Бруцеллез. Историческая справка. Часть 2.
Значительный вклад в изучение бруцеллезной инфекции, борьбу с бруцеллезом и разработку вакцинопрофилактики внесли отечественные ученые. Систематическое изучение проблемы бруцеллеза в Советском Союзе связано с научными работами Павла Феликсовича Здродовского, возглавившего научные исследования по бруцеллезу. В 1922 г. в Азербайджане он впервые выявил очаг бруцеллеза среди людей – 6 случаев. В 1928 г. П.Ф. Здродовский докладывал уже о 207 случаях бруцеллеза людей, роли овец и коз как источника инфекции для людей и широком распространении бруцеллеза на территории СССР. Было выяснено, что бруцеллез является эндемическим заболеванием и распространяется не только на южные и юго-восточные районы Советского Союза, а захватывает также и некоторые районы северной полосы.

Под руководством будущих академиков АМН СССР П.Ф. Здродовского и П.А. Вершиловой в специализированной лаборатории началось системное научное изучение бруцеллезной инфекции. Была организована масштабная экспедиция, которая работала с мая 1933 по май 1936 гг. на Северном Кавказе в племенном овцеводческом хозяйстве, неблагополучном по бруцеллезу. В ходе работы экспедиции впервые экспериментально был изучен патогенез бруцеллеза у овец, выяснены пути инфицирования, длительность персистенции возбудителя в организме овцы и чувствительность овец к разным видам возбудителя. Полученные в ходе экспедиции данные открыли понимание эпизоотического процесса при овечьем бруцеллезе как источника инфекции для человека. Было доказано, что распространение бруцеллеза среди людей соответствует зонам распространения его среди домашних животных.

Первые опыты по иммунизации овец против бруцеллеза определили пути дальнейших исследований по вакцинопрофилактике бруцеллеза. Малоэффективные результаты были получены в многочисленных опытах при иммунизации животных с помощью различных убитых вакцин.

На основе анализа результатов многочисленных экспериментов под руководством П.А. Вершиловой в лаборатории бруцеллеза в 1947 г. была предложена живая бруцеллезная вакцина из штамма B. abortus 19-BA для испытания на людях в очагах бруцеллеза мелкого рогатого скота. С 1952 г. эта вакцина была внедрена в масштабное производство. Установлена ее низкая реактогенность и высокая эпидемиологическая эффективность.

В послевоенные годы на юге европейской части России вновь сформированные хозяйства МРС и КРС в подавляющем большинстве случаев были неблагополучными по бруцеллезу, так как массовые перемещения скота, скопление его на территориях, неблагополучных по бруцеллезу, приводили к быстрому распространению инфекции среди здоровых животных и групповой заболеваемости людей. Внедрение вакцинопрофилактики бруцеллеза у людей в конце 40-х годов не привело к ожидаемым результатам. Радикальный метод борьбы с бруцеллезом – забой больных животных – в этот период был неприемлем, так как поголовье больных бруцеллезом животных составляло до 30 %.

Для решения проблемы борьбы с бруцеллезом на юге России были привлечены научные кадры созданного в 1952 г. научно-исследовательского противочумного института Кавказа и Закавказья. С этой целью была организована лаборатория бруцеллеза под руководством А.М. Поляковой. Сотрудничество специалистов противочумного института с учеными Всесоюзного научно-исследовательского института эпидемиологии и микробиологии им. Н.Ф. Гамалеи АМН СССР позволило развернуть исследования по применению штамма B. abortus 19 для вакцинации животных. В результате исследований была подтверждена высокая иммуногенность и безопасность штамма В. abortus 104-М в опытах на овцах.

В результате многолетней работы была усовершенствована научно обоснованная система мероприятий по борьбе с бруцеллезом во взаимодействии работы медицинских и ветеринарных специалистов. В практику здравоохранения были введены новые современные методы лабораторной диагностики и вакцинопрофилактика людей и животных, были ликвидированы многие очаги бруцеллеза МРС и КРС. Комплексные противобруцеллезные мероприятия способствовали резкому снижению заболеваемости бруцеллезом по стране.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 33 пробы, проведено 75 исследований.

