Трипаносомозы (случная болезнь) – протозойные болезни животных, протекающие преимущественно хронически.

Возбудитель случной болезни – Trypanosoma equiperdum, поражающая слизистые оболочки половых органов, регионарные лимфатические узлы и сосуды, кровеносные капилляры. Основной вред – нарушение работы половых органов, приводящее к бесплодию. Также отмечается поражение нервной системы токсинами трипаносом.

Источником заражения выступают больные животные. Заражение восприимчивых животных происходит половым путем при случке или искусственном осеменении спермой, содержащей возбудителя. Жеребята могут заражаться во время родов через слизистую оболочку или через молоко от больных кобыл. Передача возбудителя происходит через инвентарь, предметы ухода и с помощью насекомых.

Болезнь протекает в любое время года обычно хронически. Клинические признаки часто развиваются в определенной последовательности. В первые 30-40 дней после заражения – период отеков слизистых оболочек органов, на них и коже появляются узелки, язвочки, на месте заживления которых образуются беспигментные пятна.

Затем следует период, когда образуются специфические для этой болезни припухлости кожи, так называемые «талерные бляшки» размером от 4 до 20 см. Характерно их внезапное появление и исчезновение. Животные обычно худеют, кобылы абортируют.

И третий период – период параличей. Появляются парезы и параличи двигательных органов, чаще лицевых: искривляются губы, отвисает ухо. Лошадь хромает, слегка приседая при проводке.

Диагноз на трипаносомоз ставят на основании эпизоотологических, клинических, патологоанатомических данных и результатов лабораторных исследований.

В серологическом отделе исследование сывороток крови животных на случную болезнь проводят в реакции связывания комплемента (РСК), согласно Методическим указаниям по лабораторным исследованиям на трипаносомозы лошадей, верблюдов, ослов, мулов и собак № 13-7-3/150 от 06.09.1994г, пункт 4.2. При получении положительного результата, диагноз на случную болезнь считают установленным. Животных, у которых получены сомнительные результаты в РСК, исследуют повторно через 1 месяц. При получении вторично сомнительных результатов животных считают положительно реагирующими.

За отчетный период в отдел химических исследований поступила 51 проба, проведено 314 исследований.

Метод определения мышьяка в продуктах питания

Мышьяк – это металлоид, неорганические соединения которого проявляют токсические свойства при накоплении в организме человека. Этот химический элемент очень распространен в природе в составе металлических руд, откуда он попадает в воду, растения и атмосферу. Несмотря на то что соединения мышьяка традиционно ассоциируются с отравлением, каждый человек ежедневно потребляет его в количестве около 20-50 мкг с продуктами питания. Он присутствует в яблоках, томатах, красном вине, шоколаде, свинине, курином мясе, муке. Особенно богаты мышьяком морепродукты. В продуктах питания мышьяк находится в своей нетоксичной форме в виде органического соединения арсенобетаина. Неорганические соединения мышьяка (арсениты и арсенаты) могут стать причиной клинически выраженной интоксикации.
В отделе химических исследований для определения мышьяка в продуктах питания применяют атомно-абсорбционный метод.
Этот метод основан на минерализации продукта смесью кислот и реагентов - окислителей одним из трех способов (сухое озоление, автоклавная минерализация или кислотная экстракция), проведении реакции гидрирования мышьяка в полученном растворе - минерализате с помощью боргидрида натрия, отгонки летучего гидрида мышьяка потоком аргона в разогретую кварцевую кювету - атомизатор и измерении доли мышьяка атомно-абсорбционным методом по величине атомного поглощения на резонансной длине волны 193,7 нм. Исследование проводят на спектрометре атомно-абсорбционном «КВАНТ-2А».

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 2159 проб материала, проведено 2162 исследования, выделено 7 положительных случаев.

