадия) ленточных паразитов из родов Ligula, Digramma и Schistocephalus, относящихся к семейству Ligulidae. Личинки поражают практически все виды, относящиеся к семейству карповых.
Лигулидозы распространены почти повсеместно и регистрируются в реках, озерах, лиманах, водохранилищах и прудах. Заболевания чаще всего вызывает видплероцеркоидов: L. intestinalis (заболевание называется лигулезом).
Плероцеркоиды  ̶ крупные ремневидные гельминты белого или слегка желтоватого цвета, достигающие 5-120 см длины и 0,5-1,7 см ширины. На переднем конце стробилы находятся щелевидные ботрии, с помощью которых паразит прикрепляется к тканям хозяина.
Заболеванию лигулезом подвержены многие виды рыб: лещ; плотва; тарань; красноперка; карась; густера; уклея; елец; пескарь; храмуля; усач; маринка; верховка; гольян и некоторые другие.
Заражение чаще всего происходит в прибрежных зонах, на мелководье, где рыбы питаются зоопланктоном. Рыбы, инвазированныеплероцеркоидами ремнецов, чаще всего выявляются при отлове товарной рыбы в 2-4-летнем возрасте.
Экстенсивность инвазии промысловой ихтиофауны может достигать 40-60% при интенсивности 2-4 гельминта.
Симптомы заражения:
1. Пораженные особи держатся в поверхностном слое воды;
2. Плавают на боку или брюшком кверху;
3. Легко подвергаются вылову;
4. При сильном волнобое такие рыбы не могут уйти в глубину водоема, а прибиваются к зарослям и камышам;
5. В местах, где находится больная рыба, появляются большие колонии птиц, которые усиленно вылавливают их.
6. При осмотре рыбы обращает на себя внимание вздутие брюшка, особенно в передней части. Оно становится твердым, благодаря скоплению в нем плероцеркоидовлигулид. Иногда ремнецы так сильно давят на брюшную стенку, что она разрывается и паразиты выходят из брюшной полости наружу;
7. Рыба внешне выглядит истощенной.
Диагноз устанавливают путем вскрытия рыбы и обнаружения в брюшной полости плероцеркоидов ремнецов. Затем определяют их видовую принадлежность.
Для борьбы с лигулидозами проводят комплекс мероприятий, основанный на особенностях биологии паразита, эпизоотологических закономерностях заболевания и специфике рыборазведения, принятой для прудового хозяйства или естественного водоема.
Данное заболевание не является опасным для человека. У многих рыболовов после вылавливания подобной карповых видов наблюдается отвращение.

 

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено    исследований:1874 исследования. В ходе исследований было выявлено 2 положительных случая. 
В отделе для культивирования микроорганизмов используют питательные среды согласно нормативной документации.
Разработка питательных сред, и особенно плотных, для разных видов микроорганизмов позволила изучать их культуральные, биохимические, антигенные, вирулентные свойства.
Плотные среды позволили получать чистую культуру микробов и изучать их свойства.
Получение чистой культуры часто является необходимым условием при изучении микроорганизмов.
Определение видовой принадлежности микроорганизмов включает определение целого ряда особенностей микроорганизмов: морфологии клетки, характера роста культуры на различных питательных средах, способности использовать те или иные химические соединения, отношения к температуре, рН среды, кислороду и пр. Кроме того, для определения вида у микроорганизмов часто необходимо знать продукты обмена веществ, антигенные свойства, нуклеотидный состав клеток, биохимическую активность, связанную с набором ферментов, и многое другое.
Определение всех этих признаков позволяет идентифицировать микроорганизмы.
Для того, чтобы можно было идентифицировать какой – либо микроорганизм, необходимо накопить особи в чистой культуре и в необходимом количестве.
Для выделения, культивирования, накопления и сохранения микроорганизмов пользуются питательными средами, содержащими все необходимые для микробов питательные вещества и имитирующими среду обитания микроорганизмов в естественных условиях.
