отчетный период с 10.07.2020 г. по 16.07.2020 г.
За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллёз крупного рогатого скота – 173 пробы, положительных – нет;
- бруцеллёз мелкого рогатого скота – 64 пробы;
- бруцеллёз свиней – 43 пробы;
- хламидиоз свиней – 43 пробы;
- бруцеллёз лошадей – 1 проба;
- сап лошадей – 5 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 2 пробы, положительных – нет;
- лептоспироз свиней – 43 пробы, положительных - нет;
- лейкоз крупного рогатого скота – 54 пробы, положительных – нет.
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 55 проб материала, проведено 68 исследований, выявлен 1 положительный случай.
Поступающий в отдел материал (головной мозг или мазки с головного мозга) исследуются на вирус бешенства методом флуоресцирующих антител.
Бешенство - природно-очаговое особо опасное смертельное инфекционное заболевание, вызываемое вирусом бешенства Rabiesvirus, включённым в род Lyssavirus семейства Rhabdoviridae. Передаётся со слюной при укусе больным животным. Затем, распространяясь по нервным путям, вирус достигает слюнных желёз, нервных клеток коры головного мозга, гиппокампа, бульбарных центров и, поражая их, вызывает тяжёлые нарушения, приводящие к гибели.
Источником инфекции могут быть собаки, лисы, летучие мыши, волки, кошки и мелкие грызуны. Любое млекопитающее и птицы могут болеть бешенством, но в подавляющем большинстве не представляют опасности для человека (например, птицы).
Механизм передачи:
1 Контактный - при укусе или ослюнении, редко возможно заражение при разделке убитого животного;
2 Маловероятен аэрозольный механизм заражения - например, в пещере, населённой летучими мышами;
3 Алиментарный - при поедании павших от бешенства животных;
4 Трансплацентарный путь - при пересадке органов от умерших людей от бешенства (при неверно поставленном диагнозе).
Инкубационный период составляет от 10 дней до 3 месяцев. Он зависит от локализации укуса, иногда может находится в скрытом периоде до 1 года.
Диагностика бешенства происходит на основании комплекса эпидемиологических и клинико-лабораторных данных. Общеклинические методы исследований малоинформативны.
Лабораторное подтверждение диагноза бешенство возможно только посмертно на основании следующих методов:
1 Обнаружение телец Бабеша–Негри в клетках аммонового рога;
2 Обнаружение антигена вируса бешенства в клетках с помощью иммунофлюоресцентного анализа и ИФА;
3 Постановка биологической пробы
4 Возможно выделение при жизни больного вируса из слюны или спинномозговой жидкости, а также постановка реакции флюоресцирующих антител на отпечатках с роговицы или биоптатах кожи.
Основные методы профилактики бешенства:
1 Борьба с источником инфекции (соблюдение правил содержания кошек и собак, предупреждение бродяжничества среди них, профилактическая вакцинация домашних животных против бешенства, контроль за популяцией диких животных);
2 При укусе подозрительным животным необходимо немедленно оказать помощь пострадавшему, а именно обеспечить проведение иммунизации против бешенства.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 133 пробы:
* корма – 14 проб;
* пищевая продукция – 100 проб;
* вода – 2 пробы.
*дез. раствор (дезинфицирующее средство) – 1 проба.
Также для радиологических исследований поступило 16 проб.
За отчетный период положительных результатов не выявлено.
Контроль качества кормов, комбикормов и комбикормового сырья – важное условие повышения продуктивности сельскохозяйственных животных и птиц. Понятие качества кормов включает в себя совокупность показателей химического состава корма (содержание влаги, протеина, углеводов, клетчатки, жира, макро- и микроэлементов), а также изменение их содержания и свойств в зависимости от сроков хранения. В процессе хранения кормов может возникнуть ухудшение их качества по химическим (перекисное и кислотное число) и биологическим (зараженность патогенными бактериями и грибами) показателям. Токсичность кормов является основной причиной развития токсикозов у животных и птиц, поэтому необходимо своевременно и регулярно проводить исследования кормов на определение токсичности.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1970 исследований, из них 9 положительных случаев.
Применение ПЦР в ветеринарии.
Инфекционная патология в ветеринарии охватывает широкий круг болезней, различных как по характеру течения (острые, хронические, латентные), степени распространения (от спорадических случаев до эпизоотии), так и по сложности их диагностики. Важное, а при некоторых болезнях решающее значение имеют серологические исследования, направленные на выявление антител, вырабатываемых организмом животного в ответ на внедрение инфекционного агента или вакцины. Несмотря на ряд достоинств, методы, основанные на этом принципе, обладают недостаточной чувствительностью и специфичностью. Существенный прорыв был сделан в последние годы, когда для диагностических целей привлекли методы генной инженерии и биотехнологии. Для диагностики инфекционных заболеваний наибольшее применение нашёл способ амплификации (умножения) нуклеиновых кислот: полимеразная цепная реакция (ПЦР), лигазная цепная реакция, NASBA-метод и др.
ПЦР в лабораторной диагностике инфекций характеризуется быстротой, непревзойдённой чувствительностью и высокой специфичностью, что позволяет обнаруживать микроорганизмы, присутствующие в очень низких концентрациях (1-10 возбудителей в пробе). При этом ДНК инфекционных агентов может быть достаточно эффективно экстрагирована из любой биологической жидкости или ткани, а также из проб объектов окружающей среды (почвы, воды и т.д.) и продуктов питания. Полимеразная цепная реакция эффективна при обнаружении бактериальных, грибковых, паразитарных и вирусных патогенов.
К настоящему времени ветеринарными специалистами уже разработаны тест-системы для диагностики методом ПЦР таких заболеваний, как туберкулёз, сибирская язва, лейкоз, чума крупного рогатого скота, бешенство, ящур, бруцеллез, кампилобактериоз, листериоз, хламидиоз животных, классическая и африканская чума свиней, респираторно-репродуктивный синдром свиней, парвовирусная инфекция свиней, энцефаломиокардит свиней, сальмонеллёз, стафилококкоз, микоплазмоз, болезнь Марека, реовирусная инфекция, болезнь Гамборо, инфекционный бронхит птиц, ньюкаслская болезнь; чума плотоядных, вирусный энтерит норок, вирусный гепатит утят и др.
Среди методов лабораторной диагностики гриппа птиц наиболее эффективным считается метод полимеразной цепной реакции. Используя праймеры к НА, NA и М-генам различных субтипов вируса гриппа, Zhang W. и Evans D.N. (1991 г.) впервые продемонстрировали возможность детекции вирусов. Однако исследования были выполнены на музейных штаммах.
Главными преимуществами ПЦР в сравнении с методами культурального подхода являются его более высокая чувствительность, быстрота и безопасность для персонала. При сравнении с серологическими методами ПЦР существенно выигрывает, поскольку позволяет выявлять вирусы гриппа на самых ранних стадиях, задолго до появления антител.
Кроме явных диагностических преимуществ, его дополняют методом секвенирования ДНК, и тогда он является универсальным молекулярно-генетическим подходом к определению большинства биологических свойств вирусов гриппа птиц, позволяющим выявлять родство циркулирующих штаммов, предсказывать его опасность для человека и эффективность противовирусной терапии.
