Новости

Отчетный период с 14.06.2024г. по 20.06.2024г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 5335 проб сыворотки крови животных, проведено 14258 исследований. Выявлено: 31 положительная проба крупного рогатого скота по бруцеллезу, 47 положительных проб по лептоспирозу (у крупного рогатого скота – 18 положительных проб, у мелкого рогатого скота – 7 положительных проб, у лошадей – 22 положительных пробы), 189 положительных проб по лейкозу крупного рогатого скота.

Трипаносомозы (случная болезнь) – протозойные болезни животных, протекающие преимущественно хронически.
Возбудитель случной болезни – Trypanosoma equiperdum, поражающая слизистые оболочки половых органов, регионарные лимфатические узлы и сосуды, кровеносные капилляры. Основной вред – нарушение работы половых органов, приводящее к бесплодию. Также отмечается поражение нервной системы токсинами трипаносом.
Источником заражения выступают больные животные. Заражение восприимчивых животных происходит половым путем при случке или искусственном осеменении спермой, содержащей возбудителя. Жеребята могут заражаться во время родов через слизистую оболочку или через молоко от больных кобыл. Передача возбудителя происходит через инвентарь, предметы ухода и с помощью насекомых.

Болезнь протекает в любое время года обычно хронически. Клинические признаки часто развиваются в определенной последовательности. В первые 30-40 дней после заражения – период отеков слизистых оболочек органов, на них и коже появляются узелки, язвочки, на месте заживления которых образуются беспигментные пятна.

Затем следует период, когда образуются специфические для этой болезни припухлости кожи, так называемые «талерные бляшки» размером от 4 до 20 см. Характерно их внезапное появление и исчезновение. Животные обычно худеют, кобылы абортируют.

И третий период – период параличей. Появляются парезы и параличи двигательных органов, чаще лицевых: искривляются губы, отвисает ухо. Лошадь хромает, слегка приседая при проводке.

Диагноз на трипаносомоз ставят на основании эпизоотологических, клинических, патологоанатомических данных и результатов лабораторных исследований.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 24 пробы, проведено 70 исследований.
За отчетный период выявлено 1 положительный результат.

Плотность молока как определяющий показатель качества

Одним из важнейших показателей при анализе качества молока является его плотность. На первый взгляд, этот показатель может казаться лишь технической деталью, но на деле он несет в себе гораздо больше информации. Плотность молока, сочетаясь с другими известными показателями, может рассказать о множестве аспектов: от времени дойки до жиро-белкового состава, качества кормления животных и лактационного периода.
Для определения плотности молока используется лактоденсиметр (или ареометр).
Плотность — это мера, которая показывает, сколько массы содержится в единице объема. Ареометр измеряет плотность жидкости, определяя, насколько глубоко он погружается в нее. На стеклянном стержне ареометра нанесена шкала, которая позволяет считать плотность напрямую по глубине погружения.
Когда ареометр погружается в жидкость, он выталкивает жидкость до тех пор, пока вес ареометра не сбалансируется с поддерживающей силой, создаваемой выталкиваемой жидкостью. Эта глубина погружения зависит от плотности жидкости. В жидкости с высокой плотностью ареометр погружается менее глубоко, чем в жидкости с низкой плотностью.
Этот прибор определяет степень разбавленности молока водой при температуре 20°C. Погружая ареометр в молоко, можно увидеть, на какую глубину он опустится, что позволяет определить плотность жидкости. Высота погружения ареометра обратно пропорциональна плотности молока.
Показатель, измеренный с помощью этого прибора, называется Ареометра (°А) и соответствует классическому значению плотности за вычетом плотности воды. Так, плотность молока 1029 кг/м³ будет равна 29°А.
Плотность молока изменяется при фальсификации – понижается при добавлении воды, каждые 10% добавленной воды уменьшают плотность в среднем на 3 килограмма на сантиметр кубический, и повышается при поднятии сливок или разбавлением обезжиренным молоком. Понижение плотности молока чаще всего отличается в зимне-весенний период. При этом одна из основных причин – несбалансированность рациона, прежде всего по минеральному составу.
Стоит отметить, что плотность молока – это один из основных параметров, контролируемых на всех этапах производства молочных продуктов. Повышенная или, наоборот, сниженная плотность может указывать на нарушения в процессе получения молока, его хранения или переработки.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 715 проб материала, проведено 854 исследований, получено 2 положительных случая.
Американский гнилец - Histolysis infectijsa perniciosa larvae (злокачественный гнилец, брандербургский гнилец) - инфекционное заболевание печатного пчелиного расплода, проявляющееся летом, реже весной.
Возбудитель - спорообразующая грамположительная палочка (Paenibacillus larvae larvae (Bacillus larvae)). Окрашивается обычными анилиновыми красителями, при негативной окраске нигрозином или тушью на препарате из погибшей личинки хорошо видны споры овальной формы размером 1,2-1,8х0,6-0,7 мкм и палочки со жгутиками, имеющими спирохетообразное строение.
Устойчивость спор возбудителя американского гнильца к воздействию физических и химических средств довольно высокая, споры возбудителя сохраняют жизнеспособность в высохших трупах личинок в течении 30 лет, на сотах и ульях – до 15, в вощине – до 5, в почве – до 2 лет.
В воде при кипячении трупов личинок споры гибнут через 13 мин, при температуре 95°С, - через час, а в водяном паре - через 3,5 мин. В кипящем меде, разведенном пополам водой, споры гибнут через 20 мин, в воске, нагретом до 100°С - через пять суток, нагретом сухим жаром при 140-170°С споры погибают через 1,5-2 ч, а перегретом водяным паром (127°С) под давлением 14,71 Па в автоклаве, - за 2 ч.; 10%-ный раствор едкого натра убивает споры через 2 мин; 10%-ный раствор кальцинированной соды – 4 мин; 5-10%-ный раствор формалина – 6ч; 20%-ный – 30 мин, 1 %-ный раствор перекиси водорода, подкисленный кислотой, - за 3 ч; 10%-ный раствор однохлористого йода – 10 мин; 1-2%-ный раствор бета-пропиолактона – 20 – 30 мин.
Активное размножение бактерий американского гнильца происходит в период воспитания расплода в личинках и в основном проявляется летом, реже весной. При выявлении американского гнильца пасеку и территорию вокруг нее в радиусе 5-7 км объявляют неблагополучной по этой болезни, устанавливают карантин и принимают меры по ликвидации болезни. Соты с погибшим расплодом удаляют из больных семей и перетапливают на воск. Вытопки сжигают.
Пчел из больной семьи сметают в роевню и помещают на 1-2 дня в зимовник. Больных пчел из роевни стряхивают на лист бумаги и по сходням направляют дымом в продезинфицированный улей на чистые соты или рамки с вощиной. Бумаги после этого сжигают.
Расплод без видимых признаков поражения выращивают в специальных семьях-инкубаторах. Летки ульев таких семей заделывают мелкой сеткой, маток заменяют на здоровых, пчел обеспечивают водой и лечебным сиропом. Через 10-18 дней молодых пчел перегоняют в новое гнездо. Для лечения всех семей пасеки в зависимости от чувствительности выделенных штаммов микроорганизмов применяют антибиотики или сульфаниламидные препараты согласно действующим наставлениям. Соты, освобожденные от меда и не содержащие корочки погибшего расплода, ульи и пчеловодный инвентарь дезинфицируют.
Воск от семей неблагополучной пасеки направляют на технические цели. Мед и пыльцу реализуют только для пищевых целей. Карантин с пасеки снимают через 1 год после ликвидации заболевания.
С целью профилактики заболевания всем условно здоровым пчелиным семьям неблагополучной пасеки дают в те же сроки лечебную подкормку с аналогичными препаратами 3-4 раза. При рецидивах болезни лечение повторяют, заменяя ранее применявшийся препарат другим новым рекомендованным.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 317 исследований.
Африканская чума свиней (АЧС) - контагиозная, природно - очаговая, остро протекающая септическая болезнь свиней с высокой летальностью.
Возбудителем АЧС является ДНК-содержащий вирус рода Asfivirus семейства Asfarviridae (далее - возбудитель).
Источником возбудителя являются больные, а также переболевшие, находящиеся в инкубационном периоде, не имеющие клинических признаков и выделяющие возбудитель во внешнюю среду свиньи и дикие кабаны (далее - вирусоносители). Передача возбудителя осуществляется алиментарным, контактным, ятрогенным, аэрогенным, трансмиссивным, внутриутробным путями и с генетическим материалом. Факторами передачи возбудителя являются секреты и экскреты больных с виней, диких кабанов и вирусоносителей, продукты убоя свиней, добычи диких кабанов и продукты их переработки, трупы свиней и диких кабанов, а также контаминированные возбудителем объекты окружающей среды, включая корма, воду, навоз, подстилку, почву, одежду и обувь обслуживающего персонала, инвентарь, оборудование, транспортные и иные материальные и технические средства.
Лабораторные исследования биологического, патологического материала и проб продуктов должны проводиться с использованием одного из методов: молекулярно-биологических исследований методом полимеразной цепной реакции (ПЦР); вирусологических исследований (изоляция вируса на чувствительной культуре клеток и его идентификация), метода обнаружения антигена возбудителя в РПИФ; метода иммуноферментного анализа. Для выявления возбудителя в продуктах убоя свиней и продуктах их переработки используется метод ПЦР.
Материал для исследования: от свиней и диких кабанов отбираются пробы сыворотки крови, крови, от трупов свиней или диких кабанов должны отбираться фрагменты селезенки, нижнечелюстные (подчелюстные), портальные, мезентериальные лимфоузлы целиком, грудная или трубчатая кость. Трупы поросят массой до 10 кг направляются целиком. Пробы пищевой продукции, кормов для свиней
Диагноз на АЧС считается установленным в случае выделения возбудителя, обнаружения антигена возбудителя, его генетического материала, антител к возбудителю.
В лаборатории проводятся исследования по выделению ДНК вируса африканской чумы свиней методом ПЦР и выявлению антител к вирусу африканской чумы свиней методом ИФА.