Все питательные среды должны удовлетворять следующим требованиям:
1) наличие питательных веществ и факторов роста в легко усвояемой форме;
2) стерильность – отсутствие жизнеспособных микроорганизмов и спор;
3) изотоничность – одинаковое содержание минеральных солей внутри и вне клетки. Для патогенных микроорганизмов, адаптировавшихся к длительному пребыванию внутри организма человека, изотоничным считается 0,85% раствор хлорида натрия. Для микроорганизмов, обитающих, например, в океане (в соленой воде), изотоничность будет создаваться другой концентрацией солей, однако требование к изотоничности питательных сред остается;
4) оптимальное рН среды. Окислительно – восстановительный потенциал питательной среды создается ионами водорода, что способствует нормальному функционированию ферментов микроорганизмов;
5) прозрачность среды. Так как большинство бактерий одним из основных признаков роста на питательных средах является помутнение (на жидких средах – помутнение, осадок, пленка или смешанное; на плотных средах – образование колоний).
Питательные среды являются основой микробиологической работы и их качество нередко определяет результаты исследования. Поэтому при подборе сред следует учитывать как требования микробов в отношении веществ, необходимых для поддержания их жизнедеятельности, так и их возможность осуществлять в данных условиях обмен веществ между клеткой и средой.
Питательные среды должны создавать оптимальные (наилучшие) условия для жизнедеятельности микробов.
Чтобы осуществлять биосинтез, рост и размножение, клетка должна получать извне в необходимых количествах все содержащиеся в ней элементы и должна быть обеспечена источником энергии. В соответствии с тем, какие именно элементы доставляются клетке, вещества питательной среды называют источниками углерода, азота, фосфора, серы и т.д.
Соединения, в виде которых необходимые для конструктивных целей элементы должны быть внесены в среды, определяются синтетическими способностями микроорганизмов.
Форма источника энергии определяется способом ее получения.
Синтетические возможности микроорганизмов и способы получения ими энергии отличаются чрезвычайным разнообразием, поэтому и различны их потребности в источниках питания. Этот факт необходимо учитывать при составлении питательных сред, четко представляя, что универсальных сред, одинаково пригодных для роста всех без исключения микроорганизмов, не существует.
Таким образом, состав питательных сред определяется прежде всего особенностями, разнообразием обмена веществ микроорганизмов.
Необходимыми элементами питания микроорганизмов, как и других существ, являются углерод, азот, сера, фосфор, зольные элементы, а для многих микроорганизмов – различные дополнительные питательные вещества, такие как витамины, факторы роста и т.д.
Многие микроорганизмы, подобно высшим животным, помимо нормальных источников углерода, азота, минеральных солей и других элементов, служащих им источником энергии и материалом для синтеза, нуждаются еще в весьма существенных факторах роста. Особенностью факторов роста является их активность в чрезвычайно малых количествах.
По потребности в витамине В бактерии делятся на четыре группы:
а) бактерии, растущие на бульоне, лишенном витамина В. Эти бактерии не растут на синтетических средах (брюшнотифозная и дизентерийная палочки, гноеродный стафилококк);
б) бактерии , не нуждающиеся в экзогенном поступлении витамина В. Эти бактерии растут на безвитаминном бульоне и синтетических средах (кишечная палочка, холерный вибрион, синегнойная палочка, возбудитель сибирской язвы и др.). Микробы этой группы способны сами синтезировать витамин В;
в) бактерии, плохо растущие на безвитаминных средах (менингококк, возбудитель дифтерии);
г) бактерии, не растущие на безвитаминных средах (гемолитический стрептококк, пневмококк).
Установлено, что витамины группы В обладают способностью стимулировать рост и кислотообразование у пропионово – кислых и молочно – кислых бактерий.
Cl.botulinum и Cl. Perfringensиспользует в качестве фактора роста ненасыщенную жирную кислоту. Это вещество образуется многими аэробными бактериями, например, , а также плесневыми грибами. Очевидно, это вещество необходимо для жизнедеятельности всех микроорганизмов, но анаэробные клостридии лишены способности сами его синтезировать.
Питательные среды для одного и того же микроорганизма могут быть разными в зависимости от задач исследования. Например, среды, подходящие для длительного поддержания жизнедеятельности культур микроорганизмов, могут сильно отличаться от сред, предназначенных для получения тех или иных продуктов обмена, когда требуется стимулировать отдельные стороны жизнедеятельности микробов. Особые среды нужны для образования спор и других форм жизненного цикла.