Диктиокаулёз - гельминтозная болезнь парнокопытных и непарнокопытных животных, вызываемая раздельнополыми нематодами из рода Dictyocaulus, паразитирующими в бронхах и трахее.  D. filaria –паразитирует у овец и коз, верблюдов, а также некоторых диких жвачных. D. viviparus паразитирует у крупного рогатого скота. Диктиокаулюсы – геогельминты. В бронхах жвачных откладывают яйца, которые с бронхиальной слизью переносятся в ротовую полость животного и заглатываются.  В тощей кишке из яйца вылупляются личинки 1-й стадии и вместе с фекалиями выделяются наружу. При благоприятной температуре окружающей среды и достаточной влажности личинки совершают двукратную линьку и становятся инвазионными.
Животные заражаются личинками диктиокаулюсов в основном на пастбищах с травой, вблизи кошар и во время водопоя. Личинки из полости тощей кишки проникают в подслизистую, затем попадают в лимфатические и кровеносные сосуды, по которым совершают миграцию через печень, сердце, легкие, проникают в бронхи, где вырастают до половозрелой стадии. Продолжительность жизни взрослых гельминтов у овец от нескольких месяцев до двух лет, а у крупного рогатого скота от 1,5 до 12 мес.
Симптомы болезни. В соответствии с развитием патогенеза болезни вначале отмечают сухой болезненный кашель, переходящий во влажный. Из носовой полости выделяется серозно-слизистое истечение, дыхание поверхностное и учащенное. Под влиянием гельминтов эпителиальные клетки бронхов разрушаются, скапливается слизь, и в этой среде развивается гноеродная микрофлора, что обусловливает гнойную бронхопневмонию. В зависимости от интенсивности миграции личинок в подслизистом слое тощей кишки нарушается функция пищеварения, отмечаются поносы, фекалии выделяются с прожилками крови и обилием слизи.
Патологоанатомические изменения. Наблюдаются истощение, характерные поражения задних долей легких. Бронхи и нередко трахея заполнены слизью или пенистой жидкостью, в которой содержатся собранные в комки гельминты. Слизистая оболочка бронхов гиперемирована, имеются кровоизлияния, Изменения могут быть в виде катарального бронхита, катарально-очаговой или гнойно - некротической пневмонии. Как правило, у павших животных по краям легких (задних долей) обнаруживаются участки ателектаза. У молодняка крупного рогатого скота эти участки бывают обширными, происходит окоченение, на разрезе структура легких зернистая, типа крупозного воспаления.
Диагностика. Диагноз ставят на основании комплексных исследований с учетом эпизоотологических данных, симптомов болезни и лабораторных данных.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 968 исследований.

Ингибирующие вещества – это общее наименование химических веществ и соединений, которые препятствуют или задерживают развитие разного рода бактерий в пищевых продуктах. К числу ингибирующих веществ относят: антибиотики, пестициды, моющие и дезинфицирующие средства, консерванты, нейтрализующие вещества.
Возможными источниками попадания ингибиторов в молоко являются: нарушения в браковке молока при лечении животных; санитарная обработка доильного и молочного оборудования; использование некачественных кормов; попадание ряда химических веществ в корм.
Исследование молока на наличие ингибирующих веществ – необходимый этап при контроле качества, так как молоко, содержащее данные вещества, не подходит для приема в пищу и для дальнейшей переработки. 
Молоко, содержащее ингибирующие вещества, нельзя использовать в пищу или для дальнейшей переработки. Ингибирующие вещества могут как нанести серьезный вред здоровью человека, так и нарушить процесс производства.
Моющие средства негативно влияют на процесс сквашивания при производстве кисломолочных продуктов и сыра.
Пестициды оказывают негативное воздействие на организм человека. Наличие абсолютного большинства пестицидов не допускается, а уровень хлорорганических пестицидов не должен превышать 0,05 мг/л.
Антибиотики вызывают аллергические реакции у человека и вырабатывают устойчивость к их применению, что затрудняет лечение воспалительного процесса. При этом стрептомицин и тетрациклин обладают токсичным действием. Стрептомицин негативно влияет на нервную систему, а тетрациклин вызывает повреждения печени, нарушения в работе нервной системы и изменение состава крови.
Антибиотики влияют и на производственный процесс, ингибируя микрофлору, что приводит к финансовым потерям. При производстве сыра и творога антибиотики нарушают сычужное свертывание молока, что приводит к ухудшению качества конечного продукта.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 127 проб, проведено 933 исследования.