Отчетный период с 07.06.2024г. по 13.06.2024г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 2499 проб сыворотки крови животных, проведено 2499 исследований. Выявлено: 9 положительных проб по лептоспирозу (у крупного рогатого скота – 5 положительных проб, у лошадей – 4 положительных пробы), 45 положительных проб по лейкозу крупного рогатого скота, 27 положительных проб по бруцеллезу (у крупного рогатого скота – 26 положительных проб, у мелкого рогатого скота – 1 положительная проба).
Хламидиоз животных – инфекционная болезнь, вызываемая микроорганизмами из рода Chlamydia. Заболевание протекает экзотически и проявляется у маток – абортами, рождением нежизнеспособного приплода.
Источником инфекции служат больные животные, которые выделяют возбудитель с абортированными плодами и их оболочками, с истечениями из половых путей.
Диагноз на хламидиоз устанавливают на основании комплекса клинических признаков, патологоанатомических изменений и данных лабораторных исследований с обязательным выделением возбудителя болезни.
Мероприятия по предупреждению заболевания:
- комплектование хозяйств проводят клинически здоровыми животными и из хозяйств благополучных по хламидиозу;
- для устранения факторов, способствующих заболеванию животных, необходимо создать оптимальный микроклимат в помещениях, соблюдать принцип – "все пусто - все занято";
- не допускают совместного содержания животных разных видов, а также максимально ограничивают контакт их с домашней и дикой птицей.
Мероприятия по ликвидации заболевания.
При установлении диагноза на хламидиоз территорию (хозяйство, ферма), на которой выявлено заболевание, в установленном порядке объявляют неблагополучной по этой болезни и на ней вводят ограничения.
По условиям ограничений запрещают:
- ввод/ввоз и вывод/вывоз животных из неблагополучного пункта, за исключением случаев отправки поголовья на убой;
- перегруппировку животных внутри неблагополучного хозяйства без разрешения ветеринарного специалиста.
Больных животных изолируют и подвергают лечению антибиотиками тетрациклинового ряда.
Животноводческие помещения подвергают механической очистке и дезинфекции.
Абортированные плоды, плодные оболочки, трупы собирают во влагонепроницаемую тару, а затем вывозят в отведенные места для утилизации. Навоз, подстилку складируют в бурт и обеззараживают биотермическим способом.Вынужденный убой больных хламидиозом животных производят на санитарной бойне. Их транспортировку осуществляют специально оборудованным транспортом, который затем подвергают механической очистке и дезинфекции.
Ограничения с неблагополучного пункта снимают через 30 дней после выздоровления больных животных и проведения заключительных мероприятий.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 22 пробы, проведено 136 исследований.
За отчетный период выявлено 58 положительных результатов.
Установлено несоответствие крови по 41 биохимическому показателю:
(выше нормы - 19: альфа-глобулины - 4, бета-глобулины - 5, щелочной резерв - 3, общий кальций - 5; ниже нормы - 22: щелочной резерв - 3, альбумины - 1, бета-глобулины - 2, гамма-глобулины - 5, каротин - 3, общий белок – 4, альфа-глобулины – 3, общий кальций - 1).
В 1 пробе сорго белое усыновлена токсичность

Значение комбикормов в организации рационального кормления животных и в повышении эффективности отрасли животноводства.