По возможности питательные среды должны быть унифицированными, т. е. содержать постоянные количества отдельных ингредиентов. Для удобства слежения за ростом культур и контролем за загрязнением среды посторонними микроорганизмами питательные среды должны быть прозрачными.
По составу питательные среды подразделяются на натуральные, синтетические и полусинтетические.
Натуральными средами обычно называют среды, состоящие из продуктов животного или растительного происхождения, имеющие сложный неопределенный химический состав. Основой таких сред являются различные части зеленых растений, ткани животных, солод, дрожжи, фрукты, овощи, навоз, почва, вода морей, озер и минеральных источников. Большинство из них используются в виде экстрактов или настоев.
На натуральных средах хорошо развиваются многие микроорганизмы, так как в таких средах имеются, как правило, все компоненты, необходимые для роста и развития микробов. Однако среды с неопределенным составом мало пригодны для изучения физиологии обмена веществ микроорганизмов, поскольку они не позволяют учесть потребление ряда компонентов среды и выяснить, какие вещества образуются по ходу развития микроорганизмов.
Натуральные среды неопределенного состава используются, главным образом, для поддержания культур микроорганизмов, накопления их биомассы и для диагностических целей.
К числу сред неопределенного состава относят и так называемые полусинтетические среды. В их состав наряду с соединениями известной химической природы входят вещества и неопределенного состава. Такие среды находят особенно широкое применение в промышленной микробиологии для получения аминокислот, витаминов, антибиотиков и других важных продуктов жизнедеятельности микроорганизмов.
В качестве примера таких сред можно назвать мясо – пептонный бульон (МПБ), в состав которого одновременно с мясным экстрактом и пептоном, имеющими сложный состав, входят хлорид натрия, фосфорнокислый калий, а также иногда глюкоза или сахароза. К полусинтетическим относятся и картофельные среды с глюкозой и пептоном.
Синтетические среды – это такие среды, в состав которых входят только определенные , химически чистые соединения, взятые точно в указанных концентрациях.
Синтетические среды наиболее удобны для исследования обмена веществ микроорганизмов. Зная точный состав и количество входящих в среду компонентов, можно изучить их потребление и превращение в соответствующие продукты обмена.
Питательные среды бывают элективные, дифференциально – диагностические и консервирующие.
Элективные среды -это такие питательные среды, в которых путем добавления одного или нескольких химических соединений, создаются оптимальные условия для роста и размножения одного вида микроорганизмов (или группы родственных микроорганизмов) и неблагоприятные – для всех остальных. Такие среды применяются главным образом для выделения чистой культуры микроорганизмов из мест их естественного обитания и для накопления массы культур (химический метод выделения чистой культуры).
Дифференциально – диагностические среды – это такие среды, в состав которых кроме веществ, обеспечивающих рост и развитие микроорганизмов, входят вещества, применяющиеся в качестве субстрата для определенных ферментов. По качественному изменению субстрата Определяется присутствие того или иного фермента (оценивается при помощи индикатора, реагирующего на наличие в питательной среде продуктов распада субстрата).
Каждый вид микроорганизмов характеризуется достаточно стабильным набором ферментов. Определение набора ферментов при помощи дифференциально – дагностических сред позволяет дифференцировать виды микроорганизмов. Например, кровяной агар позволяет выявить фермент гемолизин, среды Гиса – сахаролитические ферменты (карбогидразы), желатин используется для учета протеолитических свойств микробов и т.д.
Кровяной агар. О наличии фермента гемолизина судят по разрушению эритроцитов и образованию светлой зоны вокруг микробов, выросших на кровяном агаре.
Среды Гиса. О наличии ферментов – карбогидраз, расщепляющих углеводы до кислоты, свидетельствует изменение рН среды в кислую сторону и изменение цвета питательной среды. Различие в наборе ферментов может быть использовано для проверки чистоты выделяемой культуры, а также для быстрой дифференцировки одного вида от других при первичном исследовании посевов заразного материала.
Консервирующие среды предназначены для первичного посева и транспортировки исследуемого материала. В них предотвращается гибель патогенных микроорганизмов и подавляется развитие сапрофитов. В качестве примера можно назвать глицериновую смесь, используемую для сбора испражнений при исследованиях, проводимых с целью обнаружения некоторых видов бактерий.