Определение массовой доли общего фосфора в мясной продукции

Фосфор – основной компонент всех растительных и животных клеток и, следовательно, присутствует во всех пищевых продуктах. В целом продукты, богатые белком, также богаты и фосфором. Мясо, птица, рыба, яйца, молоко и зерновые продукты являются хорошими источниками фосфора.
Этот элемент входит в состав белков, фосфолипидов, нуклеиновых кислот. Кроме пластической роли, соединения фосфора принимают участие в обмене энергии.
Фосфаты - смеси различных солей фосфорной кислоты, предназначенные для регулирования функционально - технологических свойств мясных эмульсий и действуют как синергисты поваренной соли. Фосфаты, вызывая изменение рН среды, повышая ионную силу растворов и, связывая Са в системе актомиозинового сокращения, обеспечивает интенсивное набухание мышечных белков, увеличивают уровень водосвязывающей и эмульгирующей способности, повышают вязкость фарша, тормозят окислительные процессы в жире.
В отделе химических исследований массовую долю фосфора определяют фотометрическим методом по ГОСТ 32009-2013 Мясо и мясные продукты. Спектрофотометрический метод определения массовой доли общего фосфора.
Метод основан на высушивании навески, озолении остатка с последующим охлаждением и гидролизом золы азотной кислотой, фильтровании, разбавлении фильтрата смесью монованадата аммония и гептамолибдата аммония с образованием соединения желтого цвета и фотометрическом измерении оптической плотности при длине волны 430 нм.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 669 проб материала, проведено 805 исследований, выделено 16 положительных случая.
Бактериологический анализ крови для животных (на стерильность, бакпосев)
Цель исследования - выявление наличия микроорганизмов в кровеносной системе, которые могут возникать при различных заболеваниях и представлять опасность. Бактериологический анализ крови для животных помогает идентифицировать болезнетворные бактерии, циркулирующие в кровеносной системе. Также исследование позволяет определить антибиотикочувствительность микроорганизмов.
Бактериемию, то есть проникновение бактерий в кровеносную систему при инфекциях (сепсисе), способны вызвать практически любые микроорганизмы:
- грамотрицательные (Escherichia coli, виды Klebsiella, Enterobacter, Serratia, Proteus, Pseudomonas aeruginosa);
- грамположительные бактерии (Staphylococcus aureus, S.epidermidis и S. Saprophyticus).
Бактериологический анализ крови для животных делается любым питомцам вне зависимости от вида и породы.
Когда делают бактериологический анализ крови для животных, в первую очередь бактериологический анализ крови для животных сдают при:
- лихорадках;
- снижении иммунитета;
- подозрении на заражение крови;
- длительном повышении температуры;
- лейкоцитозе (особенно со сдвигом влево) и гранулоцитопении.
Поскольку однократное исследование при бактериологическом анализе крови для животных может быть мало результативным, необходимо проводить серии из двух и более исследований.
Важно, что бактериологический анализ крови для животных нужно сдавать до начала лечения антибиотиками.
Точность результатов зависит не только от используемых реактивов и аппаратуры, но и от времени и правильности сбора исследуемого материала.
Процедура проведения бактериологического анализа крови для животных
Сначала у пациента берут материал из вены. Спиртом, затем йодом обрабатывают место взятия и берут материал шприцом. При этом необходимо продезинфицировать сам флакон с питательной средой, обработав его йодом и положив сверху ватку, пропитанную спиртом. Материал в шприце переносится в питательную среду новой иглой через ватку. Флакон подписывается и убирается в холодильник.
Далее делают посев на жидкие питательные среды: желчный бульон, сахарный бульон, жидкие и полужидкие среды, чтобы вырастить микробы анаэробы. Исследование результатов посева выявляет присутствие бактерий.
Для повышения точности бактериологического анализа целесообразно проводить взятие материала 2 – 3 раза, используя несколько флаконов с питательной средой.
Объем исследуемой материала у крупных питомцев (от 30 кг и выше) 10 – 30 мл, у средних (от 10 до 30 кг) 5 – 10 мл, у мелких питомцев (до 10 кг) 2 - 5 мл. Рекомендуемое соотношение объемов взятого материала и среды 1:3 – 1:10, чтобы устранить бактерицидное действие крови путем ее разведения. Если питомце мелкий, используют флакон с питательной средой объемом 20 мл, если средний - 50 мл, если крупный 100 мл.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1283 исследования.
Блютанг (катаральная лихорадка овец, «синий язык») - вирусная болезнь овец, коз, крупного рогатого скота, верблюдов, буйволов, оленей и других животных, относящихся к семействам полорогих, вилорогих, кабарговых, оленевых, верблюдовых.  Возбудителем блютанга является РНК-содержащий вирус семейства Reoviridae, рода Orbivirus (27 серотипов). Инкубационный период болезни составляет от 5 до 30 календарных дней. Источниками возбудителя являются больные восприимчивые животные.
У восприимчивых животных, за исключением овец, болезнь протекает бессимптомно, при этом выявляемость генома вируса у крупного рогатого скота сохраняется до 120 календарных дней после инфицирования, у других восприимчивых животных - до 60 календарных дней после инфицирования. У овец блютанг протекает остро, подостро или бессимптомно.
Проведение исследований. От восприимчивых животных должны отбираться пробы крови в объеме 10 мл без антикоагулянта или с фактором свертывания крови для серологических исследований и пробы крови в объеме 10 мл с антикоагулянтом. Пробы биологического материала допускается хранить не более 10 календарных дней со дня отбора при температуре от 0 до 4°С, не допуская замораживания.
От трупов восприимчивых животных, абортированных плодов должны отбираться фрагменты (размером 3x3x3 см) селезенки, тканей плода, лимфатических узлов (нижнечелюстные, предлопаточные, мезентериальные - целиком). В случае доставки в лабораторию в течение 12 часов с момента отбора пробы патологического материала допускается хранить при температуре от 0 до 4°С. В иных случаях пробы патологического материала должны быть доставлены в лабораторию в замороженном виде.
Диагноз на блютанг считается установленным, если получен один из следующих результатов: выделен и идентифицирован возбудитель; выявлен антиген возбудителя или его генетический материал.
Лабораторные исследования в целях установления диагноза на блютанг должны проводиться с использованием следующих методов лабораторных исследований:
обратно-транскриптазная полимеразная цепная реакция в режиме реального времени;
вирусовыделение в культуре клеток, на куриных эмбрионах или на не иммунных к блютангу овцах.
Методом ИФА выявляют антитела, специфичных для всех серотипов вируса блютанга в сыворотке, плазме овец, коз, крупного рогатого скота, оленей. В лаборатории исследование проводятся набором «BTV-ИФА-АТ» ФКП «Ставропольская биофабрика» с помощью него возможно обнаружить антитела ко всем серотипам вируса уже через 7-15 дней заражения.
Для установления серотипа возбудителя применяют: конкурентный иммуноферментный твердофазный анализ с использованием моноклональных антител, специфичных к различным серотипам возбудителя; реакция вирус нейтрализации в культуре клеток; нуклеотидное секвенирование.