В настоящее время ведение сельского хозяйства, в частности разведение сельскохозяйственных животных и птицы немыслимо без использования полнорационных комбикормов. В состав подобного вида кормов входят: зерно злаковых и бобовых культур, травы, костная и рыбная мука, мел, соль и прочие кормовые добавки. Именно комбикорм обеспечивает полноценное кормление.
Комбикорма приготавливают для кормления сельскохозяйственных животных всех видов. Для каждой возрастной и хозяйственной крупны животных (молочных коров, телят, откормочного скота или кур-несушек, ремонтных цыплят и молодняка, цыплят-бройлеров и т.д.) выпускают специальные комбикорма.
Виды комбикормов. Комбикормовые предприятия и цехи хозяйств вырабатывают полнорационные комбикорма, комбикорма-концентраты, кормовые смеси и белково-витаминно-минеральные добавки (БВМД).
Комбикорма представляют собой сложную однородную смесь различных кормовых средств, предварительно очищенных, измельченных и подобранных по научно- обоснованным рецептам с целью наиболее эффективного использования животными питательных веществ.
При использовании сбалансированных по всем питательным веществам комбикормов продуктивность животных повышается на 10-12%, а при обогащении их витаминами, микроэлементами и другими стимулирующими веществами – на 25-30% по сравнению с тем, когда животным скармливают отдельные виды зернофуража. Питательная ценность выражается в кормовых единицах 1 корм. ед.=1 кг овса.
Основой комбикорма является зерновое сырье, оно составляет примерно во всех комбикормах 60-65%. Из зерновых культур это: пшеница, ячмень, кукуруза, овес, просо.
Полнорационные комбикорма содержат в своем составе все необходимые питательные вещества, обеспечивающие физиологические потребности животных при высоком уровне их продуктивности. Скармливают их без добавления кормов других видов. Готовят эти комбикорма преимущественно для птицы, свиней, лошадей. Кроликов и молодняка животных других видов раннего возраста.
Комбикорма обогащают микродобавками – метионином, витаминами А, D, Е, тиамином, рибофлавином, пантотеновой кислотой, никотиновой кислотой, витамином В12, солями марганца, железа, меди, цинка, кобальта, йода.
Комбикорма выпускают в рассыпном, гранулированном и брикетированном виде. К последним двум методам прибегают для рационального использования комбикормов, улучшения их вкусовых достоинств, удобства хранения и транспортировки. А также снижения механических потерь.
Комбикорма приготавливают по технологии, утвержденной для каждого конкретного вида продукции, при строгом соблюдении режима работы оборудования комбикормового предприятия. Владельцы и руководители предприятия несут ответственность за качество приготовляемого комбикорма.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 448 проб материала, проведено 527 исследований, получен 1 положительный случай.

Контаминация объектов окружающей среды патогенными и условно-патогенными микроорганизмами — одна из причин распространения инфекционных заболеваний. Воздействие возбудителей зоонозов и зооантропонозов наряду с бесконтрольным использованием химиотерапевтических средств нередко приводит к развитию дисбактериоза - изменения количественного и качественного состава микрофлоры в слизистой оболочке кишечника. В последние десятилетия наблюдается тенденция к увеличению числа факторов, способствующих развитию дисбактериозов, которые с трудом поддаются лечению.

Как правило, для диагностики дисбактериоза и оценки эффективности препаратов проводят длительные бактериологические исследования, требующие серьезных затрат на питательные среды. В качестве ориентировочной диагностики можно использовать микроскопические методы, имеющие очевидные преимущества по времени и технике подготовки препаратов. Однако при микроскопии возникают определенные сложности, например при дифференциации кислотоустойчивых микроорганизмов и ооцист простейших.

Для идентификации микроорганизмов применяют бактериологические и микологические методы. При прижизненной диагностике на предметное стекло наносили 2 капли изотонического (0,9 %) раствора хлорида натрия и небольшое количество фекалий. Готовят тонкий мазок, который высушивают на воздухе (30 мин), крупные частицы удаляли скальпелем. Фиксируют в течение 15 мин смесью Никифорова (равные части эфира и 96° этилового спирта). Препараты окрашивают сафранином, нигрозином или карболовым фуксином по Циль-Нильсену. При посмертной диагностике исследуют мазки-отпечатки из слизистой оболочки подвздошной кишки павших или убитых телят. Предметное стекло прикладывают непосредственно к слизистой оболочке, полученный отпечаток высушивают и фиксируют над пламенем горелки. Исследуемые мазки окрашивают по Граму и метиленовым синим.

К объективным критериям, свидетельствующим о нарушении экологического баланса в биотопе желудочно-кишечного тракта, следует отнести число и процентное соотношение патогенных и условно-патогенных энтеробактерий, которые неприхотливы и достаточно быстро растут на обычных питательных средах. Количественный учет лактозанегативные энтеробактерий и бактерий со слабой лактозной активностью служит достоверным способом выявления дисбактериоза кишечника.

При этом следует иметь в виду, что в этиологии желудочно-кишечных инфекций телят наиболее значимое место занимают представители родов Salmonella,Escherichia, Citrobacter, Enterobacter, Klebsiella, Proteus, Morganella, Providencia. Дифференциация указанных возбудителей требует времени для выделения чистой культуры, а также проведения множества тестов.

Таким образом, для прижизненного определения количественного и качественного состава микрофлоры в кишечнике достаточно точным и легковыполнимым в практических условиях методом служит окраска карболовым фуксином по Циль-Нильсену, с помощью которой можно выявить и дифференцировать возбудителей болезней, относящихся к разным систематическим группам (бактерии, грибы, ооцисты простейших). При посмертной диагностике наиболее эффективен метод отпечатков, сохраняющий естественную архитектонику сочленов микробиоценоза желудочно-кишечного тракта. Использование хромогенных сред позволяет в течение суток выделить и идентифицировать соответствующие бактерии без проведения дополнительных тестов. Применение щадящих методов фиксации и обезвоживания объектов дает возможность наблюдать за процессами роста и развития популяций микроорганизмов как в естественных условиях, так и при воздействии неблагоприятных факторов.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 442 исследования.
Болезнь Ауески - это острая болезнь многих видов домашних и диких животных, которое характеризуется расстройством центральной нервной системы и сопровождается сильным зудом и царапинами (у всех кроме свиней и пушных). Иногда это заболевание называют ложным и псевдобешенством. У свиней заболевание чаще всего сопровождается сильной лихорадкой, в отличии от молодняка, у которого Ауески сопровождается судорогами и параличами и приводит к гибели животного.