Кислотное число в жире-сырце
Жиры являются неотъемлемым компонентом пищевого рациона человека. Они используются в организме как пластический материал для построения тка­ней и, как источник энергии, участвуют в водном обмене. Кроме того, живот­ные жиры являются источником холестерина, жирорастворимых витаминов и других биологически активных веществ. Жировая ткань также необходима для терморегуляции и защиты внутренних органов от травматических поврежде­ний.
Жир-сырец – это жировая ткань, получаемая при разделке туш, обработке кишок и субпродуктов. Он является основным сырьем в производстве животных топленых жиров, используемых на пищевые цели.
Жир-сырец делят на говяжий, свиной, бараний, птичий и костный. В зависимости от жирно-кислотного состава и места расположения в туше мякотный жир-сырец животного делится на две группы.
К первой группе относят сальник, выстилающий брюшную полость; околопочечный, брыжеечный жир; обрезь свежего свиного шпика; жировая обрезь от зачистки туш (щуповой и подкожный), с калтыка, ливера, хвоста; жирное вымя молодняка крс; жировая обрезь, выделяемая при разделке мяса в колбасном, консервном и полуфабрикатном производстве; курдюк свежий.
Ко второй группе относят жировую ткань с желудка; мездровой жир, получаемый при ручной обрядке шкур или на мездрильных машинах, установленных в цехе убоя скота и разделки туш; кишечный жир, получаемый при обезжиривании кишок вручную; а также соленый шпик без запаха осаливания.
Жир-сырец, полученный от животных разного вида, возраста, пола, породы и упитанности отличается химическим составом. Средние данные химического состава жира-сырца следующие: содержание влаги составляет 6,4%; жира – 92,2%; белка – 1,35%; золы 0,05%.
Кислотное число жира - это количество мг NaОН (КОН), необходимого для нейтрализации свободных жирных кислот, содержащихся в 1 г жира %. Кислотное число показывает степень гидролиза жира на свободные жирные кислоты и глицерин.
В отделе химических исследований кислотное число в жире-сырце определяют титриметрическим методом по ГОСТ Р 50457-92 Жиры и масла животные и растительные. Определение кислотного числа и кислотности (п. 4).
Сущность метода заключается в растворимости навески в смешанном растворителе, титрование присутствующих свободных жирных кислот раствором гидроокиси калия.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 100 проб материала, проведено 113 исследований, положительных результатов не выявлено.

Эймериоз (кокцидиоз) – одно из самых распространенных и опасных заболеваний для молодняка. Развитие инфекции провоцируют простейшие паразиты – эймерии, паразитирующие на стенках кишечника и печени птицы. Теплая и влажная погода, нарушение санитарных условий содержания кур повышают риск вспышки болезни. Наиболее часто констатируется кокцидиоз у цыплят бройлеров и молодых несушек. Однако патология может поражать и взрослых особей при ослабленном иммунитете. У кур паразитируют 9 видов эймерий. Они относятся к отряду Coccidia, подсемейству Eimeriinae, роду Eimeria. Наиболее патогенные из них Е. tenella, E. necatrix, E. Acervulina.
Источниками инвазии являются, как правило, больные или переболевшие цыплята, а также взрослые куры, которые могут быть носителями эймерий. Инвазионное начало распространяется через загрязненные ооцистами эймерий корма, воду, кормушки, подстилку, хозяйственный инвентарь.
Инкубационный период от 3 до 15 дней. Эймериозы протекают в острой, подострой и хронической формах. Клиническая картина зависит от доминирующего вида возбудителя, интенсивности инвазии и возраста животного. Отмечают угнетение, исхудание, слабость. Акт дефекации учащается, фекалии жидкие, с примесью слизи, иногда крови. Гибель цыплят до 100%.
Диагноз ставят комплексно с учетом эпизоотологических, клинических дан­ных и патологоанатомических измене­ний. Их подтверждают лабораторными исследованиями, обнаружением в фекалиях и содержимом кишечника эймерий или стадий их развития — шизонтов и мерозоитов. Для этого делают мазки из соскобов кишечника или исследуют фекалии по методу Дарлинга, Фюллеборна и др.
При установлении заболевания больных кур изолируют. Больным и подозреваемым в заражении назначают эймериостатики. Однако при выборе нужного лекарства необходимо иметь в виду, что многие из них вызывают привыкание к себе эймерий и через некоторое время они становятся совершенно неэффективными. Для преждевременной адаптации эймерий к противоэймериозным препаратам в хозяйствах следует чередовать применение эймериостатиков. После перенесенной инфекции, а также в период лечения эймериоза, курам дают витаминные комплексы и пробиотики.
Все мероприятия по предупреждению этой болезни направлены на создание условий, исключающих возможность массового заражения восприимчивого поголовья, организацию полноценного кормления, оптимальных условий содержания по всем зоогигиеническим параметрам.
Основные меры профилактики:
1. Для профилактики кокцидиоза у птиц с первых дней жизни проводят вакцино-профилактику;
2. Курятник регулярно проветривать и следить за сухостью и чистотой подстилки;
3. Куры должны получать сбалансированное питание, которое позволит птице поддерживать иммунитет на высоком уровне;
4. Важно обеспечить чистоту поилок, кормушек, а также другого инвентаря и оборудования, используемого по уходу за птицей;
5. Нельзя допускать скученность цыплят на ограниченной площади;
6. Рекомендовано содержать птицу на сетчатых полах, исключая попадание помета в кормушки и поилки.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 717 исследований.