За отчетный период в серологический отдел поступило 6449 проб сыворотки крови животных, проведено 12501 исследование. Выявлено 5 положительных проб по бруцеллёзу у крупного рогатого скота, 220 положительных проб по лейкозу крупного рогатого скота, 3 положительные пробы по лептоспирозу у лошадей, 9 положительных проб у свиней и 14 положительных проб по лептоспирозу у крупного рогатого скота.
Лептоспироз (Leptospirosis) – инфекционная, природно-очаговая, нетрансмиссивная болезнь многих видов животных, проявляющаяся кратковременной лихорадкой, гемоглобинурией, желтушным окрашиванием и некрозами слизистых оболочек и кожи, атонией желудочно-кишечном тракта, абортами, маститами, рождением нежизнеспособного потомства, снижением продуктивности животных или протекающая бессимптомно. К лептоспирозу восприимчив и человек.
Историческая справка. Впервые болезнь описали в Германии Weil (1886) и в России Н. П. Васильев (1888). В 1914—1915 годах японские исследователи Инада и другие выделили возбудителя заболевания — лептоспиру и отнесли её к спирохетам. В последующие годы были выявлены лептоспирозы во многих странах и изучены их возбудители — различные виды лептоспир. Так, например, в 1916—1918 гг. в Японии была описана 7-дневная лихорадка с возбудителем Leptospira hebdomadis. В 1927 году в Советском Союзе В. А. Башенин описал доброкачественный безжелтушный лептоспироз под названием «водной лихорадки». Возбудитель этой лихорадки Leptospira grippotyphosa был выделен из крови больного в 1928 году С. И. Тарасовым и Г. В. Эпштейном. В изучении вопросов эпидемиологии и профилактики лептоспирозов заслуги ученых В. И. Терских, К. Н. Токаревичу и А. А. Варфоломеевой и другим советским учёным.
Возбудитель – лептоспиры рода Leptospira (греч. leptos – мелкая, speira – спираль), семейства Leptospiroceae порядка Lpirochetales. Известны лептоспиры-паразиты (L. interrogans) и лептоспиры-сапрофиты (L.biflexa). В виды входят многочисленные серологические варианты (серовары). Каждый вариант представлен типовым штаммом. Серовары, близкие в антигенном отношении, объединены в серологические группы. Современный список патогенных лептоспир включает 191 серовар и 24 серогруппы. Сапрофитные лептоспиры представлены 60 сероварами. Эпизоотологическое значение у сельскохозяйственных животных имеют лептоспиры серогрупп Hebdomadis, Sejroe, Romоna, Tarassovi, Canicola.
В темном поле микроскопа лептоспиры имеют вид тонких серебристых нитей с загнутыми концами, обладающих разными движениями. Лептоспир выращивают на жидких, полужидких и плотных питательных средах, включающих сыворотку крови, кролика или барана. Наилучшие условия для культивирования – температура 26 – 28 С и рН 7,2 – 7,4. Факторами патогенности лептоспир являются экзо- и эндотоксины (обуславливающие гемолитическое и цитотоксическое воздействие возбудителя на макроорганизм), плазмокоагулаза, липаза, фибринолитический фермент, эстераза и др.
Реакция микроагглютинации (РМА) — это серологический метод, который используют для диагностики лептоспироза. Для постановки РМА используют 7–14-дневные культуры лептоспир с хорошей подвижностью, без спонтанной агглютинации и посторонних примесей, с концентрацией 50–100 клеток в поле зрения микроскопа.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 23 пробы, проведено 169 исследований.