Развитие болезни. Размножаясь, в крови вирус оказывает действие на клетки стенок кровеносных сосудов, обусловливая в конечном итоге явления отека и геморрагического диатеза в разных органах и особенно в головном мозге. Это сопровождается появлением нестерпимого зуда у животных большинства видов.
У свиней, напротив, изменения чаще локализуются в легких и брюшной полости и реже — в ЦНС, это связано с тем, что вирус редко проникает через гематоэнцефалический барьер. Именно поэтому у взрослых свиней клинические симптомы, свидетельствующие о тяжелом поражении нервной системы, как правило, отсутствуют, также как, и зуд.
Инкубационный период болезни длится от 2 до 20 дней.
Основными признаками заболевания у молодняка с первого дня жизни до 3 недель являются:
- повышение температуры тела до + 42°С в первые дни;
- отсутствие сосательного рефлекса;
- повышенное отделение слюны, слизи из носовых ходов, слезообразование.
При вакцинации молодняка симптоматическая картина заражения отсутствует.
Тяжелее всего болеют поросята в возрасте от 1 до 4 дней.
Они наблюдают:
- паралич глотки и мимических мышц;
- паралич конечностей;
- судорожные сокращения мышц всего тела;
- озноб;
- отсутствие аппетита;
- симптомы простуды.
Поросята 1-10-дневного возраста не способны сосать, нежизнеспособны и погибают в течение 1 суток.
У поросят, заразившихся в возрасте от 2 недели до 3-4 месяцев, заболевание протекает с признаками поражения нервной системы. Сначала животные начинают зевать, становятся сонливыми, неподвижными. Затем внезапно проявляются несогласованность движений, паралич глотки, возбуждение или угнетение.
У взрослых основным симптомом является не зуд, как у других животных, а лихорадка и поражение ЦНС. Чаще проявляется повышением или понижением возбудимости, а также спазмами в глотке.
В настоящее время наиболее распространённым и практичным является иммуноферментный анализ (ИФА).

Отчетный период с 24.05.2024г. по 30.05.2024г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 4928 проб сыворотки крови животных, проведено 11833 исследования. Выявлено: 2 положительные пробы по бруцеллёзу у крупного рогатого скота, 151 положительная проба по лейкозу крупного рогатого скота, 1положительная проба по лептоспирозу мелкого рогатого скота, 63 положительные пробы по лептоспирозу у лошадей и 9 положительных проб по лептоспирозу у крупного рогатого скота.

Сап (malleus) – контагиозное зоонозное, преимущественно хронически протекающее инфекционное заболевание, вызываемое бактерией Burkholderia mallei и протекающее по типу септикопиемии с образованием специфических гранулем и абсцессов (сапных узелков) и проявляющееся язвенным ринитом и лимфаденитом, гнойно-некротическими поражениями кожи.

В основном сап поражает лошадей, мулов, верблюдов и ослов. Так же заболевание может передаваться животным семейства кошачьих (при поедании мяса больных сапом животных), человеку.

Сап имеет острое и хроническое течение. Хронический сап может принимать кожную, легочную или носовую форму.

По течению заболевания различают острую и хроническую формы. Животные, заразившиеся сапом в хронической (латентной) форме, как правило, не умирают, но остаются носителями инфекции. Заражение в острой форме практически всегда имеет летальный исход.

Человек заражается при непосредственном контакте с больными животными. Передача осуществляется через повреждённую кожу, корма, воду, пищу, вместе с выделениями больного животного. При близком контакте с животным заражение возможно воздушно-капельным путём.

В серологическом отделе для диагностики сапа проводят пластинчатую реакцию агглютинации с сапным цветным антигеном (РА) и реакцию связывания комплемента (РСК) в соответствии с Наставлением по диагностике сапа № 13-7-2/537 от 26.02.96 с изменениями № 13-7-2/1128 от 22.12.97. При получении положительного результата в РА или РСК животных считают подозреваемыми в заболевании сапом.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 27 проб, проведено 76 исследований.
За отчетный период выявлено 2 положительных результата
В 1 пробе средства моющего технического с дезинфицирующим эффектом «АКВАдез-НУК 15» м.д. надуксусной кислоты - ниже нормы; м.д. перекиси водорода - ниже нормы.

Левомицетин (Хлорамфеникол) в продуктах питания

Хлорамфеникол (левомицетин) – естественный представитель группы амфениколов, антибиотик широкого спектра действия. Он обладает бактериостатическим действием против возбудителей таких заболеваний, как дизентерия, брюшной тиф, пневмония, сибирская язва и многих других опасных микроорганизмов. Его молекула имеет небольшие размеры, что вместе с хорошей жирорастворимостью позволяет ему легко проникать во все ткани тела, в том числе и в мозг.
Антибиотики применяют для лечения инфекционных заболеваний у людей и животных, а также в качестве стимуляторов роста в животноводстве, поэтому их остаточные количества могут встречаться в пищевых продуктах животного происхождения. Употребление в пищу продуктов, содержащих остаточные количества антибиотиков, негативно сказывается на организме человека. Хлорамфеникол долго остается в организме животных и в пищевых продуктах, мясе, также он хорошо растворяется в жирах и в значительных количествах выделяется с молоком.
В сельском хозяйстве и ветеринарии левомицетин применяется для лечения животных и птиц, больных желудочно-кишечными заболеваниями и заболеваниями дыхательных путей.
В отделе химических исследований левомицетин в продуктах питания определяют, применяя метод иммуноферментного анализа. Методика определения предназначена для проведения измерений массовой концентрации хлорамфеникола с использованием набора реагентов ИФА антибиотик-хлорамфеникол производства ООО «Компания Альгимед».
Используемый метод основан на конкурентном колориметрическом иммуноферментном анализе.
В основе принципа действия тест-системы лежит реакция антиген – антитело. Лунки микротитровального планшета покрыт антителами захвата к антителам к хлорамфениколу. Планшет уже функционализирован антителами к хлорамфениколу, которые связаны иммобилизированными антителами захвата.
В лунки вносят растворы стандартов или проб и конъюгат хлорамфеникола.
Свободный хлорамфеникол и конъюгированный с ферментом конкурируют за места связывания с антителами. Все несвязанные молекулы конъюгата затем удаляют на этапе отмывки. Конъюгат преобразует хромоген в окрашенные в синий продукты реакции. Внесение стоп-раствора ведет к изменению окраски от синей к желтой. Измерения выполняют фотометрически при длине волны 450 нм. Оптическая плотность обратно пропорциональна концентрации хлорамфеникола в пробе.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1327 проб материала, проведено 1542 исследований, выделено 15 положительных результатов.

Дифиллоботриоз - кишечный гельминтоз, возникающий вследствие инвазии человека паразитическими червями-лентецами. Возбудители дифиллоботриоза паразитируют в тонкой кишке. Природные очаги дифиллоботриоза располагаются преимущественно в районах умеренного и холодного климата.
Возбудителями дифиллоботриоза человека могут выступать 12 видов паразитических червей–лентецов, наиболее частым представителем которых является Diphyllobothrium latum (лентец широкий). D. Latum – крупный паразитический червь, длина которого может достигать 7-10 м. Стробила (тело) широкого лентеца состоит из 3-4 тысяч члеников – проглоттид; сколекс (головка) снабжена двумя щелевидными присосками, посредством которых он крепится к стенке тонкой кишки.
Жизненный цикл развития широкого лентеца предполагает смену трех хозяев; при этом окончательным хозяином выступает человек или животные (кошки, собаки, лисы, медведи), промежуточным - пресноводные рачки, дополнительным - пресноводные рыбы (окунь, щука, ерш, налим, лососевые). Из кишечника окончательного хозяина яйца лентеца с фекалиями попадают в окружающую среду.
Их дальнейшее развитие происходит в воде, где через несколько недель из яиц выходят личинки – корацидии. В воде они заглатываются промежуточными хозяевами - веслоногими рачками, в организме которых переходят в следующую личиночную стадию развития - процеркоиды. Инвазированные рачки служат пищей для пресноводных рыб, в организме которых процеркоиды превращаются в инвазионных для человека личинок – плероцеркоид. В мышцах, икре, печени рыб личинок лентеца можно рассмотреть невооруженным глазом.
Заражение человека дифиллоботриозом происходит при употреблении в пищу сырой, плохо термически обработанной, малосольной рыбы или икры, содержащей плероцеркоиды. Попадая в тонкую кишку окончательного хозяина, личинки прикрепляются к ее слизистой оболочке и превращаются в половозрелых гельминтов, способных выделять яйца. В организме человека широкий лентец способен паразитировать 20-25 лет. Человек, больной дифиллоботриозом, для окружающих не заразен.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1794 исследований.

КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА ДЕЗИНФЕКЦИИ

Критерии контроля качества дезинфекции. Бактериологический контроль качества дезинфекции осуществляют сотрудники ветеринарных лабораторий периодически или в сроки, установленные с учетом эпизоотической обстановки, технологии производства, целей дезинфекции и других конкретных особенностей.
При бактериологическом контроле качества дезинфекции определяют наличие на поверхностях обеззараживаемых объектов жизнеспособных клеток санитарно-показательных микроорганизмов — бактерий группы кишечных палочек (Escherichia, Citrobacter, Enterо bacter), стафилококков (S. aureus, S. epidermatis, S. saprophiticus), микобактерий или спорообразующих аэробов рода Bacillus.
По наличию или отсутствию бактерий группы кишечных палочек определяют качество профилактической и вынужденной (текущей и заключительной) дезинфекции при бруцеллезе, эшерихиозе, лептоспирозе, листериозе, болезни Ауески, лейкозе, пастереллезе, сальмонеллезах, трихомонозе, кампилобактериозе, трипаносомозе, токсоплазмозе, инфекционном ринотрахеите, парагриппе и вирусной диарее крупного рогатого скота, контагиозной эктиме, инфекционной агалактии и контагиозной плевропневмонии овец и коз, отечной болезни, инфекционном атрофическом рините, дизентерии, трансмиссивном гастроэнтерите, балантидиозе, гемофилезной плевропневмонии и роже свиней, ринопневмонии лошадей, пуллорозе-тифе птиц, миксомотозе кроликов, микоплазмозе птицы.
По наличию или отсутствию стафилококков контролируют качество текущей дезинфекции при туберкулезе, болезнях, вызываемых спорообразующими микроорганизмами, и экзотических инфекциях, а также качество заключительной дезинфекции при туберкулезе, аденовирусных инфекциях, ящуре, оспе, туляремии, орнитозе (пситтакоз), диплококкозе, стафилококкозе, стрептококкозе, некробакте- риозе, катаральной лихорадке, бешенстве, чуме животных всех видов, злокачественной катаральной горячке, ринопневмонии и паратуберкулезном энтерите крупного рогатого скота, инфекционной катаральной лихорадке, копытной гнили и инфекционном мастите овец, везикулярной болезни свиней, инфекционной анемии, инфекционном энцефаломиелите, эпизоотическом лимфангите, сапе и мыте лошадей, гепатите утят, вирусном энтерите гусят, инфекционном бронхите, ларинготрахеите, болезни Марека, болезни Гамборо, ньюкаслской болезни, вирусном энтерите, алеутской болезни, псевдо- монозе и инфекционном гепатите плотоядных, хламидиозах, риккетсиозах, энтеровирусных инфекциях, гриппе сельскохозяйственных животных и птицы, трихофитии, микроспории, других микозах животных и птицы, актиномикозе крупного рогатого скота, а также болезнях, вызываемых неклассифицированными вирусами, при дезинфекции вагонов II категории. Качество заключительной дезинфекции при микозах контролируют также по выделению соответствующих возбудителей.
Качество заключительной дезинфекции при туберкулезе контролируют по выделению стафилококков и микобактерий. При сибирской язве, эмфизематозном карбункуле, брадзоте, злокачественном отеке, других споровых инфекциях и экзотических инфекциях— по наличию или отсутствию спорообразующих микроорганизмов рода Bacillus.

Отчетный период с 31.05.2024г. по 06.06.2024г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 5867 проб сыворотки крови животных, проведено 15262 исследования. Выявлено: 95 положительных пробы по лептоспирозу (у крупного рогатого скота – 71 положительная проба, у лошадей – 24 положительные пробы), 87 положительных проб по лейкозу крупного рогатого скота.

При установлении положительного диагноза на бруцеллез вводятся ограничительные мероприятия (карантин).

В решении об установлении ограничительных мероприятий (карантина) должны быть указаны перечень вводимых ограничительных мероприятий, срок, на который устанавливаются ограничительные мероприятия, и определены:

место нахождения источника и факторов передачи возбудителя в тех границах, в которых возможна его передача животным (эпизоотический очаг);

муниципальное образование, на территории которого установлен эпизоотический очаг (неблагополучный пункт).

Решением об установлении ограничительных мероприятий (карантина) вводятся ограничительные мероприятия в эпизоотическом очаге и неблагополучном пункте.

В эпизоотическом очаге запрещается:

- лечение больных животных;

- посещение территории посторонними лицами, кроме персонала, выполняющего производственные операции, специалистов госветслужбы и привлеченного персонала для ликвидации эпизоотического очага, лиц, проживающих и/или временно пребывающих на территории, признанной эпизоотическим очагом;

- ввоз и вывоз животных, за исключением вывоза животных на убой на предприятия по убою или оборудованные для этих целей убойные пункты;

- вывоз и использование молока, за исключением молока, прошедшего термическую обработку в соответствии с правилами;

- выпас, перемещение и перегруппировка животных;

- заготовка и вывоз кормов, с которыми могли иметь контакт больные животные (за исключением кормов, прошедших термическую обработку в соответствии с правилами);

- вывоз инвентаря и иных материально-технических средств;

- сбор, обработка, хранение и использование спермы, яйцеклеток и эмбрионов, полученных в эпизоотическом очаге;

- использование больных животных и полученного от них приплода для разведения;

- использование водоемов, не связанных с другими поверхностными водными объектами, для водопоя здоровых животных в течение 90 календарных дней после последнего поения из них больных животных;

- въезд и выезд транспортных средств (за исключением транспортных средств, задействованных в мероприятиях по ликвидации эпизоотического очага и/или по обеспечению жизнедеятельности людей);