Качество пищевых продуктов - совокупность характеристик безопасных пищевых продуктов, отвечающих требованиям, установленным в соответствии с законодательством Российской Федерации.
Запрещается обращение пищевых продуктов, являющиеся опасными и некачественными по органолептическим показателям; имеют в своем составе нормируемые вещества в количествах, не соответствующих установленным в соответствии с законодательством Российской Федерации значениям, содержат предметы, частицы, вещества и организмы, которые образовались или были добавлены (внесены) в процессе производства пищевых продуктов (загрязнители), наличие которых может оказать вредное воздействие, которые не имеют установленных сроков годности для пищевых продуктов, срок годности которых истек, показатели которых не соответствуют требованиям, установленным в соответствии нормативных документов, при установлении факта фальсификации.
Качество и безопасность пищевых продуктов обеспечиваются посредством: определения физико-химических, органолептических, микробиологических и иных показателей, характеризующих свойства пищевых продуктов, а также установления критериев их идентификации;
проведение производственного контроля за качеством и безопасностью пищевых продуктов, условиями их производства (изготовления), реализации, хранения, перевозок, включающего лабораторные исследования (испытания).
Производственные риски можно устранить или минимизировать. Для этого созданы санитарные правила и нормы, соблюдение которых на предприятиях обеспечивает организация производственного контроля.
Основная цель производственного контроля — защитить жизнь и здоровье работников от возможного риска, исключить или максимально уменьшить вред для окружающей среды, достигается путем решения одной из основных задач это регулярная оценка безопасности на производстве (для этого проводятся лабораторные исследования вредных факторов).
В ходе проведения производственного контроля подлежит собственно производственная деятельность, а также самые разнообразные объекты
- здания, помещения, сооружения, эксплуатируемые при производственной деятельности;
- промышленное оборудование;
- рабочие места сотрудников
- продукция на всех стадиях производства от исходных материалов до готового товара.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 27 проб, проведено 69 исследований.

Массовая доля золы в мясокостной муке

Мясокостная мука – белково - минеральный корм для животных, широко применяющийся в животноводстве. Получают из туш животных, не пригодных для употребления в пищу, павших животных, отходов мясного и рыбного производства. Сырьё обрабатывается паром или варится, затем сушится и измельчается. Корм состоит из белка (50 %), золы (35 %), жиров (8-12 %), воды (4-7 %). Мясокостную муку включают в рационы птицы, свиней, молодняка сельскохозяйственных животных для улучшения белкового баланса рациона. Также входит в состав комбикормов и кормов для домашних животных (собак и кошек).
Цена мясокостной смеси зависит от ее сорта – 1, 2 или 3. Производство начинается со сбора сырья, которое потом измельчается, вываривается, разделяется на фракции, высушивается и еще раз измельчается. Твердые фракции идут на удобрение. Мягкие – на производство жира технического назначения. Сырьем служит:
-скелеты крупного рогатого скота;
-животные, умершие из-за болезней на фермах;
-ветеринарные отходы.
Санитарный надзор за качеством продукции должен присутствовать на каждом этапе производства, чтобы бактерии не попали в корма животных или в почву. Большое значение имеют холодильные камеры для хранения готовой к расфасовке продукции.
Сущность метода определения зольности заключается в сжигании продукта в фарфоровых или кварцевых тиглях в высокотемпературных печах с последующим определением массы несгораемого остатка. Озоление ведут до полного исчезновения черных частиц, пока цвет золы не станет белым или слегка сероватым.
Зола - несгорающий остаток, неорганика. Значит, чем выше зола, тем больше минералов в корме и тем выше вероятность образования солей (т.е. кристаллов) в моче, а также повышается вероятность защелачивания мочи. Кроме того, высокая зольность корма снижает его питательность.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 249 проб материала, проведено 285 исследований, выявлено 2 положительных результата.

Анализ на чувствительность к антибиотикам

Микроорганизмы по отношению к конкретному виду антибиотика могут характеризоваться как чувствительные, условно - устойчивые и устойчивые. Чувствительными патогенными микроорганизмами являются те, что подавляются рекомендованными дозами антибактериального препарата. Условно - устойчивые для подавления требуют увеличение дозы. Активность устойчивых патогенных микроорганизмов не подавляется даже повышенными дозами антибиотика.
Чувствительность микрофлоры к антибиотикам индивидуальна: у разных животных, бактерии могут реагировать на одни и те же антибиотики по-разному. Поэтому назначение антибактериальных препаратов на основании лишь среднестатистической картины не всегда дает желаемый лечебный эффект. Может получиться ситуация, когда антибиотик уничтожит полезную микрофлору, а возбудитель заболевания не пострадает – по причине его устойчивости к данному антибиотику.
Чтобы обеспечить эффективность проводимого курса антибактериальной терапии, врач должен быть уверен, что назначаемый им антибиотик действительно справится с выявленным возбудителем заболевания.  Для этого и нужен анализ на чувствительность к антибиотикам. 
Анализ на чувствительность микрофлоры к антибиотикам назначается, если необходимо:
- определить наиболее эффективно действующий препарат;
- избежать «привыкания» патогенных микроорганизмов к антибиотику – в случаях повторного использования антибактериальной терапии в течение ограниченного периода времени;
- заменить один препарат на другой, например, в случае проявления аллергической реакции.
Наибольшее распространение имеет диско - диффузный метод проведения анализа на чувствительность к антибиотикам.
В соответствии с данным методом патогенные микроорганизмы засеваются в питательную среду. Сверху накладываются диски, пропитанные антибиотиками. После чего посев помещается в термостат на 16-18 часов. Результат покажет, насколько тот или иной антибиотик способен справиться с данными бактериями.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 699 исследований.