Метод определения летучих N- нитрозаминов в колбасной продукции
Нитрозамины (НА) – это высокотоксичные азотсодержащие органические соединения.
Мясные продукты являются важным объектом исследования в связи с тем, что в процессе их производства используется нитрит натрия, а амины и другие предшественники НА являются природными составными частями мяса. Следует также отметить, что условия изготовления колбас благоприятствуют протеканию реакции нитрозирования. 
Определенное значение в образовании нитрозаминов имеют специи, применяемые при изготовлении мясных продуктов: перец, паприка, лук, чеснок и др. Добавление их к нитритной посолочной смеси, как правило, приводит к образованию нитрозодиметиламина (НДМА) и нитрозодиэтиламина (НДЭА) в продукции. 
Помимо указанных выше причин, установлено, что НА могут попадать в продукты в результате контакта продуктов с упаковочным материалом и тарой.
Вред нитрозаминов слишком ощутим, чтобы игнорировать. Даже очень маленькие их дозы способны вызвать онкологические заболевания. Они поражают печень, вызывают мутации и в больших количествах могут вызвать кому.
В отделе химических исследований для определения N-нитрозаминов применяют метод тонкослойной хроматографии по МУК 4.4.1.011-93 Определение летучих N-нитрозаминов в продовольственном сырье и пищевых продуктах.
Сущность метода состоит в выделении путем перегонки с паром или в вакууме; экстракции хлористым метиленом НА из водного дистиллята; концентрации экстракта; денитрозировании НА бромистым водородом в уксусной кислоте; алкилировании образовавшихся аминов 8-метокси-5-хинолинсульфонилазиридином (КАЗ), разделении и количественном определении образовавшихся флуоресцирующих 8-метокси-5-[N-(2-N-диэтиламино)] хинолинсульфонамидных производных (КАЭ-производные) в тонком слое силикагеля.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1211 проб материала, проведено 1219 исследований, выделено 29 положительных случаев.

Кандидамикоз – заболевание птицы и животных, сопровождающееся поражением слизистых оболочек, различных органов и тканей. У птицы поражается слизистая ротовой полости (кремово-белые налёты, кровоизлияния), затем процесс распространяется на глотку, гортань, зоб, желудок, кишечник. Глотание затруднено, утолщаются стенки зоба, больная птица вытягивает шею. У молодняка птиц появляется вялость, снижение аппетита, диспепсия, истощение. Птица сидит, нахохлившись, с опущенными крыльями. У 3-4-х недельных цыплят болезнь может протекать остро. Взрослая птица болеет хронически без видимых признаков, наблюдается бледность гребня и бородки.
Характерным для кандидамикоза является то, что представители рода Candida – факультативные паразиты и постоянно обитают на слизистых оболочках желудочно-кишечного тракта птиц. Нередко кандидоз сопутствует какому-нибудь инфекционному заболеванию. Также заболевание может возникнуть в результате неправильного применения антибиотиков. С нормальной иммунной системой особь не заболевает.
Диагноз ставится на основании патологоанатомических и лабораторных исследований.
Для профилактики и лечения заболевания необходимо обеспечить птицу хорошими санитарно-гигиеническими условиями содержания и надлежащим сбалансированным кормлением; предотвратить контакт с больной птицей; проводить своевременную дезинфекцию; отменить на время лечения кормление антибиотиками; применять противогрибковые препараты, пробиотики; следить за эпизоотической ситуацией в птицехозяйствах.
При соблюдении всех мероприятий, направленных на повышение резистентности птицы, заболевание кандидоза не возникнет.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1332 исследования. 