- охота на животных, отнесенных к охотничьим ресурсам, за исключением охоты в целях регулирования численности охотничьих ресурсов.
В неблагополучном пункте запрещается проведение сельскохозяйственных ярмарок, выставок, аукционов и других мероприятий, связанных с перемещением и скоплением животных.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 29 проб, проведено 163 исследования.
В листьях всех растений и растительных кормах содержится желтоокрашенный пигмент – каротин или провитамин А, который представляет собой непрочное соединение, разлагающееся под действием света, кислорода воздуха, высокой температуры и окислительных ферментов клеток растений.
Содержание каротина в кормах – важный показатель витаминной питательности кормов и рационов. Каротин, поступая с кормом в желудочно-кишечный тракт, всасывается в кровь, и в печени под влиянием фермента каротиназы из него синтезируется витамин А. Синтез витамина А из каротина происходит также в стенках тонкого отдела кишечника.
Полноценность А-витаминного питания животных зависит от поступления каротина и витамина с кормами, а также от эффективности их усвоения, наличия и величины тканевых запасов. Снижение усвояемости и резервирования витамина А в организме наблюдается при избытке и недостатке в рационе протеина, жира, минеральных веществ, витамина Е, Д, В₄, В₁₂, повышенном содержании в них нитратов. Усвоение животными каротина существенно увеличивается в результате применения сбалансированных рационов. Значительную роль играет также наличие в них незаменимых аминокислот.
Недостаток в рационе каротина ведет к задержке роста и развития молодняка животных, снижению продуктивности животных, а также к падению устойчивости против инфекционных заболеваний.
Исключительно важное значение в обеспечении животных каротином имеют пастбищное содержание или зеленые корма. Богатым источником каротина в зимний стойловый период является своевременно убранное и быстро высушенное, сохранившее зеленую окраску сено, сенаж, травяная мука, хороший силос, красные и желтые сорта моркови, тыква, желтая кукуруза (зерно), зелень, выращенная гидропонным методом, хвоя ели, сосны, кедра и др. Если количество каротина в кормах не удовлетворяет потребность животных в нем, то беременным животным, молодняку и птице целесообразно давать витаминизированный рыбий жир или масляные концентраты витамина А, эмульгированные или сухие стабилизированные.
В отделе химических исследований массовую долю каротина в кормах определяют фотометрическим методом по ГОСТ 13496.17-2019 Корма. Методы определения каротина (п.8). Сущность метода заключается в экстракции каротина петролейным эфиром и фотометрическом измерении интенсивности окраски экстракта, которая зависит от содержания каротина.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 479 проб материала, проведено 602 исследований, получено 10 положительных случая.
Эймериоз (кокцидиоз) – одно из самых распространенных и опасных заболеваний для молодняка. Развитие инфекции провоцируют простейшие паразиты – эймерии, паразитирующие на стенках кишечника и печени птицы. Теплая и влажная погода, нарушение санитарных условий содержания кур повышают риск вспышки болезни. Наиболее часто констатируется кокцидиоз у цыплят бройлеров и молодых несушек. Однако патология может поражать и взрослых особей при ослабленном иммунитете.
Эймериоз (кокцидиоз) – одно из самых распространенных и опасных заболеваний для молодняка. Развитие инфекции провоцируют простейшие паразиты – эймерии, паразитирующие на стенках кишечника и печени птицы. Теплая и влажная погода, нарушение санитарных условий содержания кур повышают риск вспышки болезни. Наиболее часто констатируется кокцидиоз у цыплят бройлеров и молодых несушек. Однако патология может поражать и взрослых особей при ослабленном иммунитете.
Источниками инвазии являются, как правило, больные или переболевшие цыплята, а также взрослые куры, которые могут быть носителями эймерий. Инвазионное начало распространяется через загрязненные ооцистами эймерий корма, воду, кормушки, подстилку, хозяйственный инвентарь.
Инкубационный период от 3 до 15 дней. Эймериозы протекают в острой, подострой и хронической формах. Клиническая картина зависит от доминирующего вида возбудителя, интенсивности инвазии и возраста животного. Отмечают угнетение, исхудание, слабость. Акт дефекации учащается, фекалии жидкие, с примесью слизи, иногда крови. Гибель цыплят до 100%.
Диагноз ставят комплексно с учетом эпизоотологических, клинических данных и патологоанатомических изменений. Их подтверждают лабораторными исследованиями, обнаружением в фекалиях и содержимом кишечника эймерий или стадий их развития. Для этого делают мазки из соскобов кишечника или исследуют фекалии по методу Дарлинга, Фюллеборна и др.
При установлении заболевания больных кур изолируют. Больным и подозреваемым в заражении назначают эймериостатики. Однако при выборе нужного лекарства необходимо иметь в виду, что многие из них вызывают привыкание к себе эймерий и через некоторое время они становятся совершенно неэффективными. Для преждевременной адаптации эймерий к противоэймериозным препаратам в хозяйствах следует чередовать применение эймериостатиков. После перенесенной инфекции, а также в период лечения эймериоза, курам дают витаминные комплексы и пробиотики.
Все мероприятия по предупреждению этой болезни направлены на создание условий, исключающих возможность массового заражения восприимчивого поголовья, организацию полноценного кормления, оптимальных условий содержания по всем зоогигиеническим параметрам.
Основные меры профилактики:
1. Для профилактики кокцидиоза у птиц с первых дней жизни проводят вакцинопрофилактику;
2. Курятник регулярно проветривать и следить за сухостью и чистотой подстилки;
3. Куры должны получать сбалансированное питание, которое позволит птице поддерживать иммунитет на высоком уровне;
4. Важно обеспечить чистоту поилок, кормушек, а также другого инвентаря и оборудования, используемого по уходу за птицей;
5. Нельзя допускать скученность цыплят на ограниченной площади;
6. Рекомендовано содержать птицу на сетчатых полах, исключая попадание помета в кормушки и поилки.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 563 исследования.

Репродуктивно-респираторный синдром свиней (РРСС) - контагиозная вирусная болезнь свиней.

Характерными клиническими признаками РРСС являются угнетенное состояние, отказ от корма, повышение температуры тела, конъюнктивит, отек век, потеря зрения, поражение органов дыхания, цианоз ушей, хвоста, молочных желез, вульвы, поздние аборты, преждевременные опоросы или задержка опороса, рождение нежизнеспособного молодняка, молодняка с признаками уродства, гибель поросят на 2-7 сутки жизни, гибель поросят-отъемышей с признаками пневмонии и диареи. У хряков ухудшается качество спермы.
Возбудителем является РНК-содержащий вирус рода Arterivirus семейства Arteriviridae.Инкубационный болезни составляет от 4 до 37 суток.

Источником возбудителя являются больные, переболевшие или павшие от РРСС свиньи, их органы, кровь, ткани, секреты и экскреты.

Передача возбудителя осуществляется контактным, половым, а также транс-плацентарным путями. Факторами передачи возбудителя являются трупы павших свиней, мясо и иные продукты убоя, отходы, полученные при переработке сырья животного происхождения, корма, вода, почва, подстилка, навоз, инвентарь и иные материально-технические средства, контаминированные возбудителем.