Одним из главных микробиологических параметров качества молока является содержание соматических клеток. Данный показатель не только влияет на сортность и цену продукта, но и на его безопасность для употребления.
Соматические клетки представляют собой клетки различных тканей и органов (клетки эпителия молочной железы, лейкоциты, эритроциты). Данные клетки всегда присутствуют в молоке, так как в вымени коровы происходит отторжение старых клеток, в результате чего они попадают в молоко, однако повышенное содержание соматических клеток может свидетельствовать о наличии какого-либо воспалительного процесса.
На увеличение соматических клеток в молоке влияет несколько групп факторов:
1. Особенности животного (отнести нарушение обмена веществ, форма вымени (низко расположенное вымя предрасположено к маститу и заражению инфекцией), период лактации животного, так как в данный период содержание соматических клеток повышается).
2. Ошибки, возникающие при доении (недостаточная дезинфекция вымени и доильного оборудования, неисправность оборудования, слишком долгий период доения).
3. Ошибки в содержании животных (нарушение режима питания и гигиены, в режиме кормления недостатка витаминов и питательных элементов), недостаточная гигиена оборудования, места содержания или вымени.
Данные факторы могут привести к возникновению мастита – одной из главных причин увеличения количества соматических клеток. В результате развития мастита возникает воспалительный процесс, приводящий к увеличению в молоке лейкоцитов и нейтрофильных гранулоцитов, в результате чего снижается стоимость молока.
Большое содержание соматических клеток в молоке приводит к снижению качества молока, ухудшаются его свойства, уменьшается показатель кислотности, отмечается сокращение содержания казеина, жира и лактозы. Из молока, содержащего повышенное количество соматических клеток, нельзя приготовить сыр, творог, масло и кефир, так как молоко становится менее термоустойчивым и хуже свертывается сычужным ферментом.  
Если маститное молоко попадает в употребление, болезнетворные микроорганизмы могут вызвать у человека пищевое отравление, расстройство функций ЖКТ, стрептококковую ангину и многое другое. Мастит способствует увеличению количества хлора и натрия в молоке, что приводит к изменению вкуса (продукт получает горький и соленый привкус).
Переработка маститного молока на сыр приводит к вспучиванию продукта и увеличению срока созревания. Использование маститного молока при производстве масла приводит к появлению неприятного запаха и снижению качества.
Методы определения соматических клеток.
- прямой метод (подсчет соматических клеток с использованием микроскопа);
- вискозиметрический (метод реализуется анализаторах соматических клеток, как Соматос-мини). Проба молока смешивается с препаратом «Мастоприм», который разрушает оболочки соматических клеток (лейкоцитов), и молекулы ДНК переходят во внеклеточное пространство, изменяя при этом вязкость смеси. Полученная смесь пропускается через анализатор, измеряется скорость вытекания, которая зависит от количества соматических клеток.     

За отчетный период в серологический отдел поступило 65 проб сыворотки крови животных, проведено 180 исследований. Положительных проб не выявлено.