Орнитоз, пситтако́з (от лат. psittacus — «попугай») – это инфекционное заболевание с преимущественно аэрозольным механизмом передачи, характеризующаяся в типичных случаях лихорадкой, интоксикацией и поражением органов дыхания. Возбудитель орнитоза – бактерии Chlamydia psittaci. Они устойчивы к холоду, но чувствительны к действию высоких температур, ультрафиолетовых лучей и дезинфицирующих средств.
Источником и резервуаром C. psittaci являются различные виды синантропных (живущих в населенных пунктах), декоративных и домашних птиц, у которых орнитоз может протекать в острой форме или в виде носительства.  Наибольшее эпидемиологическое значение имеют домашние птицы (особенно утки и индюшки), комнатные птицы (попугаи, волнистые попугайчики, канарейки и другие мелкие певчие птицы) и городские голуби. По данным различных исследований, зараженность орнитозом городских голубей колеблется в пределах 30–80%.
Среди симптомов орнитоза у птиц ринит, диарея, воспаления глаз, заторможенность, вялость, слипание перьев, взъерошенность оперения, отказ от еды. Но чаще наблюдается бессимптомно форма. Внешне такие птицы кажутся вполне здоровыми, но тем не менее они так же, как и больные птицы, способны распространять инфекцию. При непосредственном контакте дикие птицы заражают домашних уток, индеек, кур, что может приводить к возникновению вторичных очагов орнитоза в птицеводческих хозяйствах. Среди наиболее значимых в отношении эпидемиологической опасности представителей пернатых выделяют домашних птиц (особенно уток и индеек), сизых голубей (в том числе городских, полудиких), комнатных декоративных птиц (особенно попугаев и канареек), а также водоплавающих и колониальных диких птиц.
Птицы часто являются бессимптомными носителями возбудителя, когда внешние клинические признаки не проявляются, но возбудитель выделяется из организма во внешнюю среду. Заражение может произойти при контакте с птицей-вирусоносителем с пометом и отделяемым дыхательных путей инфицированных птиц, смешанными с ними пылью, пухом.
Механизм передачи возбудителя преимущественно аэрозольный, путь передачи – воздушно-пылевой. Возможна также реализация фекально-орального механизма с пищевым путем передачи.
Восприимчивость людей к орнитозу высокая, заболеть может любой человек. В группу риска по заболеванию орнитозом входят работники птицефабрик, зоопарков и зоомагазинов, заводчики декоративных птиц, ветеринары, владельцы домашних и декоративных птиц и любители кормить птиц, особенно голубей.
Инкубационный период при орнитозе может достигать 30 дней, но чаще составляет 8-12 дней. Клинические проявления острого орнитоза зависят от формы, всего их выделяют три – пневмоническую, гриппоподобную и тифоподобную.  

Листериоз (Listeriosis) — инфекционная болезнь животных и человека.

Листерия, она же Listeria monocytogenes, — бактерия, которая имеет форму короткой палочки со жгутиками. Листерия не строго анаэробная: ей не требуется для жизни кислород, но при этом она также способна существовать в его присутствии. Хорошая среда для обитания листерий — почва, силосные ямы и кучи, водоёмы со стоячей водой.

К листериозу восприимчивы овцы, козы, крупный рогатый скот, свиньи, лошади, кролики, куры, гуси, утки, индейки. Болеют животные всех возрастов, особо чувствительны молодняк и беременные животные. Отмечены случаи заболевания листериозом кошек, собак и обезьян. Источник возбудителя инфекции — больные и переболевшие животные. Основной резервуар возбудителя в природе — свободноживущие грызуны, являющиеся причиной заражения листериозом сельскохозяйственных животных, чаще всего через воду, корма, загрязнённые выделениями грызунов. Отмечена большая роль некачественного силоса в появлении и распространении листериоза, в особенности у овец. В циркуляции возбудителя листериоза между дикими животными (особенно грызунами), по-видимому, определённую роль играют клещи. В естественных условиях заражение листериозом, очевидно, происходит через слизистую оболочку носовой и ротовой полостей, конъюнктиву, пищеварительный тракт, повреждённую кожу. Листериоз проявляется спорадически, реже — в виде эпизоотии, у овец носит сезонный характер, проявляется в зимне-весенний период, что связано с активизацией механизма передачи возбудителя (миграция грызунов-листерионосителей к животноводческим помещениям и складам кормов) со снижением неспецифической резистентности организма. Для листериоза характерна также стационарность.