Диагностические мероприятия

При возникновении подозрения на РРСС должен проводиться отбор проб биологического и (или) патологического материала:

- в случае если подозрение на РРСС возникло у индивидуально содержащихся животных, пробы должны отбираться у каждого индивидуально содержащегося животного;
- в случае если подозрение на РРСС возникло в изолированно содержащейся группе свиней (далее - группа), насчитывающей до 50 голов, пробы должны отбираться от 15 свиней; в группе, насчитывающей от 51 до 100 голов, - от 22 свиней; в группе, насчитывающей от 101 до 500 голов, - от 25 свиней; в группе, насчитывающей 501 голову и более, - от 30 свиней.
От живых свиней с повышенной температурой тела отбирается кровь в объеме 3-5 мл.

От трупов свиней (не более 3 голов) отбираются фрагменты селезенки и легких массой 5-10 г, экссудат из грудной полости, средостенные лимфатические узлы. Каждый абортированный плод направляется в лабораторию Упаковка и транспортирование проб биологического и (или) патологического материала должны обеспечивать их сохранность и пригодность для исследований в течение срока транспортировки. Пробы биологического и (или) патологического материала охлаждаются, а на период транспортирования - помещаются в термос со льдом или охладителем.

Утечка (рассеивание) биологического и (или) патологического материала во внешнюю среду не допускается. Доставка биологического и (или) патологического материала в лабораторию должна осуществляться в течение 48 часов с момента отбора.

Контейнеры, емкости с пробами биологического и (или) патологического материала должны быть упакованы и опечатаны.

В сопроводительном письме к пробам биологического и (или) патологического материала должны быть указаны дата, время отбора проб, дата последней вакцинации свиней против РРСС, номер серии использованной вакцины, производитель вакцины, адрес места отбора проб, перечень проб, основания для подозрения на РРСС, адрес и телефоны специалиста в области ветеринарии, осуществившего отбор проб.

Пробы биологического и (или) патологического материала должны быть доставлены в лабораторию специалистом в области ветеринарии, осуществившим отбор проб.

Диагноз на РРСС считается установленным, если выделен возбудитель или обнаружен его генетический материал или антитела к возбудителю, не связанные с вакцинацией.

Лабораторные исследования проб биологического и (или) патологического материала должны проводиться с использованием следующих методов:

выделение вируса в чувствительной культуре клеток;

полимеразной цепной реакции;

иммуноферментного анализа.

Профилактические мероприятия

Для профилактики РРСС должна проводиться вакцинация свиней вакцинами, допущенными к обращению на территории Российской Федерации, согласно инструкциям по их применению, в соответствии с планом диагностических исследований, ветеринарно-профилактических и противоэпизоотических мероприятий в хозяйствах всех форм собственности на территории субъекта Российской Федерации на текущий календарный год.

Отчетный период с 17.05.2024г. по 23.05.2024г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 5910 проб сыворотки крови животных, проведено 15136 исследований. Выявлено: 5 положительных проб по хламидиозу у крупного рогатого скота, 244 положительные пробы по лейкозу крупного рогатого скота, 4 положительные пробы по лептоспирозу у лошадей, 6 положительных проб по лептоспирозу у свиней и 6 положительных проб у крупного рогатого скота.

Паратуберкулез (паратуберкулёзный энтерит, болезнь Йоне) – хронически протекающая инфекционная болезнь домашних и диких жвачных животных (крупного рогатого скота, мелкого рогатого скота, верблюдов, северных оленей), характеризующаяся поражением кишечника, брыжеечных лимфатических узлов и сосудов.

Возбудитель паратуберкулеза – бактерия Mycobacterium paratuberculosis или Mycobacterium johnei — тонкая короткая полиморфная палочка с округлыми краями величиной 0,5—1,5 X 0,2— 0,5 мкм, не образует спор, неподвижна, грамположительна, кислото-спирто-антиформинустойчива, красится по Цилю — Нельсену. Возбудитель - облигатный паразит, который не размножается вне животного организма; очень плохо растёт на искусственных питательных средах. Обладает значительной устойчивостью к воздействию факторов окружающей среды и различных дезинфицирующих средств.

Возбудитель проникает в ворсинки кишечника, где фагоцитируется (фагоцитоз незавершенный) и вызывает деструктивные изменения, приводит к нарушениям функции желез кишечника

Возбудитель обладает устойчивостью к факторам внешней среды и дезинфицирующим средствам. Основными факторами вирулентности являются эндотоксины.

Клинические признаки болезни: периодическая диарея, переходящая в постоянную, отеки век, межчелюстного пространства, области подгрудка и нижней части живота, обезвоживание, прогрессирующее истощение, атрофия мышц в области крупа и задних конечностей, дугообразное изгибание позвоночника, паралич сфинктера прямой кишки. Возможно бессимптомное течение болезни.

Основной источник заболевания – инфицированные животные, выделяющие возбудитель во внешнюю среду с калом. Заражение происходит алиментарным путем.

Диагноз на паратуберкулез устанавливают на основании результатов клинического осмотра животных, аллергического, серологического, бактериоскопического, патологоанатомического или гистологического методов исследования с учетом эпизоотологических данных.

В серологическом отделе для диагностики паратуберкулеза животных проводят реакцию связывания комплемента (РСК). Сущность данной реакции заключается в выявлении комплементсвязывающих антител в сыворотке крови животных, инфицированных микобактериями паратуберкулеза.
Биопрепараты для специфической профилактики и терапии не разработаны.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 34 проб, проведено 162 исследования.
За отчетный период выявлен 1 положительный результат.
В 1 пробе технологического вспомогательного средства «Инвасепт Форте ФД»
массовая доля надуксусной кислоты - ниже нормы

Массовая доля надуксусной кислоты в дезинфицирующем средстве

Дезинфекция (фр. des... — от... + лат. infecre — инфекция) — уничтожение в окружающей среде патогенных микроорганизмов — возбудителей инфекционных заболеваний (бактерий, вирусов, простейших, грибов).
Для грамотного проведения дезинфекции следует применять адекватные современные дезинфицирующие средства, которые смогут быстро обеззаразить конкретный объект. Необходимо четко представлять себе: что подлежит дезинфекции, когда должна быть произведена дезинфекция, с помощью каких средств и каким способом ее осуществить.
В классификации дезинфицирующих средств по действующему веществу особое внимание уделяется кислородосодержащим соединениям. В эту группу входят препараты, действующим веществом которых является кислород в составе перекиси водорода, перекисных соединений. Анализ рынка дезинфицирующих средств, содержащих окислители с перекисной структурой, позволяет сделать вывод, что из них чаще всего используются пероксид водорода, надуксусная кислота, персульфат натрия. Основным представителем дезинфицирующих средств этой группы является пероксид водорода, отличающийся широким спектром антимикробного действия, экологической безопасностью.