Бруцеллез. Историческая справка.
Бруцеллезная инфекция известна с давнего времени. Так, описание клиники заболевания людей встречается более 2000 лет назад у Гиппократа. Позже болезнь неоднократно описывалась рядом авторов на протяжении XVII-XVIII столетий под разными названиями.
Более современная история изучения бруцеллёза начинается со второй половины XIX столетия, она в основном связана с районом Средиземного моря, на побережье и островах которого рассеяны многочисленные очаги этой инфекции. В прошлом это обстоятельство нашло отображение и в соответствующих «географических» названиях болезни: средиземноморская лихорадка, мальтийская лихорадка, гибралтарская лихорадка и т.д. В этом периоде (1860-1907) история изучения болезни теснейшим образом связана с английскими исследователями на острове Мальта.
В 1861 г. Дж. Марстсон сделал первое научное описание бруцеллеза. Он обратил внимание на больных солдат, которые употребляли в пищу козье молоко. Так он дифференцировал бруцеллёз у людей как самостоятельную клиническую единицу.
Историческим этапом в учении о бруцеллезе является 1886 г., когда английский исследователь Д. Брюс открыл на острове Мальта возбудителя инфекции, микроскопически обнаружив его в препаратах из селезенки солдата, погибшего от мальтийской лихорадки. В 1887 г. ученому удалось выделить возбудителя в чистой культуре. Позднее Д.Брюс путем экспериментального заражения обезьян чистой культурой выделенного микроорганизма вызвал у этих животных заболевание, по клинической картине сходное с заболеванием человека. Открытый микроорганизм получил название Micrococcus melitensis. Он был первым представителем позднее дифференцированной группы бактерий, названной в честь автора Д.Брюса – «Brucella».
В 1897 г. два английских исследователя – А. Райт и Д. Семпл – установили, что сыворотка больных мальтийской лихорадкой обладает способностью специфически агглютинировать культуры мальтийского микрококка. Эти находки легли в основу современной серодиагностики бруцеллеза с помощью реакции агглютинации, получившей название реакции Райта, которая до настоящего времени сохраняет значение основного лабораторного метода при распознавании бруцеллезной инфекции у людей и животных.
В 1897 г. датские исследователи Б. Банг и В. Стрибольд установили, что одной из причин абортов коров является инфекция, вызываемая особым микроорганизмом, которого этим ученым удалось выделить. Они назвали его бактерией аборта коров. Вскоре стало известно, что от больных животных могут заражаться и люди.
В 1914 г. ветеринарный специалист Д. Траум, работавший в США, выделил возбудителя инфекционного аборта свиней. В дальнейшем появились сообщения и о заболеваниях людей, вызываемых бактерией свиного аборта.
Таким образом, учеными разных стран, работавшими на различных территориях независимо друг от друга, были описаны возбудители трех инфекций, которые первоначально рассматривались как не связанные друг с другом заболевания. Долгое время мальтийская лихорадка у людей и массовые аборты у домашних животных считались самостоятельными заболеваниями. В 1918-1920 гг. американские ученые A. Evans, M. Fusier, K. Meyer, проведя сравнительное изучение мальтийского микрококка, бактерии аборта коров и бактерии аборта свиней, обнаружили их чрезвычайную близость как по строению микробных клеток, так и по биохимическим свойствам, и по структуре антигенов. Эти исследования явились основанием для объединения указанных возбудителей в одну родовую группу под наименованием Brucella, а вызываемые ими заболевания именовать бруцеллезом.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 12 проб, проведено 28 исследований.

Коровье молоко - это один из самых полезных продуктов, как для взрослых, так и для детей. Оно содержит огромное количество компонентов, необходимых нашему организму. А такие компоненты как белок, сахар и жир лучше всего усваиваются в организме человека.  Поэтому производители молока и молочных продуктов следят за тем, чтобы коровы содержались в хороших условиях и получали пищу, богатую витаминами.
Также очень важен контроль кислотности, так как в случае прокисания продукта, он уже становится непригодным для реализации потребителям.
Кислотность - главный показатель свежести молока. Чем дольше молоко сохраняет свои потребительские качества, тем больше возможностей для реализации всей партии готового продукта для переработчиков молока. Неудивительно, что к свежести исходного сырья предъявляются довольно высокие требования. Количественно измерить свежесть можно показателем кислотности.
Кислотность продукта классифицируется как активная и титруемая. Для определения второй необходимо задействовать механизм титрования щелочью. В целом это сложный химический процесс, в результате которого будет определена титруемая кислотность в молоке. Ее градус выше 16-18 °Т. Титруемая кислотность молозива на 5-6 °Т выше, чем у обычного молока. Это обуславливается тем, что в нем значительно повышен уровень сывороточных белков. А если рассматривать молоко от больных животных или старого надоя, то их кислотность наоборот на 5-8 °Т будет ниже, чем в молоке от здорового животного. Такие показатели связаны с наличием солей – хлоридов.
Так же на титруемую кислотность, как и на активную, большое влияние оказывают условия, в которых содержится животное, его генетика, питание, порода и состояние здоровья. Например, в том случае если в кормах будет недостаток солей, титруемая кислотность молока будет равняться 23-24 °Т. При таких показателях продукт подвержен быстрому скисанию. По величине титруемой кислотности контролируются технологические процессы изготовления не только молока, но и всех молочных продуктов, которые проходят через молочнокислое брожение.
В отделе химических исследований кислотность молока определяют индикаторным методом по ГОСТ Р 54669-2011 Молоко и продукты переработки молока. Методы определения кислотности (п. 7).
Метод основан на нейтрализации кислот, содержащихся в анализируемом продукте, раствором гидроокиси натрия с пересчетом на градусы Тернера.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 7 проб материала, проведено 21 исследований, выявлено 1 положительных результата.

Листериоз

Возбудитель – Listeria monocytogenes – основной патогенный вид для животных и людей; Listeria ivanovii вызывает аборты у коров, овец, коз и может поражать людей; пять патогенных видов: L. seeligeri, L. innocua, L. welshimeri, L. grayi, L. murrayi.
Морфологически листерии – небольшие грамположительные палочковидные бактерии (0,5,– 2х0,3 – 0,5 мкм) с закругленными краями, спор и капсул не образуют. Подвижны в молодых культурах, выращенных при комнатной температуре. Под влиянием ряда факторов (пенициллин и др.) образуются L-формы, под действием ультрафиолетовых лучей возникают радиорезистентные, а под влиянием стрептомицина – стерептомицино-резистентные мутанты. Листерии – факультртивные аэробы, хорошо растут на обычных питательных средах (оптимальный рН 7,2 – 7,4). На МПА листерии образуют в первые сутки роста мелкие колонии в виде росинок, на МПБ появляется легкое равномерное помутнение. На твердых средах может происходить превращение типичных для листерий S-форм в R-формы колоний.
У L. monocytogenes различают две серологические группы, объединяющие различных в антигенном отношении листерий, что значительно облегчает диагностику Листерии сравнительно активны в биохимическом отношении. В отличие от рожистой палочки дают положительную пробу на каталазу: при добавлении к культуре листерий перекиси водорода последняя разлагается с выделением пузырьков кислорода.
С помощью листериозных бактериофагов производятся идентификация, типизация и обнаружение (в реакции нарастания титра фага) листерий.
L. monocytogenes патогенен для белых мышей, морских свинок, кроликов, пеструшек; L. ivanovii – для белых мышей. Для L. monocytogenes характерна положительная проба Антона – кератоконъюнктивит при нанесении культуры листерий на конъюнктиву глаза морской свинки или кролика.
Бактериологическая диагностика включает микроскопию исходного материала, посевы на питательные среды, идентификацию выделенных культур по культурально-биохимическим, тинкториальным и серологическим свойствам, а также постановку биологической пробы на лабораторных животных. Для ускоренной диагностики листериоза можно применять прямой и непрямой методы флюоресцирующих антител (ИФА). Листериозными бактериофагами 2А и 4А можно идентифицировать более 85% культур листерий и определить их серогрупповую принадлежность. Серологическую идентификацию листерий проводят путем постановки пластинчатой РА с поливалентной и серогрупповыми (первой и второй) листериозными агглюгинирующими сыворотками.
С целью выявления скрыто больных и листерионосителей сыворотки крови исследуют в РА, РСК и РНГА. Дифференциацией листериозных 19S-, 7S-антител удается отличить свежий инфекционный процесс от скрытого бактерионосительства и хронических малосимптомных форм болезни. При исследовании парных сывороток нарастание титра в 2 – 4 и более раза подтверждает диагноз на листериоз.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 120 исследований.

Микоплазмоз КРС, свиней: лечение, симптомы, профилактика
Данное инфекционное заболевание относят к наиболее опасным и распространенным на территории РФ. Чаще всего диагностируют микоплазмоз КРС и свиней, однако также патология может поражать птиц. Особенность заболевания в том, что его возбудителями являются микроорганизмы, у которых отсутствует стенка клетки. Из-за этой особенности микоплазмоз плохо лечится традиционными антибиотиками предыдущих поколений, а потому требует применения новейших эффективных препаратов. Отсутствие своевременного ветеринарного вмешательства чревато развитием множества осложнений, приводящих хозяйства к крупным экономическим убыткам. Летальность может составлять 10-15% от общего числа больных особей.
Причины микоплазмоза животных
В природе существует более 10 видов микоплазм – микроорганизмов, схожих с бактериями, однако отличающихся по структуре. К основным причинам, вызывающим заболевание, относят:
- нарушение гигиены в месте содержания животных;
- сырость, повышенная влажность воздуха в помещениях;
- снижение иммунитета отдельных особей из-за плохого микроклимата, питания;
- покупка в стадо зараженной особи со скрытыми клиническими проявлениями болезни (инкубационный период микроорганизмов достигает 27 дней).
Заражение происходит аэрогенным путем – при дыхании. Особенно чувствительны молодые особи. Чаще всего болеют поросята в возрасте от 3 до 10 недель. Микоплазмоз телят обычно развивается в 15-60-дневном возрасте.
Симптомы микоплазмоза
Среди общих проявлений патологии выделяют:
- воспаление, болезненность коленных и запястных суставов с образованием свищей;
- хромота;
- покраснение глаз;
- апатия, отсутствие аппетита;
- повышение температуры тела до 40,1-40,5°С;
- чихание, слизистые выделения из носа;
- кашель, затрудненное дыхание (чаще у поросят).
У взрослых коров болезнь поражает вымя, поэтому молоко приобретает желтый цвет, его консистенция становится неоднородной, а объем удоев падает.
Заражение приводит к многочисленным осложнениям:
- у коров – маститам, эндометритам, вульвовагинитам, преждевременному прерыванию беременности, рождению слаборазвитого потомства;
- у телят – артритам, пневмониям, менингитам, ринитам, конъюктивитам;
- у быков – эпидидимитам, орхитам;
- у свиней – воспалению легких, респираторным заболеваниям
При отсутствии лечения у коров может развиться бесплодие. Поросята с респираторными осложнениями могут погибнуть от удушия. Микоплазмоз кур начинается с проявления респираторных симптомов
Диагностика
Диагноз ставят на основе внешнего осмотра, клинических проявлений и лабораторных исследований тканей, выделений, абортированных или мертворожденных плодов. В лаборатории для обнаружения возбудителя используют метод ПЦР.
Лечение микоплазмоза
Единственным эффективным методом лечения является применение антибиотиков. При микоплазмозе используют препараты последнего поколения, так как к традиционным антибиотикам у микроорганизмов, вызывающих микоплазмоз, вырабатывается резистентность.