Инкубационный период 7—30 суток. Течение острое, подострое и хроническое. Листериоз проявляется в несколько формах: нервной, септической, смешанной, бессимптомной, а также с преимущественным поражением половых органов и вымени. У крупного рогатого скота чаще поражается нервная система. Болезнь начинается угнетением, вялостью, снижением аппетита. Через 3—7 суток у животных отмечают некоординируемые движения, судороги, приступы буйства, парезы нижней челюсти и отдельных групп мышц, потерю зрения, конъюнктивит. Температура тела повышается или остаётся в пределах нормы. Длительность болезни до 10 суток. Поражение половой системы проявляется абортами, задержанием последа, метритами. Иногда возникает мастит. У телят листериоз чаще всего протекает в виде септицемии. У овец и коз также поражается нервная система. Вначале отмечают необычное поведение животного, снижение аппетита, сонливость, конъюнктивит и ринит. Температура тела повышается до 40,5—41°C или остаётся в пределах нормы. Через 1—2 суток появляются признаки поражения нервной системы: круговые движения, потеря равновесия, судороги, искривление шеи, расширение зрачков, потеря зрения. Болезнь длится от несколько часов до 10 суток. У ягнят чаще наблюдают септицемическую форму (поносы, лихорадка). У беременных овец и коз возникают аборты и маститы. У взрослых свиней отмечают исхудание, анемию, кашель, нарушение координации движений, абсцессы в различных органах и тканях, аборты и рождение мёртвых поросят. У поросят чаще наблюдают поражение нервной системы: расстройство координации движений, манежные движения, мышечную дрожь, судороги, возбуждение.

Листерии нелегко уничтожить с помощью термической обработки: они выживают в течение 20–30 минут при 70 °C и 3–5 минут при 100 °C. Однако бактерия становится неактивной при воздействии на неё обычными дезинфицирующими средствами.

Диагноз ставят на основе серологических исследований (РСК). Лечение более успешно в начальный период болезни.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 168 проб, проведено 941 исследование. 
За отчетный период выявлен 1 положительный результат:
В 1 пробе отрубей установлена общая токсичность 

Пестициды в плодах и овощах

Пестициды играют важную роль в сельском хозяйстве, без них уже многие годы не выращиваются овощи и фрукты. О вреде высоких доз таких веществ для здоровья человека стало известно не сразу, поэтому некоторое время их использование было по большому счету неконтролируемым. И именно это вызвало страх, который часто и сегодня останавливает людей включать в рацион достаточное количество зелени, овощей и фруктов.
Пестицидами называют химические вещества, которые используются в сельском хозяйстве для защиты растений. С их помощью можно предотвратить болезни овощей и фруктов (фунгициды), избавиться от вредителей (инсектициды) и сорняков (гербициды). Сегодня зарегистрировано более 3000 таких веществ, и их токсичность часто зависит от класса: например, Всемирная организация здравоохранения отмечает, что инсектициды часто более вредны, чем гербициды.
Пестициды могут быть синтетического и органического происхождения (биопестициды). Однако специалисты уверяют, что вред могут нанести и первые, и вторые. А пометка «органическая продукция» говорит лишь о том, что в процессе выращивания не использовались именно синтетические вещества.
О вреде пестицидов для человека разговоры идут уже давно. Ранее их связывали с повышенным риском развития онкологических болезней, аутизма и других нарушений. И исследования последних лет подтверждают, что высокие дозы химикатов действительно способны существенно повлиять на здоровье.
Как уже отмечалось, пестициды действительно несут вред здоровью, но только в том случае если речь идет о высоких дозах. Но насколько это актуально для современного сельского хозяйства? В 2001 году была сформулирована Стокгольмская конвенция о стойких органических загрязнителях, в которой страны обязались прекратить производить и использовать наиболее опасные пестициды, например ДДТ. Россия подписала конвенцию в 2004 году. Поэтому уже более 15 лет вредные химикаты в сельскохозяйственных целях не используются.
Более того, фиксируемые сейчас остатки пестицидов в овощах и фруктах часто не превышают даже минимально допустимую дозу. Всемирная организация здравоохранения говорит о том, что наибольшему риску подвержены те люди, которые имеют непосредственный контакт с веществами – производители, фермеры и прочие. А вот потребители овощей и фруктов сегодня не могут получить значимую для здоровья дозу вредных веществ. 
В отделе химических исследований содержание пестицидов в плодах и овощах определяют методом ТСХ по ГОСТ 30349-96, п. 4. Метод основан на экстракции пестицидов органическим растворителем из продукта, очистке экстракта, упаривании его досуха и хроматографировании в тонком слое. Метод предназначен для анализа содержания остаточных количеств пестицидов ДДТ и его метаболитов, гамма-ГХЦГ.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 845 проб материала, проведено 880 исследований, выделено 5 положительных случая.
Согласно современной классификации S. enterica делится на 6 подвидов enterica, salamae, arizonae, diarizonae, houtenae и indica, которые дифференцируют по биохимической активности и обозначают цифрами I, II, IIIa, IIIb, IV и VI соответственно.
Непатогномоничность симптоматики сальмонеллеза диктует необходимость подтверждения предположительного клинического диагноза результатами лабораторных исследований взятого патологического материала.
Результативность бактериологического исследования повышает применение для первичных посевов обогатительных и селективных сред. В тех случаях, когда титр сальмонелл в тестируемом материале низок (при бессимптомном сальмонеллоносительстве, длительной транспортировке, многократном размораживании, пересыхании или перегреве материала, предназначенного для исследований) рекомендуется предварительно помещать пробы в забуфференную пептонную воду в соотношении 1:2 - 1:10. Смесь инкубируют 15 - 20 ч при 37 ºС. Это ведет к восстановлению жизнеспособность не только S. enterica, но и других видов бактерий, что крайне нежелательно. Поэтому при отсутствии необходимости данный этап пропускают, сразу же делая первичный посев поступивших в лабораторию проб на жидкую или полужидкую обогатительную среду (Раппапорта-Вассалиадиса, тетратионатный, селенитовый или селенит-цистеиновый бульоны и др.). Обогатительные среды пригодны для выращивания разных сероваров S. enterica в неодинаковой степени. В связи с этим имеет смысл одновременно делать первичный посев, по меньшей мере, на 2 среды. С одной стороны это ведет к лишним затратам расходных материалов и труда, но в конечном итоге экономит время, поскольку позволяет избежать повторного проведения данного этапа бактериологического исследования, который занимает от 6 до 24 ч. Иногда культивирование на обогатительных средах проводят при повышенной температуре (41,5…43 ºС), стремясь сократить его продолжительность и предотвратить рост термочувствительных контаминантов. Однако не следует забывать о том, что некоторые серовары сальмонелл (особенно S. dublin) не растут в таком температурном режиме. Далее следует пересев на плотные селективные среды (желче-солевую лактозную, Эделя- Кампельмахера, дезоксихолатную цитратную, лизиновуюя с железом, висмут-сульфитную и другие агаровые среды) - они препятствуют размножению посторонней микрофлоры, но обеспечивает рост сальмонелл. Продолжительность инкубации посевов на таких средах составляет 18 - 72 ч при 37 ºС.
Традиционно применяемые в лабораторной практике и современные методы позволяют эффективно диагностировать сальмонеллез и идентифицировать его возбудителя. Лабораторными анализами не следует пренебрегать ни в одном случае, когда имеются анамнестические и/или клинические основания подозревать данную инфекцию, поскольку правильно поставленный диагноз - основа эффективного лечения и профилактики ее распространения. Последнее обстоятельство особенно важно, поскольку бессимптомно инфицированные S. enterica люди и животные формируют резервуар сальмонелл.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 680 исследования.