По физическому состоянию среды разделяются на жидкие, плотные, полужидкие и сыпучие. Для выяснения физиолого – биохимических особенностей микроорганизмов, а также для накопления их биомассы или продуктов обмена наиболее удобно применять жидкие среды. Плотные среды используются для выделения чистых культур, получения изолированных колоний, для хранения культуры и количественного учета микроорганизмов, определения их антагонистических свойств и в ряде других случаев. Полужидкие питательные среды, как правило, используются для более длительного хранения микробных культур. Для уплотнения сред применяют агар – агар, желатин и кремнекислый гель.
Питательные среды бывают простые и сложные. К числу простых жидких питательных сред относятся пептонная вода, мясо – пептонный бульон (МПБ). К плотным простым питательным средам принадлежат мясо – пептонныйагар (МПА) и мясо – пептонный желатин.
Простые питательные среды, особенно МПБ и МПА, служат основой для изготовления из них более сложных сред путем добавления к ним различных веществ, повышающих питательную ценность субстрата. Например, при добавлении глюкозы получают сахарный бульон или сахарный агар; асцит – агар и асцит – бульон получают при добавлении асцитической жидкости; цельная кровь является составной частью кровяного агара и кровяного бульона, а при добавлении сыворотки крови получают сывороточные среды (агар или бульон).
Среды более сложного состава обычно предназначаются для культивирования требовательных к питательному субстрату микробов, не размножающихся на простых средах. К таким микроорганизмам относятся возбудители гонореи, дифтерии, бруцеллеза, туляремии, сифилиса, возвратного тифа, риносклеромы, туберкулеза и др.



За отчетный период в отдел химических исследований поступило 86 проб:
* корма – 22 пробы;
* пищевая продукция – 52 пробы;
* пат.материал (отравление) – 1 проба;
* вода – 4 пробы;
*дез. раствор (дезинфицирующее средство) – 1 проба.
Также для радиологических исследований поступило 6 проб.

За отчетный период положительных результатов не выявлено.

Полезные свойства рыбы сельдь для человека 

Рыба сельдь обладает широким спектром полезного действия. В сельди содержится много жирных кислот Омега-3, Омега-6 и антиоксидантов. В химическом составе присутствуют витамины группы B, E, D, PP, аскорбиновая кислота. Богата рыба и необходимыми для здоровья микроэлементами – калий, магний, кальций, фосфор, йод и железо.
Благодаря жирным кислотам Омега-3 употребление селёдки в пищу улучшает работу сердца и снижает риск развития болезней сердечно-сосудистой системы. А также из-за этих кислот в организме человека вырабатывается устойчивая сопротивляемость к различным инфекционным и простудным болезням. Кислоты Омега-6 способны предотвратить развитие онкологических болезней, таких как рак молочных желез и т.д. Даже если диагноз уже поставлен, то регулярное потребление селедки в пищу может облегчить жизнь больному. С ее помощью можно решить проблемы с сердечной деятельностью, вызванной проведением химиотерапии. Витамин D необходим для роста костей, особенно в зимний период при нехватке солнечных лучей. Рыбий жир в селёдке способствует уменьшению жировых клеток. Благодаря ему снижается риск возникновения диабета второго типа. Употребление селёдки положительно влияет на работу мозга. При употреблении селедки из тела выводится лишний холестерин и различные несущие вред организму токсины, а также увеличивается содержание высококачественных легкоусвояемых белков, которые необходимы для строительства клеток, включая мышечной ткани.
Вред и противопоказания
Отказываться полностью от сельди не следует. Но важно понимать, что при всех положительных моментах рыба может навредить организму. С осторожностью к ней надо относиться больным гастритом и полностью исключить из рациона при обострении заболевания.
Чрезмерное употребление продукта способно негативно сказаться на артериальном давлении и повысить его. Для больных печенью и почками, а также лицам, страдающим отечностью из-за нестабильной работы сердца, необходимо вводить ограничения по приему селедки. Перечисленным больным, а также людям, страдающим язвой и энтероколитом, лучше употреблять в пищу отварное либо приготовленное на пару мясо.
Соленая сельдь не является высокоаллергенной пищей, но известны случаи реакции гистаминовой токсичности из-за плохо хранимой и охлажденной сельди. Это «отравление рыбой» может вызвать покраснение, отек и пятна на коже; головную боль; и боли в желудочно-кишечном тракте.