Емкости с пробами биологического материала должны быть упакованы и опечатаны. К пробам прилагается сопроводительное письмо. В нем указываются: дата, время отбора проб, дата последней вакцинации восприимчивых животных, адрес в пределах места нахождения и наименование хозяйства, перечень проб, телефоны, адрес электронной почты специалиста госветслужбы, осуществившего отбор проб. При направлении проб крови от восприимчивых животных к сопроводительному письму должна прилагаться опись проб крови с указанием порядковых номеров проб, инвентарных номеров или кличек восприимчивых животных, их пола и возраста, даты последнего введения восприимчивым животным живых вакцин или иммунобиологических лекарственных препаратов-аллергенов, а также даты отела или даты планового отела коров/нетелей, от которых отобраны пробы крови.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 3 пробы, проведено 7 исследований.

Общая токсичность кормов

Чтобы обеспечить успешное производство животноводческой и птицеводческой продукции, необходимо уделять особое внимание качеству и безопасности используемых для кормления животных кормов. Почему этот продукт может стать токсичным?
В процессе хранения кормов может возникнуть ухудшение их качества по химическим и биологическим показателям. Токсичность кормов является основной причиной развития токсикозов у животных и птиц, поэтому необходимо своевременно и регулярно проводить исследования кормов на определение токсичности.
Общая токсичность – свойство кормов и кормовых добавок, характеризующее содержание токсичных веществ выше допустимого уровня, которое может вызвать заболевание или гибель животных. Отравления вызывают отдельные ядовитые растения, ядовитые семена, кормовые средства с заведомо известными токсическими свойствами при их неправильном применении, а также корма, загрязненные отдельными агрохимикатами.
Кроме того, отравления могут возникнуть при использовании корма, пораженного грибками и другими макро- и микроорганизмами. В зависимости от механизма воздействия грибов на организм кормовые заболевания (или микотические заболевания) животных разделяются на микозы и микотоксикозы. Для микозов характерным является то, что грибы, попадающие в организм с кормом, прорастают и размножаются в тех или иных органах и тканях и оказывают как местное, так и общее действие на организм. Микотоксикозы отличаются тем, что воздействие оказывают токсины, выделяемые развивающимися на кормах грибами.
Кормовые отравления животных причиняют значительный ущерб хозяйству, а употребление в пищу зараженной продукции от таких животных приводит к отравлениям людей. Общая токсичность в кормах для всех видов животных и птицы не допускается, токсичные корма не подлежат скармливанию.

В отделе химических исследований общую токсичность кормов определяют методом биотестирования на стилонихиях, а также методом биотестирования на кроликах и мышах по ГОСТ 31674-2012 Корма, комбикорма, комбикормовое сырье. Методы определения общей токсичности.
Метод биотестирования на стилонихиях основан на извлечении из исследуемых кормов различных фракций токсических веществ параллельно ацетоном и водой с последующим воздействием этих экстрактов на стилонихий. Оценку результату биотеста дают по реакции гибели инфузорий. Безопасным в этом случае следует считать определенный как нетоксичный ацетонового, так и водного экстракта.
Метод биотестирования на кроликах (кожная проба) и мышах (острый опыт) дает возможность учесть дермонекротическое действие на пищеварительную систему теплокровных животных. Результат определяют по совокупности реакций в обоих методах: корм нетоксичный (нетоксичен в обоих тестах), корм токсичный (токсичен хотя бы в одном тесте).

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 3 проб материала, проведено 10 исследования, выявлено 2 положительных результата.

Сап - заразное заболевание цельнокопытных (лошадь, осел, мул), протекающее преимущественно в хронической форме и пе­редающееся человеку. В органах (лимфатические узлы, легкие, печень и др.) изменения возникают в виде типичных санных узелков различной величины.
Морфология возбудителя (Pseudomonas mallei) - палочка с за­кругленными концами, длиной 1—5 мкм, с характерным зерни­стым строением. Бактерия полиморфна: может иметь коккообразные, вздутые формы; микроб часто располагается нитями, принимает вид палочек с неправильными контурами. Нити из бактерий средней длины, состоят обычно из 4—8 члеников. Обнаружены фильтрующиеся формы, которые при пассаже на животных восстанавливаются в типичные формы. Палочка са­па грамотрицательна, окрашивается водно-спиртовыми раствора­ми анилиновых красок со щелочными растворами, со щелоч­ными протравами. Наблюдаются биполярные и неравномерно окрашенные палочки. При электронной микроскопии видны светлые участки протоплазмы и плотные гранулы. Спор и кап­сул палочка не образует. Является факультативным аэробом.
Лабораторная диагностика сапа: материалом для исследования могут служить:
- стерильно взятые носовые выделения;
- гнойное отделяемое язв;
- пунктаты подкожных абсцессов;
- кусочки органов из трупа;
- лимфатические узлы.
Консервирование материала возможно 30%-ным стерильным глицерином.
Микроскопическое исследование: микроскопия мазков из пато­логического материала ввиду отсутствия специфических мето­дов окраски бактерии сапа имеет ограниченное диагностиче­ское значение, но важна для исключения других возбудителей. Мазок окрашивают по Граму и по Романовскому-Гимзе. Бактериологическое исследование: посевы материала произво­дят на глицеринизированный картофель, мясо-пептонный агар и бульон. На картофельно-глицериновой среде через 3—4 дня наблюдается характерный рост возбудителя сапа в виде янтар-но-коричневого цвета слизистого налета. К 6-8-му дню куль­тура становится мутной, красноватого оттенка. Чистую культу­ру получить не всегда удается, так как посторонняя флора препятствует росту палочки сапа. При хроническом сапе бак­териологическое исследование часто дает отрицательный резуль­тат. Для идентификации возбудителя учитывают его:
- биохимические свойства;
- агглютинабельность;
- патогенность для лабораторных животных.
Биологической пробой заражаются морские свинки (самцы), хо­мяки, кошки. Исследуемый материал можно вводить подкожно (если он не загрязнен), но более надежно внутрибрюшное за­ражение. Через 3—5 дней у зараженного самца развивается орхит. Через 8—15 дней большая часть свинок погибает. На высоте заболеваний свинок забивают и производят бактериологиче­ское исследование органов и тканей.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведены исследования по выявлению ДНК генетически модифицированных ингредиентов растительного происхождения в кормах, выявление микроорганизмов в пищевой продукции. Положительных случаев не выявлено.

Cуши и роллы, готовятся из ингредиентов, основная часть которых не подвергается тепловой обработке, поэтому данная категория блюд относится к скоропортящимся. Широкое использование в рецептурах свежей или малосоленой рыбы, еще больше увеличивает риски употребления данных блюд. Известно, что рыба может быть источником и носителем патогенной и условно-патогенной микрофлоры и при неправильном хранении вызывать пищевые отравления.  Наиболее частыми возбудителями отравлений рыбой являются стафилококки, вибрионы, бациллы, сальмонеллы, листерии и клостридии. Данные кулинарные особенности японской кухни делают строгим и обязательным контроль рыбы и морепродуктов, используемых в качестве ингредиентов суши и роллов.
Необходимо учитывать, что технология приготовления суши и роллов блюд предполагает исключительно ручные операции: например: формование роллов осуществляется с помощью бамбуковой циновки, качественное мытье и дезинфекция которой практически невозможна. Поэтому применение некондиционного сырья и полуфабрикатов, нарушение условий и сроков хранения, несоблюдение сотрудниками правил личной гигиены и производственной санитарии может вызвать заболевания желудочно-кишечного тракта человека.
Одним из основных исследований на микробную безопасность — это определение общего микробного числа (КМАФАнМ). Данный показатель демонстрирует общее содержание микробов в исследуемом сырье или блюде, и его максимальное значение определено нормативными документами. Контроль общего микробного числа используется на всех этапах переработки и производства продукции, в том числе упаковку и фасовку, что дает возможность отследить микробиологическую чистоту ингредиентов, оборудования и пр. Увеличенное значение КМАФАнМ является индикатором размножения микрофлоры, среди которой может присутствовать и патогенная, вызывающая порчу продукта и как следствие пищевые отравления. Показатель КМАФАнМ характеризует качество, свежесть и безопасность продуктов питания. превышение нормы- низкий уровень санитарно-гигиенических условий на производстве, нарушение режимов хранения и транспортировки продукта.
Обнаружение БГКП (колиформные бактерии) в пищевых продуктах свидетельствует об их фекальном загрязнении. Данные бактерии могут попадать в продукты из воды, с оборудования, рук рабочего персонала и из других источников, что свидетельствует о неудовлетворительном общем санитарном состоянии производства.
Для обеспечения выпуска безопасной и качественной продукции необходимо соблюдение ряда факторов: высокое качество исходного сырья; правильно подобранные температурные режимы обработки сырья; соблюдение режимов технологического процесса производства роллов и суши; соблюдение санитарно-гигиенических условий производства продукта; соблюдение режимов холодильного хранения в цепи производитель — предприятия торговли — потребитель.