Грипп птиц — высококонтагиозная вирусная болезнь птиц, характеризующаяся поражением кровеносной и центральной нервной систем, органов дыхания, пищеварения, выделения и яйцеобразования. Возбудителем болезни является РНК-содержащий вирус, относящийся к семейству ортомиксовирусов, роду вируса гриппа А.
Характерными клиническими признаками вируса гриппа птиц являются снижение продуктивности, угнетенное состояние, отказ от корма и воды, взъерошенность оперения, цианоз кожных покров, отек межчелюстного пространства, наличие подкожных кровоизлияний на конечностях, нарушение координации движений, синусит, ринит, конъюнктивит, диарея. Возможно бессимптомное течение болезни у вакцинированных против гриппа птиц, а также у диких водоплавающих птиц.
Характерными патологоанатомическими изменениями при ВГП являются кровоизлияния в подкожной клетчатке, слизистых и серозных оболочках, головном мозге, паренхиматозных органах, застойная гиперемия в органах и тканях.
Лабораторные исследования проб биологического, патологического материала проводятся с использованием методов исследования: выделение возбудителя с использованием вирусологического метода исследований на свободных от специфических патогенов, развивающихся эмбрионах кур или в чувствительной культуре клеток с его идентификацией в реакции торможения гемагглютинации, выявление генетического материала возбудителя методом полимеразной цепной реакции, выявление антигена возбудителя методами иммуноферментного анализа и в реакции диффузионной преципитации, выявление антител к возбудителю серологическими методами РТГА, ИФА, РДП.
Диагноз считается установленным, если получен один из следующих результатов:
выделен и идентифицирован возбудитель; выявлена РНК, специфичная для возбудителя.
Для выявления вируса гриппа птиц в лаборатории направляют биологический материал (трахеальные (ротоглоточные), клоакальные смывы (мазки), сыворотка крови, сборные пробы помет). Патологический материал (от трупов птиц отбирается: головной мозг, селезенка, трахея, легкие, сердце, почки, участки кишечника вместе с содержимым, перевязанные лигатурами). Участки кишечника отбираются отдельно от других внутренних органов. Допускается направление трупов птиц целиком. Так же проводятся исследования пищевой продукции, кормов с целью выявления вируса гриппа птиц.