Дезинфицирующие средства на основе надуксусной кислоты и перекиси водорода применяются на предприятиях АПК, продовольственной торговли и общественного питания, пищевой и перерабатывающей промышленности (по производству и переработке мяса, птицы, производству хлебобулочных и мучных кондитерских изделий, производству молока и молочной продукции, переработке и консервированию рыбы, пивоваренной и безалкогольной промышленности, по переработке и консервированию фруктов и овощей, производству продуктов мукомольной и крупяной промышленности, крахмала и крахмалосодержащих продуктов и др.), а также в лечебно-профилактических, детских, дошкольных, школьных общеобразовательных, медицинских и научных учреждениях.
Средство эффективно против возбудителей внутрибольничных инфекций, микобактерий туберкулёза, грибов (включая дрожжеподобные грибы рода Кандида, дерматофитии), вирусов (острые респираторные вирусные инфекции, герпес, полиомиелит, гепатиты всех видов, включая гепатиты A, B и C, ВИЧ-инфекция, аденовирус и другие).В отделе химических исследований массовую долю надуксусной кислоты определяют титриметрическим методом.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 425 проб материала, проведено 435 исследований, положительных результатов не выявлено.
Парвовирусная инфекция (болезнь репродуктивных органов) свиней (Parvovirus disease) ПВСИ – контагиозная вирусная болезнь, клинически проявляющаяся только у супоросных свиноматок нарушением функции органов воспроизодства (прохолостами, малоплодием, гибелью эмбрионов, рождением малоплодных пометов, мумифицированных плодов, мертвых и слабых поросят и реже абортами). У хряков-производителей заболевание протекает субклинически.

Естественный хозяин вируса – свиньи и хряки, которые могут выделять его с вагинальной слизью, спермой. Как правило, заражаются серонегативные свиноматки в первой половине супоросности. Вирус, проникший в благополучное хозяйство, в течение 2-3 месяцев поражает практически всех животных. Источником возбудителя ПВСИ являются: больные животные, выделяющие вирус во внешнюю среду с фекалиями (до 2 недель), мочой, носовыми и вагинальными секретами, абортированными и мертворожденными плодами, а также плацента. Свиней можно заразить внутримышечно и внутривенно при массовых ветеринарных обработках, проводимых с нарушением правил асептики и антисептики. Заражение может происходит в родильных отделениях при травмировании родовых путей, при кастрации поросят. Болезнь сопровождается виремией. Чаще всего поражаются пометы первоопоросок. У зараженных свиноматок в более поздние сроки супоросности образуются антитела.

Диагноз на ПВСИ ставится комплексно с учетом эпизоотологических и клинических данных, массового нарушения функций органов воспроизводства у свиноматок. Для окончательного диагноза необходимо исследовать плоды, пораженные в ранние сроки супоросности, для выявления вируса (в более поздние сроки имеющиеся антитела мешают выявлению вируса). Для лабораторного исследования необходимо направлять сыворотку крови от новорожденных поросят до приема ими молозива, жидкость из грудной и брюшной полостей мертворожденных поросят, а также сыворотку крови от свиноматок с нарушенной репродукцией через 1 месяц после опороса (не менее 5-10 проб каждого материала). Для вирусологических (обнаружение вируса в РГА, МФА) и молекулярно-генетических (определение генома вируса при помощи ПЦР) исследований абортированные плоды или их легкие нужно доставлять свежим или в замороженном виде.

Профилактика болезни в хозяйствах, свободных от ПВСИ, строится на предотвращении заноса возбудителя. Свиней, закупаемых в других хозяйствах, необходимо предварительно исследовать на ПВСИ, а также в течение 30 дневного профилактического карантинирования в своем хозяйстве. Необходимо организовать раздельные опоросы основных и ремонтных свиноматок, систематически проводить профилактическую дезинфекцию с предварительной тщательной механической очисткой помещения, инвентаря и оборудования.

При установлении в хозяйстве ПВСИ в нем вводятся ограничения и проводятся мероприятия в соответствии с инструкцией «О мероприятиях по борьбе с парвовирусной болезнью свиней».

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1305 исследований.

Ящур - опасное вирусное инфекционное заболевание, при котором поражаются слизистые покровы кожи. Болезнь передается человеку от больных животных. Заражение человека может произойти, главным образом, при употреблении сырого молока, молочных продуктов, мяса, при непосредственном контакте с больными животными и при контакте с инфицированными предметами (подстилка, кормушка). Возможны случаи воздушно-капельного заражения.
Данное заболевание имеет широкое распространение. Вирус обладает высокой устойчивостью во внешней среде и долгое время сохраняет активность в условиях холода и высушенном состоянии.

В сырье и продуктах, полученных от больных животных, вирус остается жизнеспособным от нескольких суток до месяца и более. В условиях холода вирус сохраняется в сливках - до 4 дней, молоке - до 12 дней, масле - до 45 дней, субпродуктах - до 3 месяцев. Вирус ящура устойчив во внешней среде: на шерсти животных он сохраняется до четырех недель, на одежде - до 3,5 недели.

Источник возбудителя ящура - больные животные, в том числе находящиеся в инкубационном периоде заболевания, а также вирусоносители (более 400 дней). Такие животные выделяют вирус во внешнюю среду с молоком, слюной, мочой и калом. В результате этого происходит инфицирование помещений, выгульных дворов, различных предметов и инвентаря, пастбищ, водоисточников, кормов, транспортных средств, предприятий по заготовке и переработке животноводческой продукции и других объектов. Заражение животных происходит преимущественно через слизистые оболочки ротовой полости при поедании кормов и питья, облизывании различных инфицированных предметов. Большое значение в распространении вируса ящура имеет человек, так как он чаще всего соприкасается с животными и может перемещаться на большие расстояния. Механически переносится вирус ящура с транспортом, птицей и другими видами невосприимчивых животных (в том числе и дикими), а также насекомыми и клещами.
Наиболее восприимчивы к ящуру крупный рогатый скот и свиньи; овцы, козы и дикие копытные животные - менее чувствительны. Молодые животные более восприимчивы и болезнь может протекать тяжелее, чем у взрослых. Основным критерием оценки эффективности применения средств специфической профилактики инфекционных болезней (вакцин) является напряженность иммунитета. Высокие показатели напряженности иммунитета по стаду гарантируют отсутствие заболеваемости и падежа.
Важным условием профилактических и оздоровительных мероприятий остается исследование напряженности иммунитета к вирусу ящура у крупного рогатого скота.На напряженность иммунитета необходимо доставлять сыворотку крови от крупного рогатого скота в объеме 4-5 см³, без признаков гемолиза.
Для проверки напряженности иммунитета и получения наиболее достоверных титров кровь берут не ранее, чем через 2- 3 недели после последней вакцинации (зависит от сроков формирования иммунитета против конкретной вакцины - эти данные есть в инструкции по применению). Но наиболее оптимальным сроком взятия крови у животных считают 2-3 месяца после последней вакцинации животных.
Контроль напряженности иммунитета в стаде дает возможность оценивать эффективность проводимой вакцинации и своевременной корректировки мер, направленных на оздоровление хозяйств от острых респираторных заболеваний. Также необходимым условием эффективности профилактических мероприятий является соблюдение ветеринарно - санитарных мероприятий.

Еще статьи...

Подкатегории

Страница 24 